薄其康 鄭小東① 王培亮 畢可智
(1.中國海洋大學水產學院 青島 266003;2.馬山集團有限公司 威海 264319;3.榮成市綠色食品辦公室 威海 264300)
長蛸(Octopus minor)又稱馬蛸、八腿蛸和八蛸等,隸屬頭足綱、八腕目、蛸科、蛸屬,廣泛分布于我國南北沿海、朝鮮半島和日本沿海(Yamamoto,1942;董正之,1988;錢耀森,2011),Octopus variabilis為同物異名(Luet al,2012)。長蛸個體較大,肉質鮮美,可食率很高,其生鮮及加工食品在海內外市場廣闊,是我國北方主要出口蛸類。近十幾年來,國內外對長蛸研究主要涵蓋組織學和組織化學(Iwakoshiet al,2000;許星鴻等,2008)、生態學(吳常文等,1995)、繁殖生物學(錢耀森等,2013)、生理(Seolet al,2007)、遺傳(孫寶超等,2010;Zuoet al,2011;Chenget al,2012)、營養分析(錢耀森等,2010)以及養殖(邵楚等,2011;劉暢,2013;Zhenget al,2014)等方面。長蛸作為資源修復種備受關注,2012年農業部批準建設山東榮成月湖長蛸國家級水產種質資源保護區,同時山東省級長蛸原種場也正在建設中。
長蛸以攝食甲殼類、貝類、環節動物等無脊椎動物、魚類為主,在各生長階段均體現出較強的攝食能力(Boletzkyet al,1983;董正之,1988)。光滑河藍蛤(Potamocorbula laevis)多生長在江河入海處,在我國南北沿岸均有廣泛的分布(張素萍,2008)。菲律賓蛤仔(Ruditapes philippinarum)是我國習見經濟貝類(王如才等,2008)。幼體培育是增養殖和資源修復的前期工作和重要環節,本研究使用這兩種價廉的經濟雙殼貝類培育長蛸初孵幼體,分析幼體生長的基本指標、相關關系并描述幼體生長規律,旨在為養殖產業化提供基礎數據,同時為培育增殖和資源修復用幼體提供新途徑。
2012年6—8月份在山東榮成月湖采捕長蛸親體916只,置于 5個室內水泥池(5.7m×2.7m×1.5m)中暫養,水深 0.5m,水溫 19.5—25.1°C,鹽度 28—31,遮光充氣,常流水,日換水量為總水體的 2倍,投放PVC管作為采卵器和遮蔽物。暫養49d后,親蛸陸續產卵。實驗所用幼體來自同一親蛸。將附著有受精卵的采卵器放在同樣的水泥池中流水孵化。孵化過程中有親體護卵。受精卵前期孵化是在3—18°C的自然水溫下進行,后期為11.8—13.4°C。
幼體培養在中國海洋大學養殖技術實驗室進行,采用 0.45m×0.35m×0.34m 玻璃缸培養幼體,水深0.25m,鹽度 28—31,pH 7.9—8.1,水溫(13±1)°C,自然光照。缸底鋪有 8mm左右厚的砂,投放足量的菲律賓蛤仔殼和脈紅螺殼作為幼體遮蔽物,砂和貝殼在使用前需清洗和消毒。放置遮蔽物時,蛤殼內側、螺的殼口朝下。每天吸底1次,每10d全量換水1次。
1—15d幼體投喂的是光滑河藍蛤,之后投喂菲律賓蛤仔。將孵化出的幼體分為A、B組,將其余還未孵化的分為C組。A、C組使用菲律賓蛤仔殼作為遮蔽物,B組使用脈紅螺殼作為遮蔽物。投喂前用解剖刀將蛤左右分開,將蛤肉暴露,每個殼附帶有部分蛤肉。每天投餌1次,18:00進行投喂,次天早上8:00收殘餌。每份蛤肉可以重復使用3次。
餌料溶失計算VW(%) =(Wf-Wi) /Wi×100%,Wi和Wf分別指未供幼體取食的餌料在溶水前后的重量。F=Wi/Wf,是用來計算攝食量的校正系數。
幼體培養 80d,每 10d取樣進行形態測量,包括鮮重(Wt)、全長(TL)、胴長(MLd)、胴背寬(MWd)、腕長(AL)以及吸盤數(SC)等。測量前先將幼體放在含有2%酒精海水中麻醉10min(Villanuevaet al,1997)。用吸水紙盡量吸干幼體表面和胴體腔中的海水,然后稱重;使用IMAGEJ軟件測量體長。用80%酒精固定24h,保存樣品。
培育期間,按照Koueta等(1999,2001)所描述的計算測定攝食量(FI)、攝食率(FR)、生長率(GR)、餌料效率(CER)、瞬時生長率(IGR)和成活率(SR)等,公式如下:

