孫煒寧,張巧格,李興興,韓燁
(天津大學化工學院,天津300072)
葡萄酒釀造過程中微生物多樣性的研究現狀
孫煒寧,張巧格,李興興,韓燁*
(天津大學化工學院,天津300072)
葡萄酒是由新鮮葡萄漿果或葡萄汁發酵而成的酒精飲料。葡萄酒的釀造過程本質上是包括酵母、細菌、絲狀真菌在內的多種微生物復雜作用的過程。本文主要闡述了從葡萄收集直到葡萄酒后發酵過程中,微生物的種類及數量的變化情況及葡萄酒釀造中微生物之間的相互作用對微生物多樣性的影響。
葡萄酒;微生物多樣性;微生物相互作用
葡萄酒釀制過程的本質是從葡萄收集、葡萄破碎成汁、葡萄酒一次、二次發酵直到包裝、儲藏整個釀造過程中多種微生物的代謝過程。葡萄汁發酵物及葡萄酒中的環境是低pH及高酒精濃度的,只有耐酸耐酒精的微生物可以生長。在釀酒過程中最重要的菌株為釀酒酵母Saccharomyces cerevisiae及酒酒球菌Oeno-coccus oeni分別進行酒精發酵及蘋果酸—乳酸發酵(malolactic fermentation,MLF),其他菌株在葡萄及葡萄酒中生長的微生物對酒的品質有顯著的影響。
葡萄酒的釀造始于收集和破碎葡萄。白葡萄酒通過冷沉淀、澄清過濾或離心分離葡萄汁與葡萄皮,然后將葡萄汁移至木桶中。酒精發酵是由果汁中的自帶酵母或通過接種釀酒酵母發酵完成。將葡萄汁中主要的葡萄糖及果糖消耗后,酒被認為是“干葡萄酒”,將酒液與酵母及葡萄的殘渣分離。
紅葡萄酒的生產與白葡萄酒的生產略有不同。葡萄經破碎后葡萄皮浸泡在發酵液中提取顏色。紅葡萄酒通過自帶酵母或接種發酵劑進行酒精發酵。在葡萄發酵中葡萄皮會漂浮到頂部形成一個“帽子”。為了更好地提取紅顏色和豐富葡萄酒風味,釀酒師采取穿孔或從底部泵汁的辦法去除“帽子”的影響。一段時間后,葡萄酒與葡萄皮分離,葡萄汁在另一個容器中進行發酵直至完成。酒精發酵完成后,根據葡萄酒的情況通過自帶或接種乳酸菌(lactic acid bacteria,LAB)自發或有目的進行MLF,將蘋果酸轉化為乳酸。待發酵結束后要對葡萄酒中殘留的微生物進行處理,防止酒的腐敗[1]。
2.1 葡萄園中與釀酒相關的微生物
葡萄中一半的酵母來自葡萄園如尖頂型的無性生殖的酵母,漢森氏酵母屬Hanseniaspora和克勒克酵母屬Kloeckera。葡萄園中還存在一些對釀酒有作用的酵母擲孢酵母屬Sporobolomyces、克魯維酵母屬Kluyveromyces[2]。
2.2 葡萄表面及漿果中的微生物
葡萄中的微生物的類型會影響隨后發酵過程中的生態環境尤其是在發酵初期的環境。漿果中微生物的數量水平大致在107CFU/g~108CFU/g,其中酵母的數量在105CFU/g~106CFU/g。漿果中的酵母種類有梅奇酵母屬Metschnikowia、假絲酵母屬Candida、隱球酵母屬Cryptococcus、紅酵母屬Rhodotorula、畢赤氏酵母屬Pichia、接合酵母屬Zygosaccharomyces、球擬酵母屬Torulopsis,占主導地位的是梅奇酵母屬及漢森酵母屬。破損的葡萄中漢森酵母屬Hanseniaspora、假絲酵母屬Candida、梅奇酵母屬Metschnikowia數量顯著增加。釀酒酵母saccharomyces cerevisiae在葡萄中很少見,數量少于10CFU/g~100CFU/g[3-6].
