
【摘要】 目的:探討康復期強制戒毒人員淋巴細胞基因組DNA甲基化水平和T細胞亞群間的相關性。方法:抽提康復期強制戒毒人員和正常人淋巴細胞基因組DNA,采用整體甲基化定量試劑盒檢測基因組DNA甲基化水平;T細胞亞群檢測采用流式細胞術。結果:分別對80例康復期強制戒毒人員和正常健康人群進行淋巴細胞基因組DNA甲基化水平檢測發(fā)現(xiàn),康復期強制戒毒人員淋巴細胞基因組DNA甲基化百分率為(15.37±3.28)%,顯著低于正常健康人群的(23.18±7.98)%,差異具有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。康復期強制戒毒人員CD3+、CD3++CD4+和CD3++CD4+/CD3++CD8+均明顯低于正常健康人群(P<0.05)。且CD3+、CD3++CD4+與淋巴細胞基因組DNA甲基化水平呈正相關(r=0.21,0.36,P<0.05)。結論:康復期強制戒毒人員淋巴細胞基因組DNA甲基化水平顯著低于正常人水平,其淋巴細胞基因組DNA甲基化水平和CD3+、CD3++CD4+明顯相關。
【關鍵詞】 毒品; 甲基化; 淋巴細胞; 細胞免疫
人體免疫系統(tǒng)是由多種免疫細胞、免疫分子共同參與,形成復雜的網(wǎng)絡結構而發(fā)揮作用。其中淋巴細胞對免疫應答的啟動起著至關重要的作用。研究發(fā)現(xiàn),吸毒人群的免疫系統(tǒng)受到極大破壞,淋巴細胞的活性也受到破壞[1]。而在系統(tǒng)性紅斑狼瘡、類風濕關節(jié)炎等自身性免疫疾病中,均發(fā)現(xiàn)其淋巴細胞DNA甲基化水平發(fā)生異常[2]。吸毒所導致的免疫力低下,與淋巴細胞甲基化水平是否存在特定規(guī)律,這是本研究的主要著眼點。本研究通過檢測康復期強制戒毒人員外周血淋巴細胞基因組DNA甲基化水平和T淋巴細胞亞群變化,研究吸毒者免疫力受損與DNA甲基化的關聯(lián),為探討毒品對免疫病理損傷可能機制提供理論參考。
1 資料與方法
1.1 一般資料 本試驗于2002年9月-2002年12月間進行。以80例康復期強制戒毒人員為研究對象,其來源于福建省司法廳所屬強制戒毒場所自愿參加戒毒的人員,男40例,女40例,平均年齡(32.16±0.98)歲;符合ICD-10阿片類藥物依賴診斷標準和苯丙胺類藥物依賴診斷標準的脫毒患者;經(jīng)告知同意,自愿參加,并簽署知情同意書;排除HIV、肺結核、肝炎等傳染性疾病患者,排除肝、腎、心功能不全者及精神病患者中不能配合者。以80例正常健康人群為對照,采集靜脈血樣,其來源于福建省二人民醫(yī)院健康體檢中心參加體檢且身體健康無重大疾病者,男40例,女40例,平均年齡(29.33±2.41)歲。兩組在性別、年齡方面比較差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05),具有可比性。
1.2 主要儀器和試劑 多功能酶標儀Infinite M200 F200(奧地利TECAN);流式細胞分析儀EPICS XL(美國Coulter);超低溫冰箱Premium Range(美國NBS);超微量紫外分光光度計NANODROP2000(美國THERMO);生化培養(yǎng)箱SHP-250(上海精宏);臺式離心機(美國EPPENDORF);可調式移液器(美國EPPENDORF)。
淋巴細胞基因組DNA抽提試劑盒(美國Omega公司);整體甲基化定量試劑盒(美國Epigentek公司);單克隆抗體(美國BD公司)。
1.3 試驗方法
1.3.1 外周血T淋巴細胞亞群檢測 被試人員在清晨空腹靜脈采血5 ml于肝素抗凝管中。取肝素抗凝血100 μL于小試管底部,分別加20 μL熒光標記的單克隆抗體,混勻,室溫(18~25 ℃)孵育15 min。加紅細胞溶解液1 ml,充分混勻。待紅細胞完全溶解后上流式細胞儀檢測。在波長488 nm時,計數(shù)30 000個細胞。記錄分析直方圖,數(shù)據(jù)經(jīng)ELITE軟件處理,以百分率報告。
