【摘要】 目的:探討兔蛛網膜下腔出血腦血管痙攣前后基底動脈中PDEⅤ的表達變化。方法:制作腦血管痙攣動物模型,空白對照組、實驗對照組與SAH組均于制模后第3天行TCD與選擇性椎-基底動脈造影,檢測兔腦血管痙攣的發生及變化,檢測完后,取其基底動脈,制成病理切片備用。通過免疫組化檢測兔基底動脈中PDEⅤ的表達。結果:各配伍組中TCD測得的基底動脈血流速度、DSA測得的基底動脈管徑值及免疫組化陽性表達產物的SUM值不等或不全相等(P<0.05),經Student-Newman-Keuls檢驗對各配伍組數據進行兩兩比較,SAH組與空白對照組、SAH組與實驗對照組TCD測得的基底動脈血流速度、DSA測得的基底動脈管徑值及免疫組化陽性表達產物的SUM值不等(P<0.05),空白對照組與實驗對照組TCD測得的基底動脈血流速度、DSA測得的基底動脈管徑值及免疫組化陽性表達產物的SUM值差異無統計學意義(P>0.05)。結論:兔蛛網膜下腔出血腦血管痙攣后PDEⅤ在其基底動脈中明顯表達,推測PDEⅤ表達可能與腦血管痙攣發生有關。
【關鍵詞】 蛛網膜下腔出血; 腦血管痙攣; 磷酸二酯酶Ⅴ; 兔
腦血管痙攣(CVS)作為蛛網膜下腔出血最嚴重的并發癥,是蛛網膜下腔出血致死和致殘的首要原因。研究認為,蛛網膜下腔出血后氧合血紅蛋白使血管內皮細胞產生的NO減少,繼而通過NO-GC-cGMP途徑使血管平滑肌細胞中cGMP含量減少,引起腦血管痙攣[1]。鳥苷酸環化酶(GC)和磷酸二酯酶(PDEs)是細胞內調節cGMP含量的兩種相互拮抗的重要生物酶,他們的含量及活性變化直接影響細胞內cGMP含量,GC含量增多或活性增強可使細胞內cGMP含量減少,PDEs含量增大或活性增強可使細胞內cGMP含量增加,反之亦然。目前,對通過增加NO產生而使cGMP含量增多來緩解腦血管痙攣的研究較多,而對通過抑制磷酸二酯酶活性使cGMP降解減少來緩解腦血管痙攣的研究較少。筆者通過“枕大池二次注血法” 制成兔腦血管痙攣模型[2],探討兔蛛網膜下腔出血腦血管痙攣前后基底動脈中PDEⅤ的表達變化,判斷其與腦血管痙攣的關系。
1 材料與方法
1.1 材料 新西蘭大白兔(山東大學動物實驗中心)。
1.2 實驗方法
1.2.1 動物實驗 (1)分組及制模:新西蘭大白兔24只,雄性,體重2.5~3.0 kg,按照體重接近的條件配成8個配伍組,然后將各配伍組中3只新西蘭大白兔隨機分配到3個組,每組各8只。適應性喂養1周后,用10%水合氯醛(3 ml/kg,腹腔注射)和速眠新(0.2 ml/kg,肌肉注射)麻醉,采用枕大池二次注血法制成兔蛛網膜下腔出血后腦血管痙攣模型,SAH組注入枕大池的為自體動脈血(0.5 ml/kg),實驗對照組注入枕大池的為生理鹽水(0.5 ml/kg),空白對照組無操作。兩次操作間隔時間為48 h,規定第1天為第2次操作后24 h,以此類推。
(2) TCD及選擇性椎-基底動脈造影:空白對照組、實驗對照組和SAH組均于制模后第3天行TCD與選擇性椎-基底動脈造影檢查[2]。TCD取俯臥位,充分暴露頸部,于枕外結節下2 cm處,用2MHzTCD探頭檢查基底動脈流速[TCD參數調節為:V 10 mm,D(27±3)cm,W 107 mW/cm2],保留TCD測得的血流頻譜及其平均流速(Vm) (圖1、圖2)。
DSA 取仰臥位,暴露右側腹股溝,游離右側股動脈,穿刺股動脈,交換置入Prower-14微導管,微導絲導引下將微導管選至左側椎動脈內,行椎-基底動脈造影檢查,造影結束后,撤出微導管,結扎股動脈,所用物品均肝素化。雙盲法測量基底動脈上、中、下段的血管直徑,取3點平均值作為基底動脈直徑(圖3、圖4)。
(3)取材:完成上述兩項操作后,將動物處死、灌注,取其基底動脈作為標本,將標本用10%的福爾馬林浸泡1周,按常規方法制成病理切片,以備后用。
1.2.2 免疫組化 (1)切片脫蠟及水化;( 2)微波熱修復;(3)3%H2O2水孵育、PBS液沖洗,阻斷過氧化物酶;(4)滴加一抗(1:750稀釋的山羊抗人PDEⅤ抗體);(5)滴加二抗;(6)顯色;(7)蘇木精復染;(8)乙醇脫水;(9)二甲苯透明;(10)封片。
1.3 統計學處理 應用SPSS 13軟件包對所得數據進行統計學處理,實驗數據采用(x±s)表示,運用方差分析,P<0.05為差異有統計學意義。
2 結果
2.1 TCD與選擇性椎-基底動脈造影的檢測結果 TCD測得空白對照組、實驗對照組、SAH組兔基底動脈血流速度的平均值分別為:( 28.71±2.6)cm/s、(27.2±3.1)cm/s、