式中,W1和W2分別表示餌料被攝食前后質量,Wt1和Wt2分別表示幼體上次稱量的鮮重與10d后再次稱量時的鮮重,所以GR為旬生長率;Nt1和Nt2分別表示上次取樣后與10d后再次取樣前蛸幼體只數,SR為旬成活率。
采用SPSS 16.0統計分析。回歸分析顯著性運用F檢驗法檢驗。用單因素方差分析(ANOVA)比較同時期不同組生長狀況,并運用 Duncan’s多重極差檢驗方法進行多重比較。
初孵幼體體表光滑,具極細的色素色斑,TL=(44.97±3.76)mm(40.7—47.8mm,n=3);胴體呈長卵圓形,MLd =(10.31±0.08)mm(10.3—10.8mm,n=3),為TL的 22.22%,是MWd的1.31倍(圖1a)。各腕長不等,第一對腕最長,約為胴長的 2.9倍;腕式 1 >2 > 3 > 4,吸盤兩列。
幼體白天多躲避在遮蔽物下,時而將腕伸出遮蔽物四處視探,晚上取食。夜間能觀察到幼體趴伏在蛤肉上進行攝食(圖1b),白天收殘餌時會發現蛤軟體部僅剩外套膜(圖1c,圖1d)。若遇有光照刺激,幼體有噴墨現象。實驗中還觀察到幼體間的互殘現象(圖1e)。
由于各組培養幼體數量不同加之實驗定期采樣,B、C組分別培養了60d和35d,A組培養時間最長,為80d。幼體旬成活率比較穩定且比較高,70d中幼體旬成活率約在72.7%以上,B組40—60d和C組20—30d階段幼體幾乎不死亡;幼體 30d總成活率 80.99%,50d為 65.61%,70d為54.65%,80d成活率迅速降低至18.70%。
三組幼體MLd/TL比隨時間增加,表明胴體的增長快于腕。以A組為例(圖2,圖3),0—80d的培育中,幼體MLd和TL分別由10.1mm和45.0mm增加到15.3mm和56.5mm,增長率分別為51.04%和25.53%,兩者比值由0.224增加到0.271;MLd/TL比前50d增加慢,平均比值為0.224,50—80d比值增加快,平均為 0.263。1—80d各腕吸盤數(SC)變化不顯著,各腕SC范圍分別為第一對腕 50—72,第二對腕 49—64,第三對腕 36—62,第四對腕 36—52;第三對腕與第四對腕SC相近。
幼體餌料效率(CER)、攝食率(FR)和生長率(GR)隨時間波動,幼體FR在0.90—3.38/10d,CER最高為29.29%。在前27d培養幼體平均生長率10.63%/10d,前50d幼體平均生長率7.86%/10d。在幼體培育的過程中,可明顯看出FR與CER、GR呈負相關關系(圖4,圖5)。CER與 GR呈極顯著線性回歸關系(P<0.01),y= 1.452x-2.731(R2=0.865)(圖6)。經過80d培養,幼體最終生長率為 122.05%,平均生長率為9.97%/10d。

圖1 長蛸幼體80d培育Fig.1 The 80d hatching rearing of O.minor

圖2 A組長蛸幼體胴長及胴長/全長值變化Fig.2 The trends of MLd and MLd/TL of A group

圖3 A組長蛸幼體腕吸盤平均數Fig.3 The amount of SC in Group A

圖4 長蛸幼體攝食率與餌料效率Fig.4 The FR and CER of O.minor’s hatchings

圖5 長蛸幼體餌料效率與生長率的關系Fig.5 The relation between CER and GR of O.minor’s hatchings
初孵幼體平均鮮重(Wt)(0.322±0.006)g(0.316—0.327g,n=3)。幼體Wt隨培養時間(t)增加而增加,Wt與培養天數呈指數函數關系,A、C組Wt與培養天數關系Wt = 0.294e0.010t(R2=0.894,P<0.01),B組平均鮮重與培養天數關系為 Wt = 0.316e0.010t(R2= 0.872,P<0.01),幼體總體生長曲線為 Wt = 0.301e0.010t(R2=0.854,P<0.01)。
在培養中,雖然B組中個體鮮重與A、C組無顯著差異,但其平均值均大于 A組(表1),表明螺殼作為遮蔽物有利于幼體培養。

圖6 長蛸幼體鮮重變化Fig.6 The trends of Wt of O.minor’s hatchings

