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NF-κB 信號通路在魚類先天性免疫中的作用

2014-03-17 11:46:38楊冰貞,張民,王克堅(jiān)
生物技術(shù)通報 2014年1期
關(guān)鍵詞:信號研究

NF-κB 信號通路在魚類先天性免疫中的作用

楊冰貞 張民 王克堅(jiān)
(廈門大學(xué) 近海海洋環(huán)境科學(xué)國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,廈門 361102)

NF-κB(nuclear factor κB)是一種廣泛存在的核轉(zhuǎn)錄因子。經(jīng)不同刺激信號激活后,參與多種免疫反應(yīng)相關(guān)基因的表達(dá)調(diào)控,對魚類先天性免疫調(diào)節(jié)起著十分重要的作用。對魚類NF-κB的結(jié)構(gòu)、功能及其信號傳導(dǎo)途徑進(jìn)行概述,并對NF-κB信號通路在魚類先天性免疫調(diào)節(jié)中的作用進(jìn)行綜述。

NF-κB信號通路 魚類 先天性免疫

核轉(zhuǎn)錄因子NF-κB是廣泛存在于真核細(xì)胞內(nèi)的重要調(diào)節(jié)蛋白,是免疫系統(tǒng)機(jī)制的活化劑[1],在Toll樣受體(Toll-like receptors,TLRs)識別病原相關(guān)分子模式后,通過依賴MyD88或TRIF信號傳導(dǎo)通路,轉(zhuǎn)錄因子NF-κB被誘導(dǎo)激活,從而啟動固有免疫和適應(yīng)性免疫而抵御病原的入侵。許多研究表明,它可以被細(xì)胞因子(如TNF、IL-1)、細(xì)菌、病毒、免疫刺激劑等多種刺激物及紫外線所激活。

魚類兼具先天性與獲得性免疫,但獲得性免疫應(yīng)答效率低且發(fā)生相對滯后,因此先天性免疫在魚類免疫防御反應(yīng)中起著重要的作用。對魚類先天性免疫調(diào)控機(jī)制研究逐漸成為熱點(diǎn)。魚類NF-κB調(diào)控研究尚處于初級階段,其信號通路中的免疫相關(guān)基因及具體的調(diào)控機(jī)制研究尚不深入。免疫系統(tǒng)識別抗原并通過NF-κB傳遞信息,使得這個可誘導(dǎo)轉(zhuǎn)錄因子受到越來越廣泛的關(guān)注。

1 NF-κB家族

NF-κB是一種從昆蟲到人類,進(jìn)化上保守的核轉(zhuǎn)錄因子[2]。在許多物種中都發(fā)現(xiàn)了NF-κB活化的信號通路和NF-κB介導(dǎo)的免疫功能。哺乳動物中已經(jīng)鑒定了NF-κB家族5個成員:RelA、RelB、c-Rel、p105/p50(NF-κB1)和p100/p52(NF-κB2)[3]。非洲爪蟾也已報道有NF-κB1、p65、RelB和c-rel基因的存在[4-7]。在哺乳動物中已經(jīng)證明NF-κB對免疫和炎癥反應(yīng)起調(diào)節(jié)作用[8]。而果蠅的Dorsal,Dif和Relish在調(diào)節(jié)不同類型的抗菌肽基因的表達(dá)方面也起著關(guān)鍵的作用[9]。近年來,魚類免疫防御相關(guān)轉(zhuǎn)錄因子NF-κB的研究越來越受關(guān)注。已從鱖魚(Siniperca chuatsi),河豚(Takifugu rubripes),淡水青鳉魚(Oryzias latipes),牙鲆(Paralichthys olivaceus)以及金眼門齒鯛(Stenotomus chrysops)等魚類中被分離出NF-κB家族成員。斑馬魚(Danio

rerio)中鑒別出p65,p100/p52,RelB,c-Rel和p50五個家族成員。且斑馬魚NF-κB/IκB蛋白序列分析表明與哺乳動物具有高度相似性,體現(xiàn)了NF-κB家族在進(jìn)化上的保守性[10]。

NF-κB家族蛋白N端都含一個高度保守RHD結(jié)構(gòu)域(Rel-homology domain),與蛋白的二聚化、DNA結(jié)合以及與抑制蛋白IκB相作用等功能有關(guān)。RelA、RelB和c-Rel則在C端有轉(zhuǎn)錄激活域(Transactivation domain,TAD), 而 NF-κB1和 NF-κB2沒有[11]。鱖魚p65/IκBα序列比對發(fā)現(xiàn)它們與其他脊椎動物具有相似的結(jié)構(gòu)域和功能位點(diǎn),蛋白模型分析也發(fā)現(xiàn)與人類的相應(yīng)蛋白有相同的折疊結(jié)構(gòu)[12]。NF-κB通過二聚化形成同源或異源二聚體來對不同刺激進(jìn)行特異性應(yīng)答,可誘導(dǎo)的形式是異源二聚體。其中p50/p65異源二聚體具有最普遍的NF-κB結(jié)合活性[13]。