同時發現有醋酸菌(葡糖桿菌屬、醋酸桿菌屬)、LAB在葡萄微生物群中占據一小部分。
絲狀真菌聚集在葡萄的表面,可以侵染葡萄(葡萄孢屬Botrytis、鏈格孢屬Alternaria、單軸霉屬Plasmopara、曲霉屬Aspergillus);其中較常見的有短梗茁霉AureobasidiuMpullulans及灰霉菌Botrytis cinerea。生長在葡萄上的霉菌產生多種代謝物如真菌毒素赭曲霉素A并且干擾葡萄的微生物生態環境并從而影響酒精發酵中酵母的生長,改變酒的風味。葡萄孢屬會影響糖類、酒石酸、蘋果酸的代謝,減少總糖量,提高葡萄酒的pH。灰霉菌可造成灰霉病,其它的霉菌可以參與由其它微生物引發的感染,但自己不足以引起感染[7-8]。此外,真菌在葡萄表面會創造一種利于醋酸菌生長的環境,醋酸菌數量的增多易造成酒的腐敗。
2.3 葡萄汁及葡萄酒中的微生物
2.3.1 葡萄汁及葡萄酒中的細菌
新鮮無破損的葡萄制成的葡萄汁中只有少量的細菌(<103CFU/mL~104CFU/mL),當酵母啟動酒精發酵后,細菌生長停滯并逐漸死亡。根據葡萄汁及葡萄酒的酸度、營養物質、氧氣、酒精濃度,其中生長活躍的細菌通常包括LAB及醋酸菌。其他的細菌如梭狀芽胞桿菌clostridia、放線菌actinomyces、鏈霉菌屬streptomyces也存在于酒的環境中,但比較少見。被土壤污染的葡萄中存在梭狀芽胞桿菌,它產生的孢子對熱和化學處理有很強的抵抗力,因此處理被它污染的酒液比較棘手。鏈霉菌屬可降解纖維造成對過濾裝置的破壞。大多數與酒相關的細菌及很多酵母對SO2敏感[9]。
LAB是兼性厭氧菌,在厭氧的環境中可存活;參與釀酒的LAB主要來自4個屬(乳桿菌屬Lactobacillus、片球菌屬Pediococcus、明串珠菌屬Leuconostoc、酒球菌屬Oenococcus[10])。這些微生物普遍存在于葡萄及釀酒環境中。葡萄的破碎成數量級的增加了乳酸菌的數量;酒精發酵的第一周釀酒酵母產生的酒精減少LAB的數量,通常低于103CFU每mL;酒的pH強烈的影響LAB的存活,在發酵中及發酵后pH高于3.5對乳桿菌屬及片球菌屬的存活有利,當pH低于3.5對酒球菌屬存活有利[11]。新發酵的葡萄酒中LAB的數量較低,主要是由于pH、酒精、抑菌物質如SO2等因素的影響。當酒進入貯藏階段,LAB對酒精的耐受力增加。LAB的數量又有所增長[12]。
在一些葡萄酒中會發生MLF,它是一種重要的二次發酵,在酒精完全發酵后的兩到三周內進行[13]。酒球菌O.oeni主導MLF通過將L-蘋果酸轉化為L-乳酸從而降低酒的酸度、產生其他代謝物增進酒的風味、消耗多余的養分提高酒中微生物的穩定性,對葡萄酒的釀造具有重要的影響[14]。
醋酸菌是革蘭氏陰性需氧菌,可利用甘油和酒精產生醋酸、乙醛、乙酸乙酯。葡萄酒中的醋酸菌主要來自3個屬,醋桿菌屬Acetobacter、葡糖桿菌屬Gluconobacter、葡糖醋桿菌屬Gluconacetobacter[15]。破碎的葡萄中含有相當數量的葡糖桿菌屬,其產生的葡萄糖酸及其它含羰基化合物可以與SO2結合,降低亞硫酸鹽的抑制作用,導致葡萄汁的腐敗。一旦進行葡萄汁發酵,厭氧環境有效抑制醋酸菌的生長和新陳代謝。但有很多醋酸菌在厭氧發酵結束后仍存在,并未完全消除在發酵過程中[16]。事實上,醋酸菌在木桶頂部存在空氣的環境中可存活,直到活躍發酵期木桶頂部被CO2充滿。發酵過程中泵送酒液到頂部有效減輕醋酸菌對葡萄酒的毒害作用。
2.3.2 葡萄汁及普通酒中的酵母
