




【摘要】 目的:利用RNA干擾技術(RNAi)下調肌腱細胞中V型膠原蛋白的表達,擬為后續探討V型膠原在損傷肌腱修復過程中的作用提供可行的試驗方法。方法:分別設計干擾大鼠V型膠原[COL5( 1)2( 2)]兩個亞基COL5 1和COL5 2表達的siRNA序列,轉染大鼠肌腱細胞。通過實時熒光定量PCR和免疫熒光法檢測V型膠原在基因和蛋白水平的表達。結果:轉染特定的siRNA后,V型膠原兩個亞基的基因表達被抑制約70%,蛋白表達也被明顯抑制。結論:RNAi法可有效地抑制大鼠肌腱細胞中V型膠原的基因和蛋白水平表達。為進一步研究V型膠原在肌腱損傷修復過程中的作用提供了可行的試驗方法。
【關鍵詞】 肌腱細胞; V型膠原; RNA干擾技術; 基因表達
年齡增長和運動過度均可造成肌腱韌帶損傷。目前臨床上的治療方法主要是理療和手術縫合。由于肌腱韌帶內細胞、血管較少,再生能力較差,所以愈后常由瘢痕組織修復,力學性能低下,易造成重復斷裂。
V型膠原在正常肌腱組織中含量很少,但在損傷肌腱中卻持續高表達52周[1]。有研究顯示過多的V型膠原抑制I型膠原的自聚生長。培養抑制了V型膠原功能的纖維細胞(Ehlers-Danlos Syndrome),其所產生的Ⅰ型膠原纖維直徑大于正常膠原纖維[2]。損傷肌腱修復后膠原纖維直徑明顯變小,而這些小直徑纖維又與肌腱修復后力學性能低下相關[3-4]。所以降低V型膠原的表達可能有利于促進大直徑膠原纖維的再生,提高損傷肌腱的修復效果。
RNA干擾技術(RNA interference,RNAi)是近年興起的一種高效、特異阻斷靶mRNA表達而達到轉錄后基因沉默的新技術。能夠有效地抑制目的基因的表達,產生相應功能型缺失的現象,為研究特定基因功能提供良好的工具[5-6]。
本研究設計并合成干擾V型膠原兩個亞基的siRNA,轉染大鼠肌腱細胞,在基因和蛋白水平檢測抑制效率,篩選得到有效的干擾片段,為后續研究V型膠原的功能提供細胞水平平臺和可行的試驗方法。
1 材料與方法
1.1 試劑 胰蛋白酶、胎牛血清(FBS)、DMEM培養基(Gibco);siRNA分子(Ambion)、LipofectamineTM2000轉染試劑;mMLV逆轉錄試劑(Invitrogen)、real time PCR試劑盒(TaKaRa);V型膠原一抗(millpore)、熒光二抗。
1.2 儀器 二氧化碳培養箱;生物安全柜;倒置熒光電子顯微鏡(Olympus);Real-Time PCR儀(ABI 7900 HT)。
1.3 實驗動物 Sprague-Dawley(SD)大鼠,雌雄不限,體重250 g左右。
1.4 方法
1.4.1 細胞培養 取大鼠跟腱,剝離肌腱腱膜,將組織塊剪成勻漿狀,用混合膠原酶消化后,加入含10%FBS的DMEM,37 ℃、5% CO2、飽和濕度條件下(標準環境)進行原代培養。4~5 d更換1次培養基。當細胞鋪滿培養皿底約90%時,用胰蛋白酶消化按1:3進行傳代培養。取P5以內的細胞用于后續實驗。
1.4.2 siRNA序列設計 由Ambion公司設計與合成siRNA干擾序列。由于V型膠原的分子組成為COL5( 1)2( 2),所以分別設計了針對COL5 1和COL5 2亞基的siRNA序列,為實驗序列,見表1。并提供已知有效抑制GAPDH的siRNA作為陽性對照序列(positive control, PC),FAM綠色熒光標記的亂序siRNA為陰性對照序列(negative control, NC)。
1.4.3 基因轉染 將處于對數生長期的大鼠肌腱細胞按5×104/孔的密度接種于12孔板中,培養20 h后,更換無FBS的培養基后進行轉染。具體方法參照Lipofectamine TM2000轉染試劑說明書。培養6 h后更換含FBS的培養基。