2 魚類中受NF-κB調(diào)控的靶基因

NF-κB調(diào)控著病原應(yīng)答網(wǎng)絡(luò)中許多位點(diǎn)上誘導(dǎo)物和效應(yīng)物的表達(dá)。許多基因的啟動子序列或增強(qiáng)子序列上都能識別到NF-κB響應(yīng)的位點(diǎn)(κB結(jié)合位點(diǎn))(表1),表明NF-κB是一種多效性的轉(zhuǎn)錄因子。這些基因包括免疫和炎癥密切相關(guān)的細(xì)胞因子、急性相響應(yīng)蛋白、細(xì)胞黏附蛋白[14,15]和誘導(dǎo)性一氧化氮合酶等效應(yīng)分子。近年來在魚類研究中發(fā)現(xiàn)抗菌肽hepcidin和β-defensin也受到NF-κB的調(diào)控影響。且研究發(fā)現(xiàn),NF-κB的誘導(dǎo)激活能夠增強(qiáng)免疫應(yīng)答。從表1所列的κB位點(diǎn)發(fā)現(xiàn)在不同物種和基因中NF-κB結(jié)合位點(diǎn)有所差別,這種差別導(dǎo)致了與NF-κB結(jié)合時有不同的親和力,從而特異性調(diào)控基因表達(dá)。

表 1 啟動子區(qū)含NF-κB結(jié)合序列的免疫相關(guān)基因

在目前報道的魚類研究中,受到NF-κB調(diào)控的靶基因主要包括以下幾個方面:

(1)細(xì)胞因子、促炎癥因子。NF-κB通路是先天免疫系統(tǒng)中細(xì)胞信號通路激活的核心[16]。在先天性免疫應(yīng)答中,宿主首先釋放細(xì)胞因子和其他調(diào)節(jié)因子防御病原體的入侵。魚類NF-κB通過對IL-6、IL1β[17]、IL-12[18]和TNFα等基因的表達(dá)調(diào)節(jié),在免疫應(yīng)答中發(fā)揮功能。(2)急性反應(yīng)蛋白。如血清淀粉樣蛋白A(Serum amyloid A,SAA)[19]、Mx1[20,21]、C9、抗菌肽hepcidin,防御素β-defensin等。NF-κB對急性蛋白表達(dá)的調(diào)節(jié)是應(yīng)激的一種重要變化,具有廣泛的免疫防御意義。(3)細(xì)胞表面受體:Toll樣受體如TLR5等[22,23]。

特定基因的轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié)往往是需要多個轉(zhuǎn)錄因子協(xié)同作用的。NF-κB并不是調(diào)節(jié)靶基因的唯一轉(zhuǎn)錄因子,它還能與其他的轉(zhuǎn)錄因子如活化蛋白-1(AP-1)共同起著調(diào)節(jié)作用[24]。許多轉(zhuǎn)錄因子啟動子序列中也發(fā)現(xiàn)了NF-κB結(jié)合位點(diǎn),由此NF-κB可活化其他轉(zhuǎn)錄因子進(jìn)一步調(diào)節(jié)基因的表達(dá)。

3 NF-κB信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路

3.1 NF-κB的激活機(jī)制

已發(fā)現(xiàn)NF-κB信號通路存在于各物種中,且非常保守[25]。其激活機(jī)制主要依賴于IκB蛋白磷酸化所誘導(dǎo)的泛素化蛋白的水解作用。胞質(zhì)中NF-κB與IκB蛋白相結(jié)合而處于非活性狀態(tài)。當(dāng)胞外刺激通過細(xì)胞膜上的模式識別受體激活蛋白激酶,引起IκB發(fā)生磷酸化而與NF-κB解離。游離IκB在泛素化蛋白的作用下被降解,NF-κB二聚體因其NLS的暴露被迅速介導(dǎo)進(jìn)入細(xì)胞核,與免疫調(diào)節(jié)基因的特異序列結(jié)合介導(dǎo)各種細(xì)胞因子和共刺激因子的表達(dá)。

