柴胡皂苷B2（Saikosaponin B2）對四氯化碳損傷HepG2細胞的保護作用

崔 哲沈光海*

（1 延邊大學附屬醫院，吉林 延吉 133000；2 延邊大學藥學院，吉林 延吉 133000）

柴胡皂苷B2（Saikosaponin B2）對四氯化碳損傷HepG2細胞的保護作用

崔 哲1沈光海2*

（1 延邊大學附屬醫院，吉林 延吉 133000；2 延邊大學藥學院，吉林 延吉 133000）

目的初步探討柴胡皂苷 B2（SSB2）對CCl4肝細胞損傷的保護作用。方法用CCl4誘肝HepG2細胞損傷，設立正常對照組、CCl4損傷組和不同濃度SSB2保護組；利用四甲基偶氮唑藍（MTT）法檢測細胞活力以及流式細胞儀檢測細胞周期和凋亡率的方法，觀察SSB2對CCl4誘導的肝細胞損傷的保護作用。結果MTT檢測顯示SSB2保護組細胞活性明顯高于損傷組，以SSB2濃度為100 μg/mL保護組細胞活性最高 ；流式細胞儀測定細胞凋亡率顯示SSB2保護組 （終濃度為100 μg/mL）凋亡率明顯低于CC14損傷組，細胞周期各期細胞分布比例無明顯變化。結論SSB2對CCl4誘導的HepG2細胞損傷具有保護作用。

北柴胡；柴胡皂苷B2；HepG2細胞；細胞凋亡；肝保護作用

為了探討北柴胡中分離得到的SSB2對體外培養肝細胞損傷保護作用，在CCl4損傷的HepG2細胞模型上，用MTT檢測細胞活性和流式細胞儀分析的方法探討SSB2對肝細胞損傷的保護作用。

1 材料與方法

1.1 材料：HepG2細胞株（延邊大學重點實驗室提供），ARX300型核磁共振波普儀（德國 Brucker公司產品），RPMI1640培養基、胎牛血清、MTT（購自Gibco公司），SONRISE-BASIC TECA酶標儀（瑞士Sunrise公司產品），FAC Scan型流式細胞檢側儀（美國BD公司產品）。

1.2 方法

1.2.1 提取分離：取北柴胡干燥根2.0 kg，用乙醇室溫提取3次，每次7 d，減壓濃縮得浸膏153.0 g。將浸膏懸浮于水中，依次用CH2Cl2、EtOAc、BuOH萃取，其中BuOH層減壓濃縮后得到浸膏10.5 g，將BuOH浸膏10 g上正、反相硅膠柱層析、LH-20柱層析及甲醇重結晶得到白色粉末25.0 mg，其核磁共振數據與文獻[1]報道SSB2數據一致，確定此化合物為SSB2。

1.2.2 HepG2細胞培養：含10%小牛血清的RPMI 1640培養液，于37 ℃、5% CO2、飽和濕度條件下靜置培養。當匯合度95%以上時，行細胞傳代分組試驗。

1.2.3 CCl4損傷液制備：DMSO與CCl4以物質的量比1∶2混勻，加入到RPMI 1640培養液中（最終濃度為0.4 μmol/μL），得到CCl4混懸液，4 ℃冰箱保存。用前震蕩后使用。

1.2.4 分組實驗：設正常對照組、CCl4損傷組和SSB2損傷保護組。正常對照組不做處理；損傷組加入CCl4混懸液（最終濃度為6 μmol/mL）；SSB2損傷保護組分五組SSB2濃度分別為（50、100、150、200、300 μg/mL），于CCl4損傷前12 h加SSB2。三組細胞均于37 ℃、5% CO2靜置培養（飽和濕度）。

1.2.5 MTT法檢測細胞活力：將HepG2細胞以5×104/mL接種在96孔培養板中，每孔100 μL。培養12 h后，保護組加入不同濃度的SSB2，繼續培養12 h，加入CCl4（濃度最終為6 μmol/mL），正常對照組不做處理。每組設6個復孔。損傷2 h后加入5 mg/mL的MTT 20 μL，放人CO2培養箱繼續培養4 h，取出培養板，小心吸去培養液，加入100 μL DMSO，振搖至MTT結晶溶解后，用全自動酶聯儀測定各孔吸光度（OD值）（測試波長570 nm）。并計算實驗組細胞存活率，細胞存活率：OD實驗/OD對照×100%（以空白組OD值調零）。

