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電針對帕金森大鼠行為學(xué)和中腦黑質(zhì)TH的影響

2014-04-04 01:33:34李霞李靜王永鳳董保霞張美英劉礦平吳培秀楊繼軍
河北醫(yī)藥 2014年4期
關(guān)鍵詞:差異實驗模型

李霞 李靜 王永鳳 董保霞 張美英 劉礦平 吳培秀 楊繼軍

帕金森(PD)是常見的中老年神經(jīng)系統(tǒng)變性疾病,臨床以靜止性震顫、運動遲緩、肌強直和姿勢步態(tài)異常為主要特征[1]。主要病理改變?yōu)橹心X黑質(zhì)DA能神經(jīng)元逐漸變性死亡,紋狀體 DA含量下降[2]。PD在我國65歲以上人群患病率為2.05%。隨著人類平均壽命的延長和社會老齡化的到來,PD發(fā)病率呈明顯上升趨勢,成為影響人類身體健康和生活質(zhì)量的重要疾病。

1 材料與方法

1.1 實驗動物 選用清潔級4個月齡Wistar雄性大鼠,體重(200±20)g,由河北醫(yī)科大學(xué)動物實驗中心提供(合格證號:201103042)。動物喂養(yǎng)使用河北醫(yī)科大學(xué)動物實驗中心提供的大鼠基礎(chǔ)飼料。在河北醫(yī)科大學(xué)中醫(yī)學(xué)院實驗中心提供的清潔級動物實驗房飼養(yǎng),室溫20~24℃,自然采光,通風(fēng)良好。

1.2 實驗針具及藥物 華佗牌無菌不銹鋼毫針,φ 0.30 mm ×13 mm;韓氏 (HANS)電針儀,型號LH202H,北京華衛(wèi)產(chǎn)業(yè)開發(fā)公司;多巴絲肼片(美多芭),上海羅氏制藥有限公司,批號H10930198,實驗時采用0.9%氯化鈉溶液配制成所需濃度的混懸液。

1.3 實驗試劑與儀器 魚藤酮(RoteNone),石家莊植物農(nóng)藥研究所,批號:SZYC20100113R,實驗時采用二甲基亞砜配制成所需濃度的溶液;二甲基亞砜(DMSO),天津市凱通化學(xué)試劑有限公司,批號:Q/HG3144-99;免疫組化染色試劑盒,北京中杉金橋生物技術(shù)有限公司;HM-200型電子分析天平,日本AND;600型電熱恒溫水箱,天津;DW-40L262立式低溫冷藏箱,青島海爾醫(yī)用低溫科技有限公司;2035型LEICA切片機,德國;Citadel-2000包埋機英國姍頓公司;HMIAS-2000顯微圖像分析系統(tǒng),武漢同濟醫(yī)科大學(xué)。

1.4 方法

1.4.1 分組:78只Wistar大鼠均自然光照,自由飲水進食,正常飼養(yǎng)1周后,根據(jù)參考文獻[3]造模,隨機選取58只作為模型組大鼠,采用頸、背部皮下注射魚藤酮溶液 0.8 mg·kg-1·d-1(溶劑為二甲基亞砜,濃度為2 mg/ml)28 d制備PD大鼠模型;其余20只作為正常組注射等體積的溶劑。造模結(jié)束后,通過網(wǎng)格實驗、懸掛實驗和開闊實驗對比模型組和正常組大鼠的行為學(xué)變化,模型組和正常組各隨機選取10只剖殺,觀察組織形態(tài)和神經(jīng)生化變化,以判定造模成功與否。造模成功后將模型組大鼠隨機分為模型組、西藥組和電針組。

1.4.2 治療方法:造模成功后,西藥組大鼠每天給予美多芭混懸液灌胃 1.67 mg·kg-1·d-1(溶劑為0.9%氯化鈉溶液,濃度為25 mg/ml);電針組大鼠每日按順序給予治療,將大鼠固定在自制束鼠器上,參照全國針灸學(xué)會實驗針灸研究會制定的《實驗動物針灸穴位圖譜》,選百會、三陰交、太沖穴,三穴均用φ0.30 mm×13 mm毫針刺入,接韓氏電針儀,電針正極接一側(cè)三陰交,負(fù)極接同側(cè)太沖,雙側(cè)相同,采用疏密波,頻率疏波 2 Hz、密波 80 Hz,強度 2.0 mA,10 min/次每天,西藥組和電針組均7 d為1個療程,共治療2個療程,療程間休息1 d;除西藥組外,其余各組均灌服等體積的0.9%氯化鈉溶液;除電針組外,其余各組均采用同一體位固定10 min·次-1·d-1。治療均由同一操作者操作。