3.2 NF-κB的抑制蛋白IκB

IκB家族蛋白包括IκBα,IκBβ,κBγ,IκBε和

Bcl-3。IκB蛋白的特征是含有5-7個錨定蛋白重復(fù)結(jié)構(gòu)ANKs。這些錨定蛋白重復(fù)序列和NF-κB的Rel同源結(jié)構(gòu)域相互作用,覆蓋了NF-κB上的核定位序列(Nuclear localization sequence,NLS), 使NF-κB滯留于細(xì)胞質(zhì)中。其中對IκBα的研究最多,認(rèn)為其在抑制NF-κB中起主要作用。

與高等脊椎動物和果蠅相比,對魚類IκBα蛋白的研究報道為數(shù)甚少[26-28]。盡管在一些魚類中已鑒定出了IκBα樣基因序列,但是也僅限于對虹鱒(Oncorhynchus mykiss)、斑馬魚、牙鲆和鱖魚的研究,且大多止于轉(zhuǎn)錄水平的研究,少有功能研究[10,27-29]。在免疫信號通路中,NF-κB的轉(zhuǎn)錄活性往往受到嚴(yán)格調(diào)控,因?yàn)檫^度的激活會對宿主造成損傷,因而需要負(fù)調(diào)節(jié)方式來保證信號傳導(dǎo)的平衡。而細(xì)胞核和細(xì)胞質(zhì)中蛋白IκB的調(diào)節(jié)是阻止NF-κB激活的機(jī)制之一[30]。已報道斑馬魚NF-κB能與哺乳動物IκBα發(fā)生結(jié)合作用,且在LPS的刺激下,顯性抑制蛋白IκB的過表達(dá)阻斷了NF-κB活性。Zhang等[31]研究表明在舌鰨(Cynoglossus semilaevis)中存在受IκBα負(fù)反饋調(diào)節(jié)的NF-κB-IκBα途徑。而Wang等[28]則采用免疫共沉淀法研究了鱖魚p65與IκBα的結(jié)合作用,同時發(fā)現(xiàn)IκBα基因上游調(diào)控區(qū)包含NF-κB結(jié)合位點(diǎn) 。這表明NF-κB可使IκBα基因表達(dá)上調(diào),新合成的IκBα又抑制了NF-κB活性。從而,IκBα通過一個自身的負(fù)反饋調(diào)節(jié)機(jī)制保證了NF-κB活性的關(guān)閉,以維持細(xì)胞的穩(wěn)定性。

3.3 Toll樣受體介導(dǎo)的NF-κB激活

Toll-NF-κB途徑是機(jī)體免疫反應(yīng)調(diào)節(jié)的關(guān)鍵信號通路。Toll樣受體是位于細(xì)胞表面的模式識別受體,其介導(dǎo)激活的轉(zhuǎn)錄因子NF-κB信號途徑可特異性對各種病原體作出應(yīng)答。不同病原體激活NF-κB信號通路往往涉及不同的支架蛋白和信號蛋白。許多脊椎動物有不止一種TLR的報道[32],目前在魚類中已經(jīng)發(fā)現(xiàn)了19種TLR[33]。其中魚類特有的TLR基因(如TLR21、TLR22和TLR23)是在進(jìn)化過程中保留下來的重要基因,具有重要研究價值。在哺乳動物中,膜結(jié)合的TLR5識別細(xì)菌的鞭毛蛋白成分,并通過MyD88途徑激活鞭毛介導(dǎo)的NF-κB。然而,與哺乳類僅存在單一受體系統(tǒng)不同,虹鱒的細(xì)菌鞭毛識別可通過膜型和可溶型TLR5兩種受體。體外試驗(yàn)表明,TLR5S基因能夠識別鞭毛并且能輔助增強(qiáng)人TLR5所介導(dǎo)的NF-κB活性[34]。溝鯰(Ictalurus punctatus)中只發(fā)現(xiàn)了TLR3和TLR5的部分序列,研究顯示純系溝鯰和雜交品系溝鯰[Back-cross hybrid Catfish、F1 male(blue×channel)× female channel catfish]在感染愛德華氏菌(Edwardsiella ictaluri)后都具有上調(diào)表達(dá)[35,36],暗示了它們參與細(xì)菌導(dǎo)致的急性感染反應(yīng)。文昌魚(Branchiostoma belcheri)TLR3能特異性識別病毒復(fù)制的中間產(chǎn)物dsRNA,進(jìn)而激活NF-κB和干擾素IFNβ前體。抗TLR3單克隆抗體對成纖維細(xì)胞IFNβ的產(chǎn)生起到抑制作用[37]。

