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機械張力誘發小鼠增生性瘢痕的實驗研究

2014-07-28 08:01:10溫從吉傅士博周仁鵬王丹茹
組織工程與重建外科雜志 2014年3期
關鍵詞:小鼠

溫從吉 傅士博 周仁鵬 王丹茹

皮膚損傷后,纖維組織過度增生會形成增生性瘢痕,表現為隆起的紅色瘢痕,伴有慢性的炎癥反應,嚴重影響外觀,并可引起局部功能受限。增生性瘢痕的生理病理機制尚未完全清楚[1],缺少有效的治療及預防手段。張力對增生性瘢痕的形成具有重要作用。增生性瘢痕的好發部位,如前胸部、肩部、肩胛區部及恥骨弓上方等,均系日常活動中持續或間斷地處于張力環境下[2]。減少創面局部張力,可一定程度上抑制瘢痕增生及病理性瘢痕的復發[3]。目前,常用的方法有彈力衣、硅膠膜及減張膠布等[4]。但由于動物皮膚與人類存在較大的不同,目前的研究尚缺少有效的增生性瘢痕動物模型,無法在細胞及分子水平進行深入研究。2007年,Aarabi等[5]在小鼠背部皮膚模擬人類皮膚的張力環境形成了增生性瘢痕,類似于人類瘢痕,并能維持6個月以上。因此,我們研究該動物模型,以驗證該模型的有效性,及其是否可持續而穩定表達增生性瘢痕特征。

1 材料和方法

1.1 實驗動物

4周齡C57/BL6小鼠(中科院上海動物實驗中心),20只,體質量28±2 g,隨機分為兩組(n=10)。

1.2 實驗方法

小鼠麻醉下在背部縱向切開2 cm,6-0尼龍線縫合,4 d后拆線。創面以6-0尼龍線安裝牽拉裝置,實驗組于術后第4天開始牽拉,距離2 mm,之后隔天牽拉4 mm,至第14天;對照組安裝后不牽拉(圖1)。

圖1 機械牽拉裝置Fig.1Mechanical traction device

1.3 大體觀察

14 d后拆除裝置,牽引結束后1 d、30 d、60 d、90 d觀察小鼠瘢痕生長情況,包括面積、顏色和質地。

1.4 組織學觀察

牽引后1 d、30 d、60 d切取瘢痕組織,即刻4%多聚甲醛固定,脫水、透明、浸蠟、包埋,于瘢痕最凸起部位橫斷切片(厚度為5 μm),分別行HE和MASSON染色。

1.5 瘢痕面積測量

瘢痕面積根據瘢痕橫斷面HE染色數字圖像進行測量,隨機選取5個切片標本,采用Image Pro-Plus 6.0軟件進行分析,取平均值。

1.6 瘢痕細胞數目變化及膠原量變化情況

取牽引后1 d、30 d、60 d各時間段HE染色標本,100倍視野下取5個區域,使用Image Pro Plus 6.0標記,并統計細胞核數目,取平均值(細胞數/區域)。切片MASSON染色,膠原組織染成藍色,取各時間段組織標本,400倍視野下隨機選取5個區域,Image Pro Plus 6.0軟件統計膠原比例(創面膠原/正常組織膠原×100%)。

1.7 統計學分析

應用SAS 8.1軟件包進行數據統計學分析和處理,實驗數據以±s表示,不同時間點組間比較采用t檢驗,P0.05為差異有統計學意義。

2 結果

2.1 大體觀及瘢痕面積

通過14 d的機械牽引,小鼠背部創面可見明顯的瘢痕組織(4.09±0.31 mm2),輕度隆起于皮膚表面,色紅,質硬;牽引后30 d,瘢痕面積(3.5±0.2 mm2)較前縮小(P0.5),瘢痕周圍新生毛發組織生長旺盛;牽引后60 d,瘢痕面積(1.52±0.12 mm2)進一步縮小(P0.5)。牽引后90 d,瘢痕部位布滿毛發,中間隱約可見手術切口,瘢痕面積1.42±0.18 mm2。對照組去除裝置后當天及牽拉后30 d瘢痕面積未見明顯改變(1.50±0.18 mm2vs 1.46±0.19 mm2,P0.5)(圖2、3)。

圖2 大體外觀圖Fig.2Gross images

圖3 瘢痕面積變化趨勢Fig.3The area changes of loaded scars over time

2.2 組織學觀察

實驗組牽引后1 d創面新生表皮明顯增厚,局部增厚的表皮組織向下生長,疑似有毛囊的再生(圖4),肉膜組織切口處中斷,創面中央新生膠原組織填充,膠原中間布滿細胞,新生組織含新生血管組織較多;牽引后30 d,肉膜組織斷裂,表皮較前明顯變薄,瘢痕中央未見毛囊及皮脂腺等皮膚附屬器,膠原組織與表皮平行,毛細血管組織豐富,細胞數目較前減少,未見明顯的漩渦狀膠原結節;牽引后60 d,瘢痕組織的面積明顯縮小,但瘢痕中央部分膠原增粗且排列紊亂,兩側被含有毛囊新生組織替代。對照組術后30 d切口下方肉膜組織斷裂,但表皮及真皮組織完全愈合,未見明顯平行于表皮的纖維組織(圖5)。