1.2.6 流式細胞儀檢測細胞活性：HepG2細胞以×104個/mL接種于培養瓶中，隨機分為三組（對照組、保護組、損傷組），每組2瓶。細胞培養48 h，換液，每瓶精確定量加入4.0 mL培養液，保護組加入SSB2（濃度最終為100 μg/mL）。靜置培養12 h，損傷組和保護組加入CCl4（濃度最終為6 μmol/mL）繼續培養4 h，分別收集各瓶培養液，加入0.25%胰蛋白酶消化，加入原培養液吹打分散細胞，1000 rpm/min離心8 min收集細胞.PBS清洗3次后，用500 μL PBS懸浮細胞，加入含10 μg/mL的RNase的PI，4 ℃染色30 min，經200目過濾后上機檢測. 1.3 統計學處理

2 結 果

2.1 MTT檢測數據統計分析：保護組OD值明顯高于損傷組，SSB2 100 μg/mL組OD值達最高峰，以后隨著SSB2濃度的增加，OD值下降其保護作用與劑量和作用時間相關。

2.2 流式細胞儀檢測細胞凋亡率：正常組細胞凋亡率為 0，損傷組凋亡率為40.28%，損傷保護組（SSB2濃度為100μg/mL）凋亡率為9.02%。各組細胞G1、G2、S期細胞分布變化很小，SSB2對CCl4損傷HepG2細胞有明顯的保護作用，對細胞周期沒有影響。

3 討 論

北柴胡（Bupleurum Chinense DC.）為傘形科（Umbelliferae）柴胡屬植物，具有和表解里及疏肝理氣之功效[2]。北柴胡主要有效成分有柴胡皂苷、柴胡醇、揮發油、三萜苷類及黃酮類等[3]，大量藥理與臨床研究證明SSB2具有多種藥理活性，具有抗炎、細胞毒、增強免疫、抑制脂肪分解、刺激PGE2的合成等多種作用[4,5]。目前，SSB2對肝細胞損傷保護作用方面的研究很少，HepG2細胞株與人正常肝細胞有許多共同生理功能，是較理想的肝細胞替代物。因此，本實驗以HepG2細胞株為研究對象，在CCl4損傷的HepG2細胞模型上初步探討SSB2對肝細胞損傷保護作用研究.

本研究結果表明，SSB2對CCl4損傷具有顯著的保護作用；流式細胞檢測結果顯示，SSB2保護組細胞凋亡率較損傷組下降77.59%，對細胞周期影響很小，MTT比色分析細胞活性結果顯示，保護組細胞活性顯著大于損傷組。提示SSB2對CCl4導致的肝細胞損傷具有顯著的保護作用，SSB2最佳保護濃度為100 μg/mL，為進一步開發利用北柴胡資源和研究SSB2對肝細胞損傷的保護作用和機制提供了實驗依據。

[1] 劉沁舡,譚利.柴胡屬皂苷近十年研究概況[J].中國中藥雜志,2002, 27(1):7.

[2] Delectis Florae Reipublicae Poularis Sinicae,Agendae Academiae Sinicae Edita.Flora reipublicae popularis sinica[M]. Tomus55.Beijing:Science Press,1979:7.

[3] 江蘇新醫學院.中藥大辭典(下冊)[M].上海:上海人民衛生出版社,1977:3763.

[4] Tsaiy J,Chen IL,Horng LY,et al.Induction of differention in rat C6 glioma cells with Saikosaponins [J].PhytotherRes,2002,16(2): 117.

[5] 謝東浩,蔡寶昌.柴胡皂苷類化學成分及藥理作用研究進展[J].南京中醫藥大學學報,2007,23(1):63-65.

R282

B

1671-8194（2014）22-0082-02

吉林省中醫藥管理局項目（編號：2010-152）

*通訊作者