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FS H 對體外培養仔豬睪丸支持細胞CyclinA 2表達的影響

2014-03-11 05:22:48張會瓊張姣姣王鮮忠張家驊
中國獸醫雜志 2014年9期
關鍵詞:影響

張會瓊,孫 思,張姣姣,王 怡,王鮮忠,張家驊

(西南大學動物科技學院重慶市牧草與草食家畜重點實驗室,重慶 北碚400716)

睪丸支持細胞的增殖能力是決定雄性動物生精能力的重要因素,促卵泡素(FSH)是調節睪丸支持細胞增殖最重要的激素。Walker 等[1]和我們前期的研究發現,在睪丸支持細胞中,FSH 與受體結合后,能通過激活cAMP-PKA、Ca2+、ERK 等多條信號通路調節支持細胞的增殖,但具體影響哪些基因的表達還不清楚。細胞中的細胞周期素A(Cyclin A)控制著細胞DNA 合成的起始,其表達量的變化對于細胞周期的進程有著十分重要的影響[2],Cyclin A2 主要表達于各類體細胞[3],是細胞周期素依賴的蛋白激酶1(Cyclin-dependent kinases,Cdk1)及Cdk2 的調節亞基,啟動并控制著DNA 的復制[4]。FSH 是否可以通過影響CyclinA2 的表達進而影響睪丸支持細胞的增殖仍不清楚。本試驗利用體外培養的仔豬睪丸支持細胞,研究FSH 是否通過cAMP、Ca2+內流和ERK1/2調節CyclinA2表達的機制,為進一步認識FSH調節體外培養仔豬睪丸支持細胞增殖的分子機制奠定基礎。

1 材料與方法

1.1 主要試劑和實驗材料 DMEM/F-12 Hams、胎牛血清和VI 型膠原酶(Gibco 公司);胰蛋白酶、FSH、Foskolin、U0126 和RP-cAMP(Sigma 公司);Ca2+通道抑制劑Verapamil(ALEXIS),熒光定量PCR 試劑及SYBR GreenⅠ(Invitrogen);RNApreP pure cell 總RNA提取kit 和TIANScript RT Kit(TIANGEN BIOTECH);其余均為國產分析純,購自北京鼎國昌盛生物技術有限責任公司。仔豬睪丸采自重慶本地2~3 周齡長白仔豬。

1.2 細胞培養 仔豬睪丸支持細胞的分離培養方法按我們前期建立的方法進行[5-6]。

1.3 不同濃度的FSH 對CyclinA2 mRNA 表達的影響 細胞培養至48 h 左右用不同濃度的FSH(0-100 ng/L)處理30 min,收集細胞提取RNA,檢測CyclinA2 mRNA 的豐度。

1.4 FSH 作用不同時間對CyclinA2 mRNA 表達的影響 細胞培養至48 h 左右用FSH(50 ng/mL)處理0,5,30,60,90 min,收集細胞提取RNA,檢測CyclinA2 mRNA 的豐度。

1.5 cAMP、Ca2+對FSH 誘導CyclinA2 mRNA 的豐度表達的影響 細胞培養至48 h 左右,用FSH(50 ng/mL)、Foskolin(10 μmol/L),RP-cAMP(10 μmol/L)或Ca2+通道抑制劑Verapamil(0.05 mg/mL)處理30 min,RP-cAMP 或Verapamil 在FSH 處理前2 h 加入,收集細胞提取RNA,檢測CyclinA2 mRNA 的豐度。

1.6 ERK1/2 對FSH 誘 導CyclinA2 mRNA 表達的影響 細胞培養至48 h左右,用FSH(50 ng/mL)、U0126(10 μmol/L)、FSH+U0126 處理30 min,并作空白對照,U0126 在FSH 處理前2 h 加入,收集細胞提取RNA,檢測CyclinA2 mRNA 的豐度。