(51.8±4.9)cm/s。DSA測得的空白對照組、實驗對照組、SAH組兔基底動脈管徑平均值分別為:( 0.72±0.18)mm、(0.81±0.13)mm、(0.39±0.22)mm。經Student-Newman-Keuls檢驗對三組數據進行兩兩比較,SAH組與空白對照組、SAH組與實驗對照組TCD測得的基底動脈血流速度、DSA測得的基底動脈管徑值不等(P<0.05),空白對照組與實驗對照組TCD測得的基底動脈血流速度、DSA測得的基底動脈管徑值差異無統計學意義(P>0.05)。
2.2 免疫組化 每個標本取3張相同部位的切片,每張切片取不同的3個視野進行照像(Olympus光學顯微鏡,200倍),用Image-Pro Plus6.0圖像分析系統測定PDEⅤ免疫表達物陽性反應產物IOD的SUM值表達,求其算術平均值。免疫組化測得的空白對照組、實驗對照組、SAH組兔基底動脈PDEⅤ表達分別為:(63.86±4.6)、(74.22±3.88)、(181.65±8.92)。經Student-Newman-Keuls檢驗對三組數據進行兩兩比較,SAH組與空白對照組、SAH組與實驗對照組SUM值不等(P<0.05),空白對照組與實驗對照組SUM值差異無統計學意義(P>0.05)。SAH組可見PDEⅤ在血管平滑肌內膜及中膜中明顯表達,空白對照組及實驗對照組中未見PDEⅤ明顯表達(圖5、圖6)。
3 討論
腦血管痙攣是蛛網膜下腔出血最嚴重的并發癥之一,可引起顱內壓增高,腦血流量降低、灌注不足,導致局部腦組織缺血或遲發性腦損害,是自發性蛛網膜下腔出血患者致死致殘的首要原因。本實驗采用經典的“枕大池二次注血法”制成兔蛛網膜下腔出血后腦血管痙攣模型,用TCD和DSA證實腦血管痙攣發生后,將動物模型的基底動脈制成病理切片,通過免疫組化測定腦血管痙攣動物模型基底動脈中PDEV的表達,從而判定其與腦血管痙攣發生的關系。實驗證實制模成功后24 h腦血管痙攣即開始出現,3 d時腦血管痙攣的表現達到峰值。該結果與相關文獻報道相符合[3]。
磷酸二酯酶(phosphodiesterases,PDEs)是人體生理代謝活動中一種重要的酶[4],廣泛分布于人體各個組織器官的細胞內,其作用主要是通過催化環核苷酸水解而改變細胞內cAMP及cGMP濃度。后兩者是細胞生理代謝活動中重要的第二信使,通過其濃度及活性調節細胞的重要功能。細胞內cAMP和cGMP水平變化主要與以下三種酶有關:腺苷酸環化酶(AC)、鳥苷酸環化酶(GC)和磷酸二酯酶(PDEs),這三種酶的濃度及活性調節變化,使細胞內cAMP和cGMP水平發生改變,從而產生相應的功能。磷酸二酯酶包括11種同工酶類型,不同磷酸二酯酶同工酶有著不同的調節機制及底物選擇性[5]。PDEIV、VII、VIII主要水解cAMP,PDEV、VI、IX主要水解cGMP。PDEⅤ與血管關系最為密切,其含量減少可使血管擴張,其抑制劑已經被廣泛應用于臨床 [6]。
血管源性舒張因子可作用于血管內皮細胞,激活腺苷酸環化酶(AC)或鳥苷酸環化酶(GC),后兩者可分別水解ATP、GTP生成cAMP和cGMP,cAMP可抑制蛋白激酶A活性,使血管平滑肌細胞舒張;cGMP能使細胞膜上的Ca2+通道關閉、肌漿網上Ca2+泵激活,使細胞內游離鈣減少,平滑肌舒張[7]。根據以上機理,增加血管平滑肌細胞中cAMP和cGMP濃度(如硝普鈉)、減少cAMP和cGMP降解(應用PDEs抑制劑如罌粟堿)都可以使血管舒張[8-9]。SAH后血管原性舒張因子減少,PDEs表達增多、活性增強,使血管平滑肌細胞中cAMP和cGMP生成減少、降解增加而導致其濃度降低,引起血管平滑肌收縮,發生腦血管痙攣。對SAH動物模型研究發現:模型動物基底動脈PDEⅤ表達較對照組明顯增多,應用枸櫞酸西地那非(PDEⅤ抑制劑)后,造影證實CVS得到緩解,認為血管平滑肌細胞中PDEⅤ表達增多與SAH后CVS發生有關,其抑制劑可以緩解CVS。目前臨床應用緩解血管痙攣的硝普鈉、罌粟堿效果均比較肯定。目前國外已將米力農(PDE III抑制劑)、西地那非(PDEⅤ抑制劑)應用于臨床,治療腦血管痙攣,效果肯定且無不良反應。另外PDEs抑制劑可擴張血管,改善循環,也被用于治療陽痿[10]、肺動脈高壓[11]。
本實驗證實兔蛛網膜下腔出血后腦血管痙攣的基底動脈中PDEV廣泛表達,表達部位主要集中在內膜和中膜,而對照組標本中均未見PDEⅤ明顯表達,通過計數軟件分析,兩者差異有統計學意義(P<0.05),因此推測PDEⅤ與蛛網膜下腔出血后腦血管痙攣發生有關。PDEⅤ抑制劑可能對腦血管痙攣治療有效,可能成為治療蛛網膜下腔出血后腦血管痙攣的新一代藥物。
參考文獻
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(本文編輯:陳丹云)