哺乳動物TLRs下游信號涉及接頭蛋白(MyD88、SARM、MAL、TRAM和TRIF),NF-κB的 激 活,INK及IFN信號通路[38]。2004年在斑馬魚基因組中發(fā)現(xiàn)了MyD88,MAL,SARM和TICAM接頭蛋白[39],但沒有發(fā)現(xiàn)TRAM蛋白,表明魚類TLRs下游可能存在有別于哺乳動物的信號通路。

MyD88能夠被除TLR3之外的所有TLR成員募集,并觸發(fā)NF-κB信號通路和絲裂素活化蛋白激酶(Mitogen-activated protein kinase,MAPK)[40,41]。研究表明,斑馬魚TLRs能夠通過募集MyD88接頭蛋白活化NF-κB通路以及MAPK通路使細(xì)胞釋放TNFα等促炎因子[42]。遲鈍愛德華菌刺激試驗(yàn)發(fā)現(xiàn)牙鲆腎臟中出現(xiàn)膿腫,且膿腫周圍大量表達(dá)MyD88基因[43],表明遲鈍愛德華菌對牙鲆的炎癥誘發(fā)是一條MyD88依賴信號通路。Skjaeveland等[44]將大西洋鮭(Salmo salar)MyD88導(dǎo)入哺乳動物細(xì)胞后,經(jīng)CpGODN刺激能激活NF-κB的表達(dá)。

TRIF只能被TLR3和TLR4募集,并且活化NF-κB信號通路和轉(zhuǎn)錄因子IRF3。魚類TRIF介導(dǎo)TLR3和TLR22的信號傳導(dǎo),激活NF-κB進(jìn)而產(chǎn)生IFN,但有研究發(fā)現(xiàn)魚類TRIF不激活I(lǐng)RF3[45,46]。但在紅鰭東方鲀研究中,TLR22能夠激活TRIF依賴型信號通路而磷酸化轉(zhuǎn)錄因子IRF3,使其活化入核誘導(dǎo)I型干擾素的釋放[47]。斜帶石斑魚(Epinephelus coioides)的研究中也表明該通路的激活[48]。此外斑馬魚TRIF與RIP1相互作用,活化NF-κB,而不能通過TRAF6[49]。由此發(fā)現(xiàn)魚類TRIF在這一功能上

與哺乳動物有所不同。

TIRAP/Mal和TICAM/TRAM則分別作為MyD88和TRIF的輔助接頭蛋白。TIRAP/Ma輔助MyD88募集到細(xì)胞表面TLR2以及TLR4上[50]。而TICAM2/ TRAM則輔助TRIF募集到內(nèi)質(zhì)網(wǎng)TLR4上[51]。

4 魚類NF-κB先天性免疫應(yīng)答

昆蟲先天性免疫應(yīng)答主要通過激活Toll和Imd兩條信號途徑,經(jīng)由NF-κB調(diào)控抗菌活性物質(zhì)的表達(dá)。已有研究表明,NF-κB信號通路通過調(diào)控免疫相關(guān)基因的表達(dá)在魚類先天性免疫中發(fā)揮著重要的作用。例如,錐漿蟲的感染下,鯉魚(Cyprinus carpio)NF-κB能夠誘導(dǎo)炎癥因子TNFα和IL1β表達(dá)而產(chǎn)生應(yīng)答反應(yīng)[52]。創(chuàng)傷弧菌刺激96 h,口服抗菌肽epinecidin-1重組蛋白的鯰魚(Silurus asotus)和斑馬魚增強(qiáng)了TLR4,IL1β 及NF-κB等基因的表達(dá),從而增強(qiáng)了抗菌能力,使感染死亡率下降[53]。在另一些研究中發(fā)現(xiàn),熱滅活的大腸桿菌、PGN、LAT也可以激活NF-κB。這說明了NF-κB對多種細(xì)菌的刺激產(chǎn)生了免疫應(yīng)答。目前NF-κB抗菌免疫的研究較少,且集中于對炎癥因子的表達(dá)調(diào)控。但如前文提及,在魚類的許多抗菌分子啟動子區(qū)上都已發(fā)現(xiàn)NF-κB結(jié)合位點(diǎn),從而進(jìn)一步提示了NF-κB一方面誘導(dǎo)抗菌物質(zhì)的合成,直接殺傷病原微生物;另一方面誘導(dǎo)炎癥因子等引發(fā)免疫反應(yīng)有效抵抗病原微生物的入侵。