葡萄汁及葡萄酒微生物中酵母占據主導地位。葡萄汁及葡萄酒中還包含大量的酵母如梅奇酵母屬Metschnikowia、酒香酵母屬Brettanomyces、畢赤氏酵母屬Pichia、假絲酵母屬Candida、漢森氏酵母屬Hanseniaspora、克魯維酵母屬Kluyveromyces、孢圓酵母屬Torulaspora、德巴利氏酵母屬Debaryomyces、接合酵母屬Zygosaccharomyce、裂殖酵母屬Schizosaccharomyces[17]。其中的漢森氏酵母、假絲酵母、梅奇酵母啟動酒精的發酵。畢赤氏酵母屬、伊薩酵母屬Issatchenkia、克魯維酵母屬在這一階段進一步增長。這些酵母的濃度會達到106CFU/mL~107CFU/mL。這些酵母在發酵中期逐漸減少[18-19]。釀酒酵母對其代謝產物尤其是酒精的高耐受力使它成為發酵中期及后期的優勢菌種,濃度達到107CFU/mL~108CFU/mL。漢森氏酵母屬、假絲酵母屬、梅奇酵母屬、伊薩酵母屬、克魯維酵母屬對濃度超過5%~7%的酒精沒有耐受力,在發酵中期逐漸減少。這些菌株在低溫時對酒精的敏感度降低,當溫度低于15℃~20℃,假絲酵母及漢森氏酵母發酵一部分酒精。與釀酒酵母一樣在發酵后期成為優勢菌株[20]。
2.4 葡萄汁及葡萄酒中微生物多樣性的影響因素
2.4.1 環境因素
很多環境因素影響葡萄酒中的微生物菌群。其中pH的影響最大,低pH(<3.5)抑制很多細菌,尤其是乳酸菌不能生長。在葡萄酒正常pH范圍內(2.8~4.2)酵母的生長不受影響。
溫度是另一個重要的因素,低溫抑制細菌、釀酒酵母的生長,當溫度低于12℃釀酒酵母的初發酵被抑制。長期低溫并添加適量營養物質有利于葡萄汁中野生微生物的生長[21]。
在釀酒酵母大量繁殖之前,醋酸菌、霉菌為需氧菌,有氧氣的環境易導致腐敗發生。釀酒酵母對氧氣的競爭能力很強,當釀酒酵母開始大量繁殖時需適當通風促進釀酒酵母的繁殖。LAB是兼性厭氧菌,氧氣促進釀酒酵母生長的同時也對兼性厭氧的LAB的生長有刺激作用。
2.4.2 釀酒操作
釀酒中的操作對葡萄酒中的微生物菌群都會產生影響,如SO2的使用,冷浸、發酵溫度、通風、添加營養物質、接種釀酒酵母[22]。衛生狀況如設備清潔的頻率。其他操作如浸皮、帽處理、浸泡時間都會影響微生物的生長;漿果中的微生物像膜一樣附著在漿果表面難以去除,但營養豐富的葡萄汁環境類似于發酵培養基,由分裂產生的新細胞會釋放到發酵物中。因此,果皮接觸葡萄汁時間的長短影響后代細胞的釋放,從而影響葡萄汁中微生物的種類;帽處理中泵數量及種類的選取也會影響葡萄汁中微生物的種類。酒精發酵過程對酒液表面微生物的抑制作用取決于厭氧條件下木桶上方CO2層的形成。如果要豐富葡萄酒中微生物區系,就推遲釀酒酵母的接種,為其他微生物的生長及終產物的產生提供充足的時間。提前添加營養物質會促進非釀酒酵母的繁殖。
2.4.3 微生物的相互作用
葡萄酒中微生物的相互作用包括競爭有限的營養成分和通過代謝產生最終產物抑制其他菌種生長的物質。酵母的代謝產物如酒精可以抑制大多數的細菌、霉菌及一些酵母。當酒精濃度大于7%,非釀酒酵母的生長受到抑制。一些釀酒酵母會產生抑制肽抑制其他酵母菌株。釀酒在缺氧的環境中競爭氧氣的能力更強,非釀酒酵母對于缺氧的環境缺乏耐受力,移除多余的氧氣使非釀酒酵母更早地死亡。非釀酒酵母在發酵初期可以利用氨基酸及維他命來生長,從而限制了釀酒酵母的生長。在發酵的中后期,死亡及自身溶解的非釀酒酵母的細胞可成為釀酒酵母的營養源[23]。細菌同樣可以產生細菌素抑制其他細菌的生長。酒精發酵結束后,自溶的酵母為隨后引發MLF的酒酒球菌提供了營養,刺激了酒酒球菌的生長。在活躍發酵期,霉菌幾乎不存在。但霉菌產生的霉菌毒素會殘留在漿果表面抑制葡萄汁及葡萄酒中的微生物。葡萄鉤絲殼菌Uncinula necator污染葡萄產生的蘑菇味在酒精發酵中可消除;酵母細胞壁中尤其是β-葡聚糖對霉菌毒素有吸附的作用[24]。