表1 3組幼體平均鮮重的比較Tab.1 The comparison between the hatchings of O.minor at same stage from 3 groups
長蛸喜陰暗和安靜環境,通常會隱蔽躲藏。錢耀森(2011)和劉暢(2013)分別使用蛤蜊殼、牡蠣殼、海藻以及空心陶瓷墜作為遮蔽物,錢耀森(2011)認為海藻不僅起到遮蔽物的效果,而且海藻中的小生物還能作為幼蛸餌料;劉暢(2013)認為由于蛤蜊殼內常聚集多只幼體,易爭斗,影響幼體成活率,其效果不如陶瓷墜。本實驗所用菲律賓蛤仔殼和螺殼作遮蔽物,結果表明后者效果更好(表1)。
本文還在玻璃缸底鋪了砂,由于幼體的活動,殼下會形成凹陷的小砂坑,白天幼體就藏匿在砂坑與殼形成的空間中,并借殼邊緣留出的縫隙吸入和呼出海水,也起到了一定的遮蔽作用。
Octopus pallidus是一種底棲種類,體重、體長和生活史與長蛸相當,且其初孵幼體底棲,鮮重(0.230g)與長蛸初孵幼體相似。Leporati等(2007)和 André等(2008)在水溫14—16°C下培育O.pallidus,平均生長率(GR)分別得到13.8%/10d和14.3%/10d。本文使用光滑河藍蛤和菲律賓蛤仔作為長蛸幼體開口和后期餌料,在水溫 11.8—13.4°C 下,50d幼體的 GR 為7.86%/10d,較前者低,遠低于在培育水溫 21°C下使用蟹苗作開口餌料得到的 GR值 4.63%/d(劉暢,2013),但是幼體成活率(30d總成活率80.99%,50d總成活率65.61%)高于后者(47天的成活率45.4%)。
GR和FI是隨培育溫度升高而增加的(Segawaet al,2002;Semmenset al,2004),本作者認為使用光滑河藍蛤作為餌料,幼體平均生長率偏低可能與培育溫度有一定關系。此外,可能與餌料自身營養或長蛸幼體對食物喜好有關。
Smale等(1981)認為甲殼類和魚類的混合餌料對蛸類最合適。邵楚等(2011)指出投喂招潮蟹,長蛸攝食穩定,生長快,特定生長率及餌料轉化率高,活動力強。長蛸幼體的后期培育仍然選用藍蛤和菲律賓蛤仔,結果顯示長蛸幼體能夠攝食兩種蛤,這兩種雙殼貝類能維持長蛸幼體的基本生長和能量所需。
錢耀森(2011)按 5—10個/mL鹵蟲無節幼體和1—2個/mL橈足類混合作為長蛸幼體的開口餌料,并在幼體13d以后逐漸增加橈足類和蟹苗的比例,效果較好。本實驗使用光滑河藍蛤和菲律賓蛤仔作為開口餌料,可以滿足幼體攝食需要。藍蛤可以讓初孵幼體度過開口期,比蝦、蟹幼體等活餌料低廉,易持續獲得,特別是在冬季培育幼體階段。但兩種貝類作為后期餌料,效果不是很理想。
長蛸初孵幼體的形態結構與成體接近。幼體腕長(AL)約為胴長(MLd)的 2.9倍,而成體腕長約為胴長的 6—7倍(董正之,1988)。幼體胴長占全長的比(MLd/TL)是隨著培養天數增加的(圖2),幼體MLd增長率(51.04%)大于 TL增長率(25.53%),且幼體腕吸盤數無顯著變化(圖3),表明幼體初期生長主要集中在胴體生長,可能與幼體在此階段內臟器官的發育有關,如消化器官的發育(Moguelet al,2010)。也許幼體下一階段的生長中會集中在腕的生長,尚需進一步驗證。
長蛸幼體 Wt與培養天數(t)呈指數函數關系(圖6),與O.pallidus生長函數相似(Andréet al,2008),同時也發現了FR與CER的負相關關系(圖4)。André等(2008)認為頭足類的生長主要包括肌纖維的增生和增粗兩個過程,肌纖維增生耗能多,增重不明顯;而增粗耗能少,增重明顯。此外,劉暢(2013)在人工飼養 110d后,可根據有無莖化腕判斷長蛸性別。本實驗經過80d的養殖,沒有觀察到莖化腕。
蛸類存在相互殘食現象。Promboon等(2011)在室內研究砂蛸全生活史時發現在 0—70d容易發現幼體的互殘。王衛軍等(2009)認為短蛸自身相殘的行為是遺傳行為,可能是由基因控制的,環境因素屬于次要原因,但是這些因素不良時可以加劇相殘行為。本文作者目睹一只活力強的幼體趴伏在活力弱的個體上進行咬食(圖1d),此外觀察到的殘缺眼睛或只剩部分頭的殘體也進一步證明存在互殘現象。本文認可由于餌料單一或營養缺乏引發幼體間相殘(錢耀森,2011)。相殘造成受傷幼體個體傷口感染,增加死亡率,此外,后期樣本量基數減小,稍有個體死亡便會引起高的死亡率,這是后期死亡率增加的直接原因。
