【摘要】 目的:探討體外感染減毒麻疹病毒(MV)對子宮內膜腺癌細胞(JEC)的凋亡誘導作用及相關機理。方法:MTT比色法動態監測MV感染對JEC細胞增殖活力的影響;瓊脂糖凝膠電泳以及流式細胞術檢測細胞凋亡;免疫細胞化學法檢測MV感染后JEC細胞的Fas、FasL及TGF-β表達,分析凋亡機制。結果:MV感染6 d內,促進細胞的生長;感染6 d后,抑制細胞的生長,最終造成細胞死亡。流式細胞術結果顯示:各感染濃度組JEC細胞的凋亡率比正常對照組增高(P<0.05或P<0.01),隨感染時間的延長,細胞的凋亡率呈上升的趨勢,感染12 d時,凋亡率與感染濃度呈正相關(r=0.77),且瓊脂糖凝膠電泳出現特征性DNA“Ladder”凋亡條帶;此時,感染細胞內Fas及TGF-β的表達增強(P<0.01),而FasL始終未表達。結論:MV感染能夠抑制JEC細胞增值,并誘導其凋亡,JEC細胞凋亡機制可能與Fas、TGF-β的表達有關。
【關鍵詞】 減毒麻疹病毒; 子宮內膜腺癌細胞; 細胞凋亡; Fas; FasL; TGF-β
子宮內膜癌是發生于子宮內膜的一組上皮性惡性腫瘤,以來源于內膜腺體的腺癌最常見。為女性生殖道三大惡性腫瘤之一,占女性生殖道惡性腫瘤的20%~30%。近年來發病率在世界范圍內呈上升趨勢。早期患者預后較好,而晚期患者多有盆腔外轉移,預后差,雖然采用手術、放射、藥物等綜合治療,但5年生存率仍較低,因此尋找新的治療方法迫在眉睫 [1]。溶瘤病毒治療是近年來興起的一種新的腫瘤治療途徑,其機制在于利用基因工程對病毒進行改造,使其在腫瘤中選擇性復制并產生溶瘤作用[2]。病毒溶瘤結合其他治療,使得腫瘤治療的療效顯著提高,得到我國政府的重視,不斷加大投入,相繼啟動了一些與溶瘤病毒學密切相關的重大研究項目。麻疹病毒(MV)感染可誘導多種細胞凋亡,利用MV這一感染特性,有研究人員開展了利用MV治療淋巴瘤、腦腫瘤、卵巢癌等的研究,并獲得了較好的療效[3-7]。尤其是利用基因重組的MV-CEA、MV-NIS(MV與放射性碘化鈉的重組體)治療卵巢癌的方法已用于一期臨床試驗[6-7]。JEC是一株人子宮內膜腺癌細胞系,研究證實子宮內膜腺癌細胞表面表達麻疹病毒結合受體CD46[8]。因此設想麻疹病毒是否對子宮內膜腺癌有抑制作用;其抑制作用是否通過誘導細胞凋亡實現?因此,本實驗通過不同濃度的MV感染JEC細胞,然后觀察不同感染濃度及時間細胞的增值及凋亡情況,并對病毒感染前后細胞Fas、FasL、TGF-β的表達進行測定,初步探討MV對JEC的抑制作用及其相關機理,為利用MV對子宮內膜癌進行溶瘤治療的進一步研究提供實驗依據。
1 材料與方法
1.1 材料 麻疹病毒疫苗京160(北京天壇生物制品股份有限公司);JEC細胞(遵義醫學院微生物教研室);Annexin-v FITC/PI試劑盒(晶美生物工程公司);兔抗Fas、兔抗FasL、兔抗TGF-β(Santa Cruz公司);小量凋亡DNA抽提試劑盒(上海華舜生物工程有限公司)。
1.2 方法
1.2.1 病毒感染濃度的選定 TCID50測定按照中國生物制品規程操作,對病毒進行倍比稀釋,接種JEC細胞,每個稀釋度設4復孔,并設空白對照,置37 ℃、相對濕度97%、5% CO2孵箱中連續培養,觀察7 d,以第7天感染細胞出現2孔或2孔以上多核巨細胞病變的病毒的最高稀釋度作為病毒效價。