已經裝瓶的葡萄酒中要防止瓶中微生物的生長代謝從而防止葡萄酒變渾濁、失去風味。腐敗微生物包括細菌、酵母、霉菌;細菌包括乳酸菌、醋酸菌、芽孢桿菌、鏈霉菌。
3.1 細菌造成腐敗
LAB(短乳桿菌Lactobacillusbrevis、腸系膜明串珠菌Leuconostocmesenteroides)會降解賴氨酸造成酒液顏色變深,利用組氨酸等氨基酸產生組胺使部分消費者產生頭痛;幾種菌共同發酵葡萄酒中的糖,產生乳酸、CO2、醋酸、甘油等,使酒具有酸白菜和酸牛奶味,破壞酒的品質。醋桿菌屬侵染葡萄酒后會在酒液與空氣接觸的表面形成一層淡灰色的薄膜,最初是透明的,以后變暗,有時形成帶褶皺的玫瑰色薄膜,然后薄膜部分脫落沉人酒液中造成酒體渾濁,發出不良醋酸氣味,使酒液的揮發酸含量增高[25]。
苦味芽孢桿菌侵染葡萄酒使之變苦,多發生在紅葡萄酒和老酒中。受侵染的葡萄酒中還原糖、酒石酸鹽類和甘油含量都減少,總酸、揮發酸含量增加。
3.2 霉菌造成腐敗
來自腐敗的軟木塞中的霉菌,會引起酒的渾濁;代謝產生的2,4,6-三氯苯甲醚使酒液中出現的霉塞味。
3.3 酵母造成腐敗
接合酵母對糖有很高的耐受力會產生CO2造成酒的渾濁。畢赤氏酵母也造成酒的渾濁。假絲酵母在酒表面形成一層灰白色或暗黃色的,隨時間增厚,并逐漸將酒液覆蓋;進而膜破裂,白色碎片下沉并且產生酒精或乙醛。酒香酵母降解賴氨酸,產生纖維素酶將木桶中的纖維素降解為多糖并利用。釀酒酵母在糖分含量高的酒中易造成二次發酵,在瓶中會使酒渾濁、產生CO2[26]。
葡萄及周圍環境中的微生物具有多樣性,葡萄酒的釀造是不同種屬的LAB、酵母及真菌共同作用的結果,葡萄汁發酵是由酵母菌群相互作用引起的,酵母菌群與細菌及絲狀真菌的相互作用對葡萄酒的品質也有顯著的影響。對不同種屬間微生物的生理、化學水平及生物化學方面的相互作用需要進一步了解。
[1]Milanowski T.Solar Energy in the Winemaking Industry[M]. Springer,2011
[2]Nisiotou A A,NychasG JE.Yeastpopulations residingon healthy or Botrytis-infected grapes froMa vineyard in Attica,Greece[J].Applied and environmentalmicrobiology,2007,73(8):2765-2768
[3]Renouf V,Claisse O,Lonvaud A.Understanding the microbial ecosysteMon thegrape berry surface through numeration and identification of yeast and bacteria[J].Australian Journal of Grape and WineResearch,2005,11(3):316-327
[4]Mortimer R,PolsinelliM.On theoriginsofwine yeast[J].Research in microbiology,1999,150(3):199-204.