1.3.2 淋巴細胞基因組DNA的提取 被試人員在清晨空腹靜脈采血5 ml于EDTA抗凝管中。供試血樣淋巴細胞基因組DNA抽提采用SE Blood DNA Kit(美國Omega公司),按試劑盒說明進行,抽提的DNA保存于-20 ℃?zhèn)溆谩?/p>
1.3.3 DNA含量測定及純度鑒定 取抽提好的DNA溶于雙蒸水中,于超微量紫外分光光度計NANODROP2000(美國THERMO)上測量260/280 nm光密度值。保證供試樣本A260/280比值均在1.7~1.9之間,濃度在50~100 μg/ml,以用于整體DNA甲基化水平的測定。對不符合要求的DNA樣本重新進行抽提和定量。
1.3.4 淋巴細胞整體基因組甲基化水平測定 DNA整體甲基化水平采用整體甲基化定量試劑盒(美國Epigentek公司)檢測。該試劑盒采用抗原抗體結合的方法,將DNA固定到一個對DNA具有高親和力的反應孔中,甲基化的DNA能夠被5甲基胞嘧啶抗體識別,通過抗原抗體識別反應進行定量,甲基化的DNA與OD值的高低成正比。具體操作步驟按試劑盒說明書操作,DNA甲基化的程度采用如下公式計算:
甲基化%=OD(樣本-空白對照)/2×OD(陽性對照-空白對照)
1.4 統(tǒng)計學處理 采用SPSS 19.0統(tǒng)計學軟件對數(shù)據(jù)進行處理,計量資料以(x±s)表示,比較采用t檢驗,相關性分析采用多元回歸分析,以P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
2 結果
2.1 整體DNA甲基化水平檢測結果 康復期強制戒毒人員淋巴細胞中基因組DNA甲基化百分率為(15.37±3.28)%,顯著低于正常健康人群的(23.18±7.98)%,差異具有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。
2.2 T淋巴細胞亞群檢測結果 康復期強制戒毒人員CD3+、CD3++CD4+ 和CD3++CD4+/CD3++CD8+值均明顯低于正常健康人群,差異具有統(tǒng)計學意義(P<0.05);康復期強制戒毒人員CD3++CD8+與健康人相比雖有差異,但無統(tǒng)計學意義(P>0.05),見表1。
2.3 淋巴細胞基因組DNA甲基化水平與T淋巴細胞亞群的相關性 以基因組DNA甲基化水平為因變量進行多元線性回歸分析發(fā)現(xiàn),CD3+、CD3++CD4+與淋巴細胞基因組DNA甲基化水平呈正相關(r=0.21,0.36,P<0.05)。CD3++CD8+、CD3++CD4+/CD3++CD8+與其無相關關系(P>0.05)。
3 討論
本研究表明吸毒者總T細胞(CD3+)減少,CD3++CD4+細胞也顯著降低,CD3++CD8+無顯著變化,故CD3++CD4+/CD3++CD8+明顯下降,說明毒品抑制吸毒者的正常免疫功能。毒品對人體細胞免疫的影響早有報道。早在1974年Brown等[3]就報道,海洛因成癮者免疫功能缺陷,表現(xiàn)為淋巴細胞轉化率顯著降低。海洛因廣泛抑制機體細胞免疫功能,使淋巴細胞增殖和活性受抑制[4-5]。同時還能引起T淋巴細胞對PHA刺激導致的分化能力下降,分泌IL-2、INF-γ、IL-4能力下降[6]。研究表明,吸毒者整體細胞免疫功能處于抑制狀態(tài),其機制可能是海洛因等藥物毒性代謝產(chǎn)物抑制了T細胞的活性和增殖能力,也可能是長期濫用外源性阿片樣物質引起機體下丘腦神經(jīng)內分泌激素系統(tǒng)(阿片肽系統(tǒng))退行性改變,使其對T細胞及其亞群的正常調節(jié)作用減退和消失導致細胞免疫功能受損[7]。