1.2.2 MTT檢測 用96孔板接種細胞,待細胞貼壁伸展生長后,MV感染細胞,每個稀釋度設6復孔,并設正常對照。感染后第1~10天分別進行MTT檢測。
1.2.3 瓊脂糖凝膠電泳 按DNA提取試劑盒說明書提取經病毒感染12 d(根據預實驗結果)的JEC細胞DNA,進行2%瓊脂糖凝膠電泳,條件為60 V,4 h,然后使用凝膠成像分析系統檢測電泳結果并拍照。
1.2.4 流式細胞術 于病毒感染后一定時間收集細胞,按Annexin-V FITC/PI試劑盒說明書進行操作,制備樣品,上機檢測細胞凋亡率。
1.2.5 免疫細胞化學法檢測細胞凋亡機理 收集MV感染后12 d的細胞,進行石蠟包埋、切片,進行切片的免疫組化實驗,觀察細胞Fas、FasL以及TGF-β的表達變化,進行吸光度值的比較。設陰性對照、正常對照、病毒組。
1.3 統計學處理 采用SPSS 12.0軟件對所得數據進行統計分析,兩變量的相關性以相關系數(r)值確定,計量資料用(x±s)表示,比較采用t檢驗,以P<0.05為差異有統計學意義。
2 結果
2.1 病毒TCID50 病毒TCID50的稀釋度為1:160,本研究擬采用1:80、1:40、1:20、1:10四個稀釋度作為感染濃度。
2.2 MTT檢測 抑制率=1-(病毒組OD/正常對照組OD),見表1。每個稀釋度設6復孔,同一感染濃度條件下,病毒感染時間與抑制率呈正相關(P<0.01)。感染后6 d內,病毒對細胞的生長表現為促進作用;而6 d后,開始出現抑制作用,同一感染濃度,各濃度組不同感染天數的組間均存在著差異(P<0.05或P<0.01),9、10 d抑制率與感染濃度呈正相關
2.3 凋亡特征性 DNA “Ladder”條帶的形成在1:10、1:20、1:40稀釋度出現了凋亡特征性的“Ladder”條帶,而對照組無明顯的DNA“Ladder”條帶的出現,見圖1。
圖1 MV感染后JEC細胞DNA電泳結果
注:M:marker;1:陰性對照;2~4:1:10、1:20、1:40稀釋度感染12 d
2.4 流式細胞儀檢測JEC凋亡率的結果 每個稀釋度設3復瓶培養,同一感染濃度條件下,隨感染時間的延長,細胞凋亡率逐漸上升,兩者為正相關。同一時間點與對照組比較,病毒組的細胞凋亡率升高(P<0.05或P<0.01),感染后12 d,感染濃度與凋亡率呈正相關,見表2。
2.5 免疫細胞化學法檢測JEC細胞Fas、FasL以及TGF-β表達結果
2.5.1 Fas的表達 鏡下Fas陽性染色主要位于細胞漿中,每組取8個不同視野進行光密度值測定,與正常對照組相比,病毒組Fas陽性反應強度增加,染色變深;正常對照組與陰性對照組相比,染色變深。經圖像分析系統軟件分析各組的平均吸光度值,結果顯示與陰性對照組相比,正常對照、病毒組的平均光密度值降低。各組間比較差異顯著(P<0.01),見表3。
2.5.2 FasL的表達 每組取8個不同視野進行光密度值測定,鏡下觀察FasL在陰性對照組、正常對照組、病毒感染組中均無表達。比較各組平均光密度值,各組間比較差異無統計學意義(P>0.05)。