Wang等[28,54]發(fā)現(xiàn)在ISKNV病毒或鯉春病毒血癥病毒感染下,NF-κB抑制劑IκBα mRNA表達(dá)量顯著下降,表明NF-κB/IκB信號通路參與了病毒感染過程。且傳染性胰臟壞死病毒(IPNV)感染斑馬魚胚胎細(xì)胞時,TNFα、Mx、IL1β及mmp等免疫相關(guān)基因與轉(zhuǎn)錄因子NF-κB表達(dá)量均發(fā)生上調(diào),而利用NF-κB特異性抑制劑阻斷NF-κB激活通路后,免疫相關(guān)基因轉(zhuǎn)錄水平被抑制下調(diào),感染期間,TNFα依賴的NF-κB信號通路參與細(xì)胞因子和金屬蛋白酶基因轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié)[55]。del Castillo等[56]在紅鰭東方鲀中鑒別出了兩個dsRNA依賴的PKR亞基(蛋白激酶R),在病毒感染過程中表達(dá)均上調(diào),揭示其具有抗病毒功能。而PKR的上調(diào)由IFN-γ激活引起,通過熒光素酶試驗(yàn)也表明PKR能夠激活NF-κB而發(fā)揮抗病毒作用。

在抵抗RNA病毒感染的先天免疫中,主要的兩類PRRs分別是TLRs、RLRs。TLR依賴的信號通路主要通過激活了NF-κB轉(zhuǎn)錄因子,從而誘導(dǎo)抗病毒干擾素的產(chǎn)生。而RLR介導(dǎo)的抗病毒免疫信號中,重要接頭MAVS/IPS-1也能激活轉(zhuǎn)錄因子NF-κB,最終誘導(dǎo)干擾素的產(chǎn)生。I型干擾素的產(chǎn)生是抗病毒免疫反應(yīng)中最重要一個方面。大西洋鮭中發(fā)現(xiàn)的與哺乳動物IFNβ相似的IFNα1 和IFNα2,經(jīng)啟動子序列分析表明病毒對干擾素激活依賴于IRF-3和NF-κB,且NF-κB特異性抑制劑PDTC對Poly I∶C誘導(dǎo)的IFNα啟動子活性的抑制達(dá)90%[57,58]。以上的研究發(fā)現(xiàn),NF-κB主要通過調(diào)控干擾素反應(yīng)系統(tǒng)或直接誘導(dǎo)抗病毒活性相關(guān)蛋白的表達(dá)而發(fā)揮抗病毒感染作用。因而目前魚類中NF-κB的激活更多認(rèn)為是對宿主抵抗病毒病原體的一種保護(hù)性反應(yīng)。但研究發(fā)現(xiàn)IPNV感染誘導(dǎo)NF-κB的激活,最終導(dǎo)致宿主細(xì)胞死亡[59]。且哺乳動物研究中發(fā)現(xiàn)病毒能夠直接激活NF-κB而抑制凋亡,通過提高宿主細(xì)胞的存活能力以延長病毒復(fù)制、繁衍后代的時間。可見,NF-κB與病毒之間可能存在復(fù)雜和緊密關(guān)系,因而有必要進(jìn)一步研究魚類NF-κB信號通路對宿主細(xì)胞或病毒所發(fā)揮的作用。

5 結(jié)語

綜上所述,TLR-NF-κB信號通路保守,在魚類先天性免疫應(yīng)答中同樣也能發(fā)揮重要的調(diào)控作用。作為經(jīng)典信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路,NF-κB在哺乳動物中調(diào)控作用研究的比較清楚。目前雖已在魚類許多免疫基因啟動子序列中識別出NF-κB的結(jié)合位點(diǎn),但對魚類NF-κB調(diào)控作用及機(jī)制的研究仍較少。因而,深入研究NF-κB調(diào)控網(wǎng)絡(luò),闡明其在魚類中的信號轉(zhuǎn)導(dǎo),將有利于進(jìn)一步闡明魚類對病原刺激的免疫應(yīng)答機(jī)制,可以為深入了解魚類的先天性免疫機(jī)制奠定重要的基礎(chǔ),實(shí)現(xiàn)有目的地調(diào)控NF-κB信號通路,將為有效增強(qiáng)魚類抗病能力提供重要的理論指導(dǎo)。

[1] Hayden MS, West AP, Ghosh S. NF-κB and the immune response[J]. Oncogene, 2006, 25(51):6758-6780.

[2] Gonzalez-Crespo S, Levine M. Related target enhancers for dorsal and NF-kappa B signaling pathways[J]. Science, 1994, 264(5156):255-258.

[3] Ghosh S, Hayden MS. New regulators of NF-κB in inflammation[J]. Nature Reviews Immunology, 2008, 8(11):837-848.