1.4.3 取材:治療結(jié)束后,觀察大鼠包括懸掛實驗、網(wǎng)格實驗及開闊實驗在內(nèi)的行為學(xué)變化后,將大鼠脫臼處死取腦,左腦參照Paxinos和Watson鼠腦立體定位圖譜,切取包含黑質(zhì)的腦組織(前囟后5.0~5.2 mm處),放入備好的4%多聚甲醛的磷酸緩沖液中,固定1周以上。

1.4.4 行為學(xué)檢測:懸掛實驗:根據(jù)參考文獻[4],將大鼠兩前爪懸掛于距離地面1 m水平固定的繩子(直徑2 mm,長100 cm)上,記錄大鼠落地前的時間,3 s內(nèi)大鼠跌落或僅一爪抓住繩子均屬失敗。根據(jù)參考文獻評分:0~4 s評0分;5~9 s評1分;10~14 s評2分;15~19 s評3分;20~24 s評4分;25~29 s評5分;超過30 s評6分。每隔5 min測1次,共測3次。

1.4.5 網(wǎng)格實驗:根據(jù)參考文獻[5,6],選擇與水平面垂直的獨立金屬網(wǎng)格(面積80 cm×50 cm,網(wǎng)格大小1 cm×1 cm)作為實驗裝置,將大鼠正立置于金屬網(wǎng)格中央,使大鼠位置與地面垂直,各趾爪均抓住金屬網(wǎng)格。用秒表記錄大鼠由靜止?fàn)顟B(tài)直至其任意一爪移動時所花的時間,即為大鼠移動潛伏期。每隔5 min測1次,共測3次。

1.4.6 開闊實驗:根據(jù)參考文獻[7],將大鼠放置在大鼠籠內(nèi),觀察大鼠自主活動情況(持續(xù)150 s),計測大鼠兩前肢離地累積的持續(xù)時間為大鼠直立時間;令大鼠四肢著地,頭與身體均保持靜止,計測其蹲于某一位置所積累時間,為大鼠靜止性蹲坐時間。

1.4.7 中腦黑質(zhì)TH免疫組化染色檢查:將在4%多聚甲醛的磷酸緩沖液中固定1周以上的中腦黑質(zhì)組織,經(jīng)脫水、透明、石蠟包埋,切取6 μm厚的冠狀切片,先行HE染色,光鏡下觀察中腦黑質(zhì)組織形態(tài)學(xué)變化。再用S-P法行TH免疫組織化學(xué)染色,鏡下觀察TH陽性表達(dá)細(xì)胞。

1.5 統(tǒng)計學(xué)分析計量資料以表示,采用t檢驗,P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

2 結(jié)果

2.1 4組大鼠行為學(xué)觀察

2.1.1 懸掛實驗:治療前模型組、西藥組和電針組評分值均低于正常組,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01);模型組、西藥組和電針組之間比較差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。治療后模型組評分值低于正常組(P<0.01);電針組評分值均高于模型組(P<0.01);西藥組評分值與模型組相比,差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05);電針組評分值與西藥組相比,差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。見表1。

表1 4組大鼠懸掛實驗評分比較分,±s

表1 4組大鼠懸掛實驗評分比較分,±s

注:與正常組比較,*P <0.01;與模型組比較,#P <0.01

組別 治療前 治療后正常組(n=10)8.7 ±2.1 9.1 ±2.3模型組(n=11) 4.9 ±2.9* 5.2 ±2.2*西藥組(n=11) 3.8 ±1.7* 6.4 ±2.2電針組(n=11) 2.9 ±1.6* 7.9 ±1.6#