王衛軍,楊建敏,周全利等,2009.短蛸幼體同類相殘行為的觀察.水產養殖,30(10):14—18
王如才,王昭萍,2008.海水貝類養殖學.青島:中國海洋大學出版社,376—395
劉 暢,2013.長蛸生活史養殖技術研究.青島:中國海洋大學碩士學位論文,18—20
許星鴻,閻斌倫,鄭家聲等,2008.長蛸生殖系統的形態學與組織學觀察.動物學雜志,43(4):77—84
孫寶超,楊建敏,孫國華等,2010.中國沿海長蛸(Octopus variabilis)自然群體線粒體.海洋與湖沼,41(2):259—265
吳常文,呂永林,1995.浙江北部沿海長蛸Octopus variabilis生態分布初步研究.浙江水產學院學報,14(2):148—150
張素萍,2008.中國海洋貝類圖鑒.北京:海洋出版社,356
邵 楚,王 亞,王春琳,2011.3種餌料對暫養長蛸生長的影響.水產科學,30(3):140—143
錢耀森,2011.長蛸生態習性和人工育苗技術研究.青島:中國海洋大學碩士學位論文,49—53
錢耀森,鄭小東,王培亮等,2010.天鵝湖長蛸營養成分的分析及評價.海洋科學,34(12):14—18
錢耀森,鄭小東,劉 暢等,2013.人工條件下長蛸(Octopus minor)繁殖習性及胚胎發育研究.海洋與湖沼,43(1):165—170
董正之,1988.中國動物志 軟體動物門 頭足綱.北京:科學出版社,181—182
André J,Pecl G T,Semmens J Met al,2008.Early life-history processes in benthic octopus:Relationships between temperature,feeding,food conversion,and growth in juvenileOctopus pallidus.Journal of Experimental Marine Biology and Ecology,354(1):81—92
Boletzky S V,Hanlon R T,1983.A review of the laboratory maintenance,rearing and culture of cephalopod mollusks.Memoirs of the National Museum Victoria,44:147—187
Cheng R,Zheng X,Lin Xet al,2012.Determination of the complete mitochondrial DNA sequence ofOctopus minor.Molecular Biology Reports,39(4):3461—3470
Iwakoshi E,Hisada M,Minakata H,2000.Cardioactive peptides isolated from the brain of a Japanese octopus,Octopus minor.Peptides,21(5):623—630
Koueta N,Boucaud-Camou E,1999.Food intake and growth in reared early juvenile cuttlefishSepia officinaliL.(Mollusca Cephalopoda).Journal of Experimental Marine Biology and Ecology,240(1):93—109
Koueta N,Boucaud-Camou E,2001.Basic growth relations in experimental rearing of early juvenile cuttlefishSepia officinalisL.(Mollusca:Cephalopoda).Journal of Experimental Marine Biology and Ecology,265(1):75—87