1.7 熒光定量PCR 將收集的細胞用RNApreP pure cell 總RNA 提取kit 進行總RNA 提取,并通過電泳進行RNA 純度鑒定。用TIANScript RT Kit 進行逆轉錄反應,18S rRNA作為內參照進行實時熒光定量PCR分析,每個樣品設3 個重復,具體方法按試劑盒的說明書進行。引物信息如表1。

表1 引物序列

1.8 統計分析 每組數據設3 個重復,結果以X±SE表示,用SPSS 16.0 One way ANOVA 和Tukey′s post hoc test 進行統計分析,P<0.05 確定為差異顯著,圖中不同的字母表示差異顯著。

2 結果

2.1 不同濃度的FSH對CyclinA2 mRNA 表達的影響

從圖1 可以看出,在0-50 ng/mL 內,隨著FSH 濃度的增加,CyclinA2 mRNA 的表達明顯增強(P<0.05);當FSH濃度為50 ng/mL,CyclinA2 mRNA的表達量與對照相比增加了8.58 倍,但是當FSH濃度增加到100 ng/mg 時,CyclinA2 mRNA 的表達量與加入FSH 前相比只增加了8.38 倍(P<0.05)。

圖1 不同濃度的FS H 對C yclinA 2mR NA 表達的影響

2.2 FSH 作用不同時間對CyclinA2 mRNA 的影響

從圖2 可以看出,作用15 min 后,CyclinA2 的表達量增加了4.86 倍(P<0.05);30 min 時與對照相比,CyclinA2 的表達量增加了9.03 倍(P<0.05);此后CyclinA2 的表達量有所下降,到90 min 時,CyclinA2的表達量僅為對照的4.38 倍(P<0.05)。

圖2 FS H 作用不同時間對C yclinA 2mR NA 的影響

2.3 cAMP、Ca2+在FSH 誘導支持細胞表達CyclinA2 mRNA中的作用 從圖3 可以看出,Forskolin 顯著促進了CyclinA2的表達,與對照相比增加了8.87倍(P<0.05),但與單獨的FSH作用無顯著差異(P>0.05)。Rp-cAMP、Verapamil 降低了FSH 誘導的支持細胞的CyclinA2 mRNA 的表達,與僅加入FSH 相比分別降低了27.97%、32.90%(P<0.05),同時加入Rp-cAMP、Verapamil 抑制作用明顯增強,CyclinA2 mRNA 的表達量與僅加入FSH 相比下降了61.26%(P<0.05),單獨添加Rp-cAMP、Verapamil 對CyclinA2 mRNA 的表達無明顯影響(P>0.05)。

2.4 ERK1/2 在FSH 誘導CyclinA2 mRNA 表達中的作用 從圖4 可以看出,單獨添加ERK1/2 的抑制劑U0126 與空白相比對CyclinA2 的表達無顯著差異(P>0.05),當U0126 與FSH 共同作用時顯著抑制FSH 誘導的CyclinA2 的表達,與僅有FSH 作用時相比降低了45.09%(P<0.05)。

圖3 cA M P、C a2+在FS H 誘導支持細胞表達C yclinA 2mR NA 中的作用

圖4 ER K 1/2在FS H 誘導支持細胞表達C yclinA 2mR NA 中的作用

3 討論與結論

體內試驗表明,FSH 能夠促進仔豬睪丸支持細胞的增殖[7-8]。本試驗發現,FSH 以劑量和時間依賴的方式促進睪丸支持細胞CyclinA2 mRNA 的表達,并且在50 ng/mL、作用30 min 時到達高峰;隨著FSH濃度和作用時間進一步增加,其表達量反而呈下降趨勢,這可能與FSH 在不同濃度和時間的條件下激活cAMP-ERK1/2 等信號通路,而ERK1/2 在細胞周期中的活性具有一定的周期性有關[6-9],這與FSH 能通過激活cAMP-PKA、Ca2+、ERK 等多條信號通路促進支持細胞的分裂增殖相一致[9]。