DNA甲基化是目前研究較為深入的一種表觀遺傳學調控機制。在近幾年研究中發(fā)現(xiàn),DNA甲基化在自身免疫性疾病中起著重要作用。DNA甲基化水平改變可以影響許多基因的表達,包括一些與黏附因子和細胞因子表達相關的基因,導致T細胞的自身反應性發(fā)生改變,從而與疾病發(fā)病密切相關。如在系統(tǒng)性紅斑狼瘡(systemic lupus erythematosus,SLE)類風濕關節(jié)炎(rheumatoid arthritis,RA)和系統(tǒng)性硬化癥(systemic sclerosis,SSc)患者中,基因組普遍DNA甲基化水平都降低[8-9]。DNA的低甲基化可能通過引起患者的某些基因的異常表達,參與疾病的發(fā)生發(fā)展[10]。
本文研究結果表明,康復期強制戒毒人員淋巴細胞基因組DNA甲基化水平顯著低于正常人水平,說明毒品對人體淋巴細胞DNA有一定影響,其表觀遺傳修飾發(fā)生改變。同時發(fā)現(xiàn)淋巴細胞基因組DNA甲基化水平與CD3+和CD3++CD4+呈正相關,說明吸毒所導致的細胞免疫功能下降與淋巴細胞基因組DNA甲基化水平存在關聯(lián)。本研究揭示了康復期戒毒人員的甲基化水平狀態(tài),發(fā)現(xiàn)細胞免疫功能與淋巴細胞甲基化水平相關性,為今后從分子水平探索毒品對人體免疫病理損傷機制具有重要意義。
參考文獻
[1]楊忠禮,李娟,王麗,等.靜脈吸毒人群HIV感染者CD3+、CD4+、CD8+ T淋巴細胞水平定量研究與分析[J].中國艾滋病性病,2004,5(1):10-12.
[2]李遇梅,李安生,陳志強.DNA甲基化與腫瘤及系統(tǒng)性紅斑狼瘡的關系[J].國外醫(yī)學:皮膚性病學分冊,2004,30(5):294-296.
[3] Brown S M,Stimel B,Taub R N,et al.Immunological dysfunction in heroin addicts[J].Arch Intern Med,1974,134(6):1001-1006.
[4] Carr D J,F(xiàn)rance C P.Immune alterations in morphine treated rhesus monkeys [J].Pharnmol Exp Ther,1993,267(11):9-15.
[5] Bhargara H N,Thonas P T,Thorat S,et al.Efects of morphine tolerance and abstinence of cellular immune function[J]. Bra Res,1994,642(122):1-10.
[6] Zaki N G,Osman A,Moustafa H,et al. Alterations of immune functions in heroin addicts [J].Egypt J Immuno1,2006,13(1):153-171.
[7] Vallqo R,De Leon Casasola O,Benyamin R.Opioid therapy and immunoanppression:a review [J].Am J Ther,2004,11(5):354-365.
[8] Swkigawa J,Okada M,Ogasavara H,et al.DNA methylation in systemic lupus erythematogus[J].Lupus,2003,12(2):79-85.
[9] Riehardson B.Evidence for impaired T cell DNA methylation in systemic lupus erythematosus and rheumatoid arthritis[J].Arthritis Rheum,1990,33(6):1665-1673.
[10] Xu X Y,Wang M M,Xiao C S,et al.The study of DNA methylation in rheumatoid arthritis[J].ChinRheumatol,2006,10(8):462-465.
(收稿日期:2013-08-20) (本文編輯:蔡元元)