Leporati S C,Pecl G T,Semmens J M,2007.Cephalopod hatchling growth:the effects of initial size and seasonal temperatures.Marine Biology,151(4):1375—1383
Lu C C,Zheng X D,Lin X Z,2012.Diversity of Cephalopoda from the waters of the Chinese mainland and Taiwan.見:林 茂,王春光主編.第一屆海峽兩岸海洋生物多樣性研討會文集.北京:海洋出版社,76—87
Moguel C,Mascaró M,Avila-Poveda O Het al,2010.Morphological,physiological and behavioral changes during post-hatching development ofOctopus maya(Mollusca:Cephalopoda) with special focus on the digestive system.Aquatic Biology,9(1):35—48
Promboon P,Nabhitabhata J,Duengdee T,2011.Life cycle of the marbled octopus,Amphioctopus aegina(Gray)(Cephalopoda:Octopodidae) reared in the laboratory.Scientia Marina,75(4):811—821
Segawa S,Nomoto A,2002.Laboratory growth,feeding,oxygen consumption and ammonia excretion ofOctopus ocellatus.Bulletin of Marine Science,71(2):801—813
Semmens J M,Pecl G T,Villanueva Ret al,2004.Understanding octopus growth:patterns,variability and physiology.Marine and Freshwater Research,55:367—377
Seol D W,Lee J,Im S Yet al,2007.Clove oil as an anesthetic for common octopus(Octopus minor,Sasaki).Aquaculture Research,38(1):45—49
Smale M,Buchan P,1981.Biology ofOctopus vulgarisoff the east coast of South Africa.Marine Biology,65(1):1—12
Yamamoto T,1942.On the ecology ofOctopus variabilis typicus(Sasaki),with special reference to its breading habits.The Malacological Society of Japan,12(1—2):9—20
Zheng X D,Qian Y S,Liu Cet al,2014.Chapter 22Octopus minor.In:Cephalopod Culture,Iglesias J,Lidia F &Villanueva R eds.Springer,415—426
Zuo Z R,Zheng X D,Yuan Yet al,2011.Development and characterization of 12 polymorphic microsatellite loci inOctopus minor(Sasaki,1920).Conservation Genetics Resources,3(3):489—491