[4] Suzuki K, Yamamoto T, Inoue JI. Molecular cloning of cDNA encoding the Xenopus homolog of mammalian RelB[J]. Nucleic Acids Research, 1995, 23(22):4664-4669.

[5] Kao KR, Hopwood ND. Expression of a mRNA related to c-rel and dorsal in early Xenopus laevis embryos[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences, 1991, 88(7):2697-2701.

[6] Suzuki K, Tsuchida J, Yamamoto T, et al. Identification and expression of the Xenopus homolog of mammalian p100-NF-κB2[J]. Gene, 1998, 206(1):1-9.

[7] Tannahill D, Wardle FC. Control of axis formation in Xenopus by the NF-kappa B/I kappa B system[J]. The International Journal of Developmental Biology, 1995, 39(4):549.

[8] Naugler WE, Karin M. NF-κB and cancer-identifying targets and mechanisms[J]. Current Opinion in Genetics & Development, 2008, 18(1):19-26.

[9] Rutschmann S, Jung AC, Hetru C, et al. The Rel protein DIF mediates the antifungal but not the antibacterial host defense in Drosophila[J]. Immunity, 2000, 12(5):569-580.

[10] Correa RG, Tergaonkar V, Ng JK, et al. Characterization of NF-kappa B/I kappa B proteins in zebrafish and their involvement in notochord development[J]. Molecular and Cellular Biology, 2004, 24(12):5257-5268.

[11] Huxford T, Ghosh G. A structural guide to proteins of the NF-κB signaling module[J]. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology, 2009, 1(3):a000075.

[12] Huxford T, Huang DB, Malek S, et al. The crystal structure of the I kappa B alpha / NF-kappa B complex reveals mechanisms of NF-kappaB inactivation[J]. Cell, 1998, 95:759-770.

[13] Caamano J, Hunter CA. NF-κB family of transcription factors:central regulators of innate and adaptive immune functions[J]. Clinical Microbiology Reviews, 2002, 15(3):414-429.

[14] Grilli M, Chiu JJS, Lenardo M. NF-κB and Rel:participants in a multiform transcriptional regulatory system[J]. International Review of Cytology, 1993, 143:1-62.

[15] Elizabeth B. NF-κB and Rel proteins in innate immunity[J]. Advances in Immunology, 1995, 58:1.

[16] Hatada EN, Krappmann D, Scheidereit C. NF-κB and the innate immune response[J]. Current Opinion in Immunology, 2000, 12:52-58.

[17] Wang T, Zou J, Cunningham C, et al. Cloning and functional characterisation of the interleukin-1β1 promoter of rainbow trout(Oncorhynchus mykiss)[J]. Biochimica et Biophysica Acta(BBA)-Gene Structure and Expression, 2002, 1575(1):108-116.

[18] Nascimento DS, Vale A, Tomás AM, et al. Cloning, promoter analysis and expression in response to bacterial exposure of sea bass(Dicentrarchus labrax L.)interleukin-12 p40 and p35 subunits[J]. Molecular Immunology, 2007, 44(9):2277-2291.

[19] Lin B, Chen S, Cao Z, et al. Acute phase response in zebrafish upon Aeromonas salmonicida and Staphylococcus aureus infection:Striking similarities and obvious differences with mammals[J]. Molecular Immunology, 2007, 44(4):295-301.

[20] Collet B, Boudinot P, Benmansour A, et al. An Mx1 promoter reporter system to study interferon pathways in rainbow trout[J]. Developmental & Comparative Immunology, 2004, 28(7):793-801.

[21] Chen YM, Su YL, Lin JHY, et al. Cloning of an orange-spotted grouper(Epinephelus coioides)Mx cDNA and characterisation of its expression in response to nodavirus[J]. Fish & Shellfish Immunology, 2006, 20(1):58-71.

[22] Moon JY, Nam BH, Kong HJ, et al. Maximal transcriptional activation of piscine soluble Toll-like receptor 5 by the NF-κB subunit p65 and flagellin[J]. Fish & Shellfish Immunology, 2011, 31(6):881-886.

[23] Su J, Jang S, Yang C, et al. Genomic organization and expression analysis of Toll-like receptor 3 in grass carp(Ctenopharyngodon idella)[J]. Fish & Shellfish Immunology, 2009, 27(3):433-439.

[24] Dann SG, Ted Allison W, Veldhoen K, et al. Chromatin immunoprecipitation assay on the rainbow trout opsin proximal promoters illustrates binding of NF-κB and c-jun to the SWS1 promoter in the retina[J]. Experimental eye research, 2004, 78(5):1015-1024.