[5]Martini A,CianiM,ScorzettiG.Direct enumeration and isolation of wine yeasts froMgrape surfaces[J].American Journalof Enology and Viticulture,1996,47(4):435-440
[6]FleetGH.Themicrobiology ofalcoholic beverages[M].Springer US, 1997:217-262
[7]Stander MA,Steyn P S.Survey of ochratoxin A in South African wines[J].S.Afr.J.Enol.Vitic,2002,23(1):9-13
[8]Stummer B E,Francis IL,Markides A J,et al.The effectof powdery mildew infection ofgrape berrieson juice and wine composition and on sensory properties of Chardonnay wines[J].Australian Journalof grapeandwine research,2003,9(1):28-39
[9]SponholzW R.Wine spoilage bymicroorganisms[J].Winemicrobiology and biotechnology,1993:395-420
[10]Lonvaud-Funel A.Lactic acid bacteria in the quality improvement and depreciation ofwine[M].Springer Netherlands,1999:317-331
[11]Davis CR,Wibowo D,FleetGH,etal.Properties ofwine lactic acid bacteria:their potential enological significance[J].American Journalof Enology and Viticulture,1988,39(2):137-142.
[12]Osborne JP,EdwardsCG.Bacteria importantduringwinemaking[J]. Advances in food and nutrition research,2005,50:140
[13]Lonvaud-Funel A.Lactic acid bacteria in the quality improvement and depreciation ofwine[M],1999:317-331
[14]FleetGH.Yeastinteractionsand wine flavour[J].International journalof foodmicrobiology,2003,86(1):11-22
[15]Ruiz A,PobletM,Mas A,et al.Identification of acetic acid bacteria by RFLP of PCR-amplified 16S rDNA and 16S-23S rDNA intergenic spacer[J].International Journalof Systematic and Evolutionary Microbiology,2000,50(6):1981-1987
[16]Du ToitW J,LambrechtsMG.The enumeration and identification of acetic acid bacteria froMSouth African red wine fermentations[J]. International journalof foodmicrobiology,2002,74(1):57-64
[17]Loureiro V,Malfeito-FerreiraM.Spoilage yeasts in thewine industry [J].International journalof foodmicrobiology,2003,86(1):23-50
[18]CianiM,Comitini F,Mannazzu I,et al.Controlledmixed culture fermentation:a new perspective on the use of non-Saccharomyces yeasts inwinemaking[J].FEMSyeast research,2010,10(2):123-133
[19]Bisson LF.Stuck and sluggish fermentations[J].American Journalof Enology and Viticulture,1999,50(1):107-119
[20]Erten H.Relationsbetween elevated temperaturesand fermentation behaviour of Kloeckera apiculata and Saccharomyces cerevisiae associatedwithwinemaking inmixed cultures[J].World JournalofMicrobiology and Biotechnology,2002,18(4):377-382
[21]Du ToitW J,Pretorius IS.The occurrence,controland esoteric effect of acetic acid bacteria in winemaking[J].Annals of Microbiology, 2002,52(2):155-179
[22]Stratford M,Morgan P,Rose A H.Sulphur dioxide resistance in Saccharomyces cerevisiae and Saccharomycodes ludwigii[J].Journal of generalmicrobiology,1987,133(8):2173-2179
[23]Dizy M,Bisson L F.Proteolytic activity of yeast strains during grape juice fermentation[J].American journal of enology and viticulture, 2000,51(2):155-167
[24]Lyons T P.Natural products and programs 2002:navigating froMnichemarkets tomainstream[J].Nutritional Biotechnology in the Feed and Food Industries,NottinghaMUniversity Press,Nottingham, 2002,20(11):1-12
[25]SponholzW R.Wine spoilage bymicroorganisms[J].Winemicrobiology and biotechnology,1993,15(12):395-420
[26]Pretorius IS,Bauer F F.Meeting the consumer challenge through genetically customized wine-yeaststrains[J].Trends in biotechnology,2002,20(10):426-432
Progress on Microbial Diversity Study in W ine Production
SUNWei-ning,ZHANGQiao-ge,LIXing-xing,HANYe*
(SchoolofChemicalEngineeringand Technology,Tianjin University,Tianjin 300072,China)
The nature ofwinemaking process is the process of complex interactions between yeast、bacteria、filamentous fungi.Thisarticle describes the changesof speciesand quantitiesofmicrobes froMthe collection of grapesuntilwinepostfermentationand the interactionsbtweenmicrobesimpacton themicrobialdiversity.
wine;microbialdiversity;microbial interaction
10.3969/j.issn.1005-6521.2014.18.098
2014-09-24
孫煒寧(1992—),女(漢),大學本科,研究方向:葡萄酒微生物多樣性。
*通信作者