2.5.3 TGF-β的表達 每組取8個不同視野進行光密度值測定,鏡下陰性對照組、正常對照組均不表達,病毒組陽性染色主要位于細胞漿內,經圖像分析系統軟件分析各組的平均光密度值。結果顯示:與陰性對照組比較,正常對照組光密度值降低不明顯,組間差異無統計學意義(P>0.05);病毒組與上述兩組相比平均光密度降低,組間比較差異有顯著統計學意義(P<0.01)。
3 討論
MV為單股負鏈RNA病毒,H、F和N(核蛋白)三種蛋白是麻疹病毒的主要抗原成分,MV通過CD46、SLAM(淋巴活化信號分子)、DC-SIGN(C-血凝素細胞間粘附分子)受體介導病毒的感染及傳播,CD46是麻疹疫苗株和麻疹病毒實驗室株的主要細胞受體[9-12]。SLAM在有活性的T 和B細胞表面上表達,是新發現的麻疹病毒細胞受體[13]。麻疹野生病毒、實驗室株和麻疹疫苗株都能在有表達SLAM的細胞上產生典型的病變,誘導細胞凋亡,因此MV在人類腫瘤的溶瘤治療中具有廣泛的應用前景,其抗瘤譜包括多種淋巴、非淋巴人類惡性腫瘤。在婦科腫瘤中,國外已經將基因改造的MV應用于卵巢癌的I期臨床試驗[6-7]。國內亦有研究證實麻疹減毒活疫苗體外可抑制原代卵巢癌細胞生長,引起細胞病變和細胞凋亡,另有研究顯示MV減毒株在組織培養中和裸鼠體內對HeLa人宮頸癌腫瘤有明顯的殺傷作用,因此減毒MV疫苗株在婦科腫瘤中有很好的應用前景[14-15]。本研究將減毒麻疹疫苗感染人子宮內膜腺癌細胞,感染后6 d,亦表現為抑制細胞的生長,并誘導細胞凋亡,且細胞凋亡率與病毒的感染時間及感染濃度有關,由此,筆者推測MV抑制細胞生長可能是通過誘導細胞凋亡實現的。但是,在病毒感染6 d內,病毒對細胞的生長表現為促進作用,病毒濃度越高,其促進作用越強。推測其可能的原因是細胞感染早期,無細胞膜及線粒體膜的破裂,細胞相互融合,使線粒體的功能加強,還原MTT形成藍紫色的甲臢結晶增多,導致OD值升高;也可能是MV感染初期細胞分泌促生長物質,使細胞生長加快。但這種推測,還有待進一步實驗證明。總之,MV最終抑制JEC的生長,并誘導感染細胞的凋亡,可進一步用于人子宮內膜腺癌治療的實驗研究。
通過MV感染DC細胞的研究證明,人類DC細胞的凋亡是通過Fas/FasL介導[16]。另外,MV可通過誘導體外培養的外周血單核細胞(PBMC)Fas的表達,間接引起未感染MV但表達FasL的旁觀者T細胞凋亡[17]。TGF-β既能增強某些細胞的增殖、分化能力,又能誘導某些細胞的凋亡反應,如TGF-β可誘導淋巴細胞、肝細胞、肝癌細胞、子宮上皮細胞凋亡及猴免疫缺陷病毒感染所致的B細胞淋巴瘤細胞的凋亡[18]。病毒感染可使TGF-β的表達增加,活性增強,促進凋亡的發生。實驗結果顯示,MV感染后12 d,各組細胞的凋亡率增至最高,并出現DNA Ladder凋亡條帶,此時病毒組Fas、TGF-β的表達均增加,而FasL在正常對照及病毒感染組始終未表達。提示MV誘導JEC凋亡的機制可能與Fas及TGF-β的表達有一定的關系,但FasL不表達的原因仍有待今后進一步探討。
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(收稿日期:2013-07-15) (本文編輯:歐麗)