2.1.2 網(wǎng)格實驗:治療前模型組、西藥組和電針組大鼠移動潛伏期均高于正常組,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05);模型組、西藥組和電針組之間比較差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。治療后模型組大鼠移動潛伏期大于正常組,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01);電針組低于模型組,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05);西藥組與模型組相比,差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05);電針組與西藥組相比,差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。見表2。

表2 4組大鼠網(wǎng)格實驗潛伏期比較分,±s

表2 4組大鼠網(wǎng)格實驗潛伏期比較分,±s

注:與正常組比較,*P <0.01;與模型組比較,#P <0.01

組別 治療前 治療后正常組(n=10)5.1 ±2.7 4.6 ±2.7模型組(n=11) 9.6 ±3.6* 9.7 ±3.7*西藥組(n=11) 11.4 ±3.0* 7.7 ±3.4電針組(n=11) 8.9 ±2.7* 5.6 ±3.1#

2.1.3 開闊實驗:治療前模型組、西藥組和電針組大鼠靜止性蹲坐時間均高于正常組,站立時間均低于正常組,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01);模型組、西藥組和電針組之間比較差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。治療后電針組和西藥組大鼠靜止性蹲坐時間均低于模型組,站立時間均高于模型組,差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01);電針組大鼠靜止性蹲坐時間與西藥組相比,差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05),站立時間低于西藥組,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01)。見表3、4。

表3 4組大鼠開闊實驗-靜止性蹲坐時間比較分,±s

表3 4組大鼠開闊實驗-靜止性蹲坐時間比較分,±s

注:與正常組比較,*P <0.01;與模型組比較,#P <0.01

組別 治療前 治療后正常組(n=10)21±22 30±23模型組(n=11) 97±36* 109±21西藥組(n=11) 88±16* 37±22#電針組(n=11) 88±17* 51±9#

表4 4組大鼠開闊實驗-站立時間比較分,±s

表4 4組大鼠開闊實驗-站立時間比較分,±s

注:與正常組比較,*P <0.01;與模型組比較,#P <0.01;與西藥組比較,△P <0.01

組別 治療前 治療后正常組(n=10)97±31 94±20模型組(n=11) 40±34* 23±16西藥組(n=11) 34±20* 101±13#電針組(n=11) 24±26* 80±10#△

2.2 治療后4組大鼠中腦黑質(zhì)HE染色鏡下觀察

光鏡下:正常組DA能神經(jīng)元形態(tài)完整,細(xì)胞排列相對整齊;核呈圓形或錐形,大而清晰,核仁明顯;神經(jīng)纖維排列整齊,結(jié)構(gòu)緊密。模型組神經(jīng)元部分輕度腫脹,體積增大,細(xì)胞間隙增寬;細(xì)胞核形態(tài)不一,體積增大,偏居一側(cè),核仁不明顯,神經(jīng)纖維排列紊亂,結(jié)構(gòu)疏松。電針組與模型組相比中腦黑質(zhì)DA能神經(jīng)元改善明顯,神經(jīng)元腫脹減少減輕,體積變小,細(xì)胞間隙變窄;細(xì)胞形態(tài)較規(guī)則,體積較正常,核仁較明顯,神經(jīng)纖維排列較整齊,結(jié)構(gòu)較密集,西藥組改善差于電針組,優(yōu)于模型組。電針組、西藥組均差于正常組。見圖1~4。

圖1 正常組(HE×100)

圖2 模型組(HE×100)

圖3 西藥組(HE×100)

圖4 電針組(HE×100)

2.3 治療后4組大鼠中腦黑質(zhì)TH免疫組化染色觀察 正常組TH免疫反應(yīng)陽性神經(jīng)元呈棕褐色,密集分布,數(shù)量較多,胞體較大,神經(jīng)元突起明顯。模型組TH免疫反應(yīng)陽性神經(jīng)元數(shù)目明顯減少,神經(jīng)元胞體輪廓及突起不清晰。電針組與模型組相比TH改善明顯,陽性神經(jīng)元數(shù)目增多,神經(jīng)元胞體輪廓及突起較清,西藥組改善差于電針組,優(yōu)于模型組。見圖5~8。

圖5 正常組(TH×400)