[25] Ghosh S, May MJ, Kopp EB. NF-kappaB and Rel proteins:

evolutionarily conserved mediators of immune responses[J]. Science Signaling, 1998, 16(1):225.

[26] Kong HJ, Moon JH, Moon JY, et al. Cloning and functional characterization of the p65 subunit of NF-κB from olive flounder(Paralichthys olivaceus)[J]. Fish and Shellfish Immunology, 2011, 30:406-411.

[27] Yazawa R, Kondo H, Hirono I, et al. Cloning and characterization of the IκBα gene from Japanese flounder, Paralichthys olivaceu[J]s. Fish and Shellfish Immunology, 2007, 23:808 -814.

[28] Wang L, Zhou ZH, Guo CJ, et al. The alpha inhibitor of NF-κB(IκBα)from the mandarin fish binds with p65 NF-κB. Fish and Shellfish Immunology, 2009, 26:473-482.

[29] Sangrador-Vegas A, Smith TJ, Cairns, MT. Cloning and characterization of a homologue of the alpha inhibitor of NF-kappaB in Rainbow trout(Oncorhynchus mykiss)[J]. Veterinary Immunology and Immunopathology, 2005, 13:(1-2):1-7.

[30] Yamamoto M, Takeda K. Role of nuclear IκB proteins in the regulation of host immune responses[J]. Journal of Infection and Chemotherapy, 2008, 14(4):265-269.

[31] Zhang M, Xiao Z, Sun L. Overexpression of NF-κB inhibitor alpha in Cynoglossus semilaevis impairs pathogen-induced immune response[J]. Developmental & Comparative Immunology, 2012, 36(1):253-257.

[32] Roach JC, Glusman G, Rowen L, et al. The evolution of vertebrate Toll-like receptors[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 2005, 102(27):9577-9582.

[33] Jault C, Pichon L, Chluba J. Toll-like receptor gene family and TIR-domain adapters in Danio rerio[J]. Molecular Immunology, 2004, 40(11):759-771.

[34] Tsujita T, Ishii A, Tsukada H, et al. Fish soluble Toll-like receptor(TLR)5 amplifies human TLR5 response via physical binding to flagellin[J]. Vaccine, 2006, 24(12):2193-2199.

[35] Bilodeau AL, Peterson BC, Bosworth BG. Response of toll-like receptors, lysozyme, and IGF-I in back-cross hybrid(F1 male(blue× hannel)× emale channel)catfish challenged with virulent Edwardsiella ictaluri[J]. Fish & Shellfish Immunology, 2006, 20(1):29-39.

[36] Peterson BC, Bosworth BG, Bilodeau AL. Differential gene expression of IGF-I, IGF-II, and toll-like receptors 3 and 5 during embryogenesis in hybrid(channel× lue)and channel catfish[J]. Comparative Biochemistry and Physiology Part A:Molecular & Integrative Physiology, 2005, 141(1):42-47.

[37] Doyle SE, Oconnell R, Vaidayasa SA, et al.Toll-like receptor 3 mediates a more potent antiviral resonse than toll-like receptor 4[J]. Journal of Immunology, 2003, 170(7):3565-3571.

[38] Kawai T, Akira S. TLR signaling[J]. Cell Death & Differentiation, 2006, 13(5):816-825.

[39] Jault C, Pichon L, Chluba J. Toll-like receptor gene family, TIR-domain adapters in Danio rerio[J]. Molecular Immunology, 2004, 40:759-771.

[40] Kawai T, Akira S. The role of pattern-recognition receptors in innate immunity:update on Toll-like receptors[J]. Nature Immunology, 2010, 11(5):373-384.

[41] O’Neill LAJ, Bowie AG. The family of five:TIR-domaincontaining adaptors in Toll-like receptor signalling[J]. Nature Reviews Immunology, 2007, 7(5):353-364.

[42] Dong C, Davis RJ, Flavell RA. MAP kinases in the immune response[J]. Annual Review of Immunology, 2002, 20:55-72.

[43] Takano T, Kondo H, Hirono I, et al. Identification and characterization of a myeloid differentiation factor 88(MyD88)cDNA and gene in Japanese flounder, Paralichthys olivaceus[J]. Developmental and Comparative Immunology, 2006, 30:807-816.

[44] Skjaeveland I, lliev DB, Strandskog G, et al. Identification and characterization of TLR8 and MyD88 homologs in Atlantic salmon(Salmon salar)[J]. Development and Comparative Immunology, 2009, 33:1011-1017.

