海南省特有安諾蘭ISSR體系的優化

摘要：以海南省特有安諾蘭為基因組材料，采用改進的CTAB法提取安諾蘭葉片中的基因組DNA，通過單因素試驗，對ISSR-PCR反應體系中各影響因子進行優化和篩選，建立適合海南安諾蘭的ISSR-PCR反應體系：15 μL PCR反應體積，10×PCR Buffer，200 μmol/L dNTPs，0.5 μmol/L引物，1.5 mmol/L Mg2+，1.0 U Taq DNA聚合酶，40 ng模板DNA。

關鍵詞：安諾蘭；ISSR-PCR；優化

中圖分類號： Q949.718.43；S682.310.2 文獻標志碼： A 文章編號：1002-1302（2014）07-0039-03

收稿日期：2013-10-17

基金項目：海南省自然科學基金（編號：310062）。

作者簡介：任軍方（1980—），女，河北石家莊人，助理研究員，研究方向為熱帶花卉種質資源學。E-mail：renjunfang808@163.com。

通信作者：云勇，副研究員，研究方向為熱帶作物種質資源創新與利用。E-mail：yyong-3027@163.com。安諾蘭[Anota hainanensis （Rolfe）Schltr]為蘭科安諾蘭屬植物，海南省特有種，產于海南省中南部低海拔丘陵地區，熱帶附生蘭，附生于低海拔丘陵地區的楓樹上。安諾蘭在春節前后開花，花朵清麗、密集而芳香，是極好的新春賀歲花卉。

ISSR（inter simple sequence repeat）標記即簡單重復序列區間DNA標記，是由Zietkiewicz等于1994年提出的一種新型分子標記技術[1]，它利用基于SSR而設計的寡核苷酸引物來檢測2個SSR之間的一段短DNA序列差異。該技術的優點是所需DNA量少、多態性好、無須預知研究對象基因組序列等[2]，因此該技術已被廣泛用于品種鑒定[3]、基因定位及遺傳多樣性分析[4-5]。由于ISSR技術也是基于PCR的一種分子標記技術，所以它同其他分子標記技術一樣，結果容易受多種因素干擾，如模板DNA濃度、Taq DNA聚合酶、dNTPs、引物濃度等都能影響擴增結果，甚至其中一個因素改變都會影響擴增條帶的位置或使其消失，從而影響整個試驗結果，因此在研究時應先建立合適的反應體系并對其進行優化[6-10]。本研究對海南省特有安諾蘭ISSR反應體系進行探索，旨在建立適于安諾蘭的ISSR反應體系。

1材料與方法

1.1材料

供試安諾蘭來自于海南省農業科學院園林花卉研究所蘭圃，試驗地點在海南省農業科學院園林花卉研究所實驗室。

1.2試劑

Taq DNA 聚合酶、dNTPs、DNA marker等試劑均購于上海生工生物工程有限公司。100條ISSR引物參照加拿大哥倫比亞大學（UBC）提供的序列，由上海生工生物工程有限公司合成。

1.3試驗方法

1.3.1采用改良CTAB法提取DNA用0.8%瓊脂糖凝膠電泳，以DL 2000為標準，檢查所得DNA的分子量、含量、純度、完整性，并將DNA濃度稀釋至40 ng/μL。

1.3.2ISSR-PCR正交試驗設計采用正交試驗建立 ISSR-PCR 反應體系并進行優化，參照陶興林等的方法[11-15]設置各個因素，考察模板DNA濃度、Taq DNA聚合酶、dNTPs、引物濃度等4個因素對ISSR反應體系的影響，設定5個水平，建立U20（54）均勻設計表（表1、表2），確立海南安諾蘭 ISSR-PCR 反應體系，每個處理重復2次。

3結論與討論

ISSR技術已被廣泛用于植物種質資源鑒定、植物遺傳多樣性等研究。ISSR擴增以PCR擴增為基礎，因此影響PCR擴增的因素如引物濃度、dNTPs濃度、模板濃度等都會對ISSR擴增產生影響。植物種類、試驗條件不同，各因子間相互影響產生的擴增結果也不相同，本研究中不同處理下的擴增條帶存在差異，因此須要對這些因子進行優化，選擇最佳組合。DNA Taq酶濃度是影響試驗結果的重要因素，其濃度過高容易產生非特異性擴增產物；濃度過低時，擴增產物效率下降。dNTPs濃度太高容易引起錯配，濃度過低會影響擴增效率。引物濃度則會影響擴增產物質量，濃度偏高會產生非特異性擴增，濃度太低則無法進行有效擴增。另外，退火溫度、循環次數等也是反應體系建立和優化的重要因素[16-17]。

本研究采用單因素與正交試驗相結合的方法，對PCR各單因子進行研究，建立了適合海南安諾蘭的ISSR反應體系，即：總體積15 μL，10×PCR Buffer（含Mg2+）2.0 μL，200 μmol/L dNTPs，0.5 μmol/L引物，1.0 U Taq DNA聚合酶，模板DNA 40 ng，其他為超純水。并用ISSR引物823檢驗了該體系的穩定性和可靠性，為海南安諾蘭的種質資源分析奠定了基礎。

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