本試驗中添加cAMP促進劑Forskolin(10 μmol/L)使CyclinA2 mRNA的表達量增加,而加入cAMP 的抑制劑Rp-cAMP 則使CyclinA2 mRNA 的相對表達量下降,這表明FSH 通過影響細胞中cAMP 的水平,進而誘導了CyclinA2 的表達,這與我們前期的研究結果顯示細胞內一定濃度的cAMP 能調節Rb 的磷酸化,進而影響細胞的增殖有關相一致[9]。

Ca2+內流在FSH 調節睪丸支持細胞功能中發揮了重要作用[9]。本試驗中,在FSH 處理細胞前加入Ca2+通道抑制劑Verapamil 后,CyclinA2 mRNA 的表達量降低,這表明Ca2+可能參與了FSH 調節CyclinA2 mRNA 的表達過程。而同時添加Rp-cAMP 和Verapamil 后,CyclinA2 的表達量降低得更明顯,表明cAMP-PKA途徑和Ca2+通道途徑對FSH調節CyclinA2 mRNA 表達可能具有協同作用,這與我們前期試驗發現Rp-cAMP 和Verapamil 在ERK1/2 的激活和細胞增殖方面具有一定協同效應的結果相一致[9]。

試驗結果還發現,ERK1/2 的抑制劑U0126 顯著抑制了FSH 誘導CyclinA2 的表達,這表明ERK1/2 途徑也參與了FSH誘導CyclinA2 的表達。這可能是因為FSH能夠引起ERK1/2的磷酸化,而加入U0126后,阻斷了ERK1/2的活性,進而抑制Rb的磷酸化所致。我們前期的研究也表明,在仔豬睪丸支持細胞中,FSH主要通過MEK-ERK-RSK級聯的途徑激活ERK1/2,而且ERK1/2參與了細胞增殖的調節[9]。因此,FSH能夠誘導支持細胞產生較低水平的cAMP,cAMP 可以激活細胞內的ERK1/2,活化的ERK1/2 可能影響Rb 磷酸化和后續翻譯水平,從而促進了CyclinA2 mRNA 的表達。

[1] Walker W H,Cheng J.FSH and testosterone signaling in Sertoli cells[J].Reproduction,2005,130(1):15-28.

[2] Brown N R,Lowe E D,Petri E,Skamnaki V,Antrobus R,Johnson LN.Cyclin B and cyclin A confer different substrate recognition properties on CDK2 [J].Cell Cycle ,2007,6:1350-1359.

[3] Malumbres M,Barbacid M.Mammalian cyclin-dependent kinases[J].Trends Biochem Sci,2005,30:630-641.

[4] 劉葉.靶向cyclinA2 基因的小干擾RNA 對骨肉瘤細胞增殖的抑制作用[D].杭州:浙江大學,2007.

[5] Wang X Z,Zhao B C,Zhou Y L,et al . 17 beta-Estradiol Regulates Cultured Immature Boar Sertoli Cell Proliferation via the cAMPERK1/2 Pathway and the Estrogen Receptor beta[J].Agricultural Sciences in China,2010,9(8):1201-1210.

[6] Mccoard S A,Lunstra D D,Wise T H,et al . Specific staining of Sertoli cell nuclei and evaluation of Sertoli cell number and proliferative activity in Meishan and White Composite boars during the neonatal period[J].Biol Reprod,2001,64(2):689-695.

[7] Baines H,Nwagwu M O,Hastie G R,et al.Effects of estradiol and FSH on maturation of the testis in the hypogonadal (hpg) mouse[J].Reprod Biol Endocrinol,2008,6:4.

[8] Crepieux P,Marion S,Martinat N,et al.The ERK-dependent signalling is stage-specifically modulated by FSH,during primary Sertoli cell maturation[J].Oncogene,2001,20(34):4696-4709.

[9] 王鮮忠,周玉蘭,趙伯川,等.FSH 通過cAMP、Ca2+調節仔豬睪丸支持細胞的增殖[J].畜牧獸醫學報,2010,41(10):1240-1245.

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