[45] Oshiumi H, Matsuo A, Matsumoto M, et al. Pan-vertebrate toll-like receptors during evolution[J]. Current Genomics, 2008, 9:488-493.

[46] Fan S, Chen S, Liu Y, et al. Zebrafish TRIF, a Golgi-localized protein, participates in IFN induction and NF-kappaB activation[J]. Journal of Immunology, 2008, 180:5373-5383.

[47] Matsuo A, Oshiumi H, Tsujita T, et al. Teleost TLR22 recognizes RNA duplex to induce IFN and protect cells from birnaviruses[J]. Journal of Immunology, 2008, 181(5):3474-3485.

[48] 丁旭. 斜帶石斑魚Toll樣受體22基因的cDNA克隆, 模式分析及其信號通路的初步探討[D]. 海口:海南大學(xué), 2012.

[49] Engeszer RE, Barbiano D, Alberici L, et al. Timing and plasticity of shoaling behavior in the zebrafish, Danio rerio[J]. Animal

Behavior, 2007, 74(5):1269-1275.

[50] Kagan JC, Medzhitov R. Phosphoinositide-mediated adaptor recruitment controls Toll-like receptor signaling[J]. Cell, 2006, 125(5):943-955.

[51] Kagan JC, Su T, Horng T, et al. TRAM couples endocytosis of Toll-like receptor 4 to the induction of interferon-β[J]. Nature Immunology, 2008, 9(4):361-368.

[52] Saeij JPJ, Vries BJ, Wiegertjes GF. The immune response of carp to Trypanoplasma borreli:kinetics of immune gene expression and polyclonal lymphocyte activation[J]. Developmental & Comparative Immunology, 2003, 27(10):859-874.

[53] Pan CY, Huang TC, Wang YD, et al. Oral administration of recombinant epinecidin-1 protected grouper(Epinephelus coioides)and zebrafish(Danio rerio)from Vibrio vulnificus infection and enhanced immune-related gene expressions[J]. Fish & Shellfish Immunology, 2012, 32(6):947-957.

[54] Levraud JP, Boudinot P, Colin I, et al. Identification of the zebrafish IFN receptor:implications for the origin of the vertebrate IFN system[J]. Journal of Immunology, 2007, 178(7):4385-4394.

[55] Wang WL, Liu W, Gong HY, et al. Activation of cytokine expression occurs through the TNFα/NF-κB-mediated pathway in birnavirusinfected cells[J]. Fish & Shellfish Immunology, 2011, 31:10-21.

[56] del Castillo CS, Hikima J, Ohtani M, et al. Characterization and functional analysis of two PKR genes in fugu(Takifugu rubripes)[J]. Fish & Shellfish Immunology, 2012, 32:79-88.

[57] Bergan V, Steinsvik S, Xu H, et al. Promoters of type I interferon genes from Atlantic salmon contain two main regulatory regions[J]. FEBS Journal, 2006, 273(17):3893-3906.

[58] Robertsen B. Expression of interferon and interferon-induced genes in salmonids in response to virus infection, interferon-inducing compounds and vaccination[J]. Fish & Shellfish Immunology, 2008, 25(4):351-357.

[59] Hong JR, Guan BJ, Her GM, et al. Aquatic birnavirus infection activates the transcription factor NF-kappaB via tyrosine kinase signalling leading to cell death[J]. Journal of Fish Diseases, 2008, 31:451-460.

(責(zé)任編輯 狄艷紅)

Role of NF-κB Signal Pathway in the Innate Immune System of Fish

Yang Bingzhen Zhang Min Wang Kejian
(State Key Laboratory of Marine Environmental Science,Xiamen University,Xiamen 361102)

NF-κB(Nuclear factor κB)as an ubiquitously expressed nuclear transcription factor, involves in regulating the expression of immune-related genes after activation by a variety of stimuli and thus plays a very important role in the innate immune system of fish. It reviewed the structure, function and the signal pathway of fish NF-κB. Furthermore, we reviewed the role of NF-κB signal pathway in the innate immune system in fish.

NF-κB signal pathway Fish Innate immune system

2013-09-04

國家自然科學(xué)基金項(xiàng)目(41276102),教育部“長江學(xué)者和創(chuàng)新團(tuán)隊(duì)發(fā)展計劃”創(chuàng)新團(tuán)隊(duì)(IRT0941)

楊冰貞,女,碩士研究生,研究方向:海洋分子生物學(xué)與免疫毒理學(xué);E-mail:bingzhenyang2009@126.com

王克堅(jiān),男,博士,教授,研究方向:海洋分子生物學(xué)與免疫毒理學(xué);E-mail:wkjian@xmu.edu.cn

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