1.4.4 實時熒光定量PCR法檢測基因干擾效率 肌腱細胞轉染特定的siRNA48 h后,收集肌腱細胞,提取RNA,采用兩步法完成反轉錄聚合酶鏈反應(RT-PCR)(n=3)。采用b-actin做內參,用實時熒光定量PCR法(real time PCR)定量分析COL5 1和COL5 2基因的表達,所用引物見表2。
1.4.5 免疫熒光法檢測蛋白抑制效率 由于亂序的siRNA自身標記FAM綠色熒光,不能用作陰性對照,所以用只加轉染試劑而不加任何siRNA的肌腱細胞作為對照組(Control)(n=3)。肌腱細胞轉染72 h后,去掉培養基,PBS潤洗,固定,加入稀釋好的一抗,置于濕盒中4 ℃過夜(為扣除背景熒光,以不加一抗的肌腱細胞作為免疫熒光的方法學對照)。次日,PBS潤洗,加入熒光標記的二抗,室溫避光1 h。再次用PBS潤洗,熒光電子顯微鏡下觀察結果。
1.5 統計學處理 采用SPSS 11.5統計軟件對數據進行處理,計量資料以(x±s)表示,比較采用t檢驗,以P<0.05為差異具有統計學意義。
2 結果
2.1 siRNA轉染效率檢測 體外培養肌腱細胞見圖1A。轉染特定的siRNA后,用熒光顯微鏡觀察陰性對照組肌腱細胞,結果見圖1B。肌腱細胞內充滿綠色熒光,表明FAM標記的siRNA進入肌腱細胞內,轉染效率較高。
注:體外培養大鼠肌腱細胞(圖1A);轉染FAM熒光標記siRNA的肌腱細胞(圖1B)
2.2 靶向siRNA抑制V型膠原在mRNA水平的表達 肌腱細胞轉染siRNA48 h后,用real time PCR法檢測COL5 1和COL5 2在基因表達的水平,見圖2。與陰性對照組(亂序siRNA)相比, 1(V)實驗組(siRNA196227)有效抑制了肌腱細胞中COL5 1基因水平的表達, 2(V)實驗組(siRNA s136862)有效抑制了肌腱細胞中COL5 2基因水平的表達。抑制程度約70%左右(P<0.05)。陽性對照組(抑制GAPDH的siRNA)有效抑制了GAPDH的表達(數據未展示)。設置陽性對照組目的為驗證siRNA轉染方法的有效性,見圖2。
2.3 靶向siRNA抑制V型膠原在蛋白水平的表達 肌腱細胞轉染siRNA72 h后,用免疫熒光法檢測肌腱細胞中V型膠原蛋白水平的表達,見圖3。 1(V)實驗組(siRNA196227)有效抑制了肌腱細胞中Col5 1在蛋白水平的表達(圖3A), 2(V)實驗組(siRNAs136862)有效抑制了肌腱細胞中Col5 2在蛋白水平的表達(圖3E)。
注: 1(V):實驗組1(大鼠肌腱細胞轉染siRNA196227); 2(V):實驗組2(大鼠肌腱細胞轉染siRNA s136862);PC:陽性對照(大鼠肌腱細胞轉染干擾GAPDH的siRNA);NC:陰性對照(大鼠肌腱細胞轉染FAM標記的亂序siRNA)(圖2A,圖2B)
注:V型膠原亞基Col5 1在蛋白水平的檢測(圖3A~3C);V型膠原亞基Col5 2在蛋白水平的檢測(圖3D~3F); 1(V):實驗組1(大鼠肌腱細胞轉染siRNA196227); 2(V):實驗組2(大鼠肌腱細胞轉染siRNA s136862);Control:空白對照組(大鼠肌腱細胞只加轉染試劑,不加任何siRNA)
3 討論
有研究表明損傷肌腱中V型膠原表達異常升高[1],且過多的V型膠原抑制I型膠原的自聚生長。本實驗在體外培養大鼠肌腱細胞,利用RNAi法抑制肌腱細胞中V型膠原兩個亞基COL5 1和COL5 2的表達。結果表明,化學合成的siRNA分子通過脂質體轉染大鼠肌腱細胞后,有效抑制了COL5 1和COL5 2在基因水平的表達,V型膠原在蛋白水平的表達也明顯降低。表明RNAi法可以有效抑制V型膠原在肌腱細胞中的表達。為后續研究V型膠原在肌腱損傷修復過程中的調節作用提供可行的試驗方法。也為促進損傷肌腱再生,達到結構和功能的完全恢復帶來潛在的基因治療手段。
參考文獻
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(收稿日期:2013-05-20) (本文編輯:王宇)