圖6 模型組(TH×400)

圖7 西藥組(TH×400)

圖8 電針組(TH×400)

3 討論

PD的治療中,L-DOPa替代療法和各種外科手術(shù)能夠在一定程度上改善患者癥狀,但不能阻止黑質(zhì)DA能神經(jīng)元的持續(xù)丟失,更不能恢復(fù)黑質(zhì)DA能神經(jīng)元數(shù)目;神經(jīng)營養(yǎng)因子的使用,可以保護殘存DA能神經(jīng)元的功能;神經(jīng)干細(xì)胞移植和基因治療的研究,可以保護黑質(zhì)DA能神經(jīng)元免于死亡和恢復(fù)黑質(zhì)DA能神經(jīng)元數(shù)量,徹底逆轉(zhuǎn)PD的病理狀態(tài),可能對PD的徹底治愈有所突破,期待有更好進展。近年,有關(guān)針刺治療PD的實驗研究和臨床報道越來越多,有報道針灸能引起PD大鼠黑質(zhì)和紋狀體區(qū)神經(jīng)干細(xì)胞發(fā)生顯著增殖現(xiàn)象,且觀察到在增殖的神經(jīng)干細(xì)胞中有一部分轉(zhuǎn)化為神經(jīng)元[8],證實了針灸治療PD的有效性。

DA是DA能神經(jīng)元合成和釋放的主要功能性神經(jīng)遞質(zhì),DA的合成過程以酪氨酸為底物,經(jīng)過TH羥化,多巴脫羧酶脫羧而成。因而TH是酪氨酸轉(zhuǎn)化成DA的關(guān)鍵限速酶,提高TH酶蛋白含量,促進L-DOPA生成,增加DA含量及釋放量是治療PD的策略之一。

本實驗結(jié)果說明電針百會、太沖、三陰交穴可增加黑質(zhì)TH陽性神經(jīng)元的數(shù)量和紋狀體DA的含量,對DA能神經(jīng)元具有一定的保護作用。實驗結(jié)果進一步證明電針PD大鼠的百會、太沖、三陰交穴,一方面通過針刺太沖、百會發(fā)揮熄風(fēng)止顫的作用,改善PD大鼠的行為學(xué)變化,減輕PD大鼠的肌肉震顫、全身抖動、四肢僵直等癥狀,另一方面通過針刺百會、三陰交達(dá)到滋補肝腎,填精益髓目的,使腦髓得以充養(yǎng),與實驗結(jié)果中PD大鼠TH增加相吻合,從PD發(fā)病機制的角度證實了PD的發(fā)病與腎虛髓空的關(guān)系,為臨床應(yīng)用補腎養(yǎng)肝填髓,熄風(fēng)通絡(luò)止顫之法治療PD提供了有力的實驗依據(jù)。

1 李大年,焉傳祝,遲兆富,等主編.現(xiàn)代神經(jīng)內(nèi)科學(xué).第1版.濟南:山東科學(xué)技術(shù)出版社,2004.488.

2 陳生弟,樂衛(wèi)東,陳先文,等主編.帕金森病.第1版.北京:人民衛(wèi)生出版社,2006.30.

3 陳忻,張楠,趙暉,等.魚藤酮致帕金森病大鼠行為學(xué)與黑質(zhì)病理損傷的關(guān)系.中國神經(jīng)精神疾病雜志,2008,34:232-234.

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5 何德富,張貝,王鍵,等.魚藤酮和噠螨靈慢性暴露對大鼠的神經(jīng)毒性作用.中國老年學(xué)雜志,2005,25:1099-1101.

6 Betarbet R,Sherer TB,MacKenzie G,et al.Chronic systemic pesticide exposure reproduces features of Parkinson's disease.Nat Neurosci,2000,3:1301-1306.

7 Maingay M,Romero-Ramos M,Carta M,et al.Ventral tegmental area dopamine neurons are resistant to human mutant alpha-synuelein overexpression.Neurobiol Dis,2006,23:522-532.

8 王彥春,馬駿,王華.“雙固一通”法對帕金森病模型大鼠神經(jīng)干細(xì)胞增殖及分化的影響.中國針灸,2006,26:277-282.

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