圖4 牽引后1 d可見新生毛囊(MASSON染色)Fig.4Regenerative hair follicle was observed 1 days after traction by MASSON staining

圖5 組織學圖像Fig.5Histological images

2.3 瘢痕組織細胞數目及膠原變化

牽引后1 d,鏡下見組織內布滿細胞(317±20個/區域),膠原纖維主要為細而短的小纖維(0.1±0.02);牽引后30 d,發現膠原數量明顯增多,膠原纖維平行皮膚表面,細胞數目(165±13個/區域)較前明顯較少(P0.5);牽引后60 d;瘢痕部位細胞數目及膠原含量接近正常皮膚(73±11個/區域vs 80±10個/區域,P0.5)(0.95±0.09 vs 1±0.01,P0.5)(圖6)。

3 討論

由于對增生性瘢痕纖維增殖過程的病理機制尚不明了,目前的治療效果不理想。大量證據表明,張力跟增生性瘢痕有著密切聯系[3],我們在小鼠皮膚創面愈合早期給予機械張力刺激,14 d的持續牽拉后發現,形成的瘢痕在外觀和組織學上都符合人增生性瘢痕的特征,且在其后的60 d中可持續維持增生性瘢痕特征。

正常小鼠的皮膚跟人類皮膚解剖結構相差甚遠,其皮膚松弛,布滿毛發,創面形成后,皮下肉膜組織牽拉周圍皮膚向創面中央聚攏,促進創面愈合,且愈合后幾乎不留痕跡。因此,必須借助牽拉裝置對老鼠創周皮膚施加張力,才能模擬人類皮膚的張力環境[6],促使其形成瘢痕。給予張力刺激的時機是決定瘢痕形成效果的重要因素,如果在創面未完全愈合時,也就是還處于炎癥早期給予張力,會影響創面愈合,只有在重新上皮化即炎癥期后期施加張力才會產生增生性瘢痕,并且持續牽拉時間必須達到7 d以上才可能形成增生性瘢痕[5]。在持續牽拉14 d后,我們通過HE及MASSON染色發現,形成的瘢痕為增生性瘢痕,瘢痕組織內未見有明顯的毛囊及皮脂腺等皮膚附屬器,并且瘢痕組織明顯隆起于正常組織,色紅,質硬,且其后的2個月中瘢痕組織依舊可以維持上述特征。此外,我們還發現,瘢痕組織面積逐漸縮小,且被含有毛囊的新生組織占據。

哺乳動物的毛囊作為復雜的微型器官,一直被認為是不可再生的。但是,有研究認為,兔子、小鼠皮膚在創傷后,毛囊有完全再生的能力[7]。因為缺乏足夠證據,該觀點一直無法得到廣泛認可。Ito等[8]研究發現,正常的成年小鼠毛囊缺失后可重新生成,再生的毛囊擁有正常毛囊干細胞,表達毛囊結構分化標志,并產生毛發,擁有毛囊正常的生長周期。有研究證明,機體免疫作用是創面愈合過程中的重要因素,表皮γδT細胞可以分泌Fgf-7(成纖維生長因子)、Fgf-10和IGF1(胰島素樣生長因子),對角化細胞的存活、增殖及遷移有著重要作用[9]。Gay等[10]研究發現,當降低Fgf-7表達時,會減少創面誘導的毛囊再生;相反,當過表達Fgf-7時,新生毛囊則有2~3倍的增加,并且發現γδT細胞分泌的Fgf-7可引發wnt的表達,增強了創面成纖維細胞wnt的活性,而激活的成纖維細胞也表達Fgf-7,放大了真皮損傷后的wnt信號,促進皮膚毛囊的再生。但是,人類皮膚真皮嚴重缺少定居γδT細胞,創傷后不能誘導毛囊再生。本實驗中,小鼠的瘢痕組織面積縮小,被含有新生毛囊的正常組織替代,且接近于正常皮膚,驗證了小鼠毛囊可以再生,同時表明毛囊的再生對小鼠的瘢痕修復有著重要作用。

綜上所述,本實驗中的動物模型在術后60 d內可形成增生性瘢痕,且符合人增生性瘢痕特征;但因為創面誘發毛囊再生,使得瘢痕組織面積縮小,不能長期存在。

[1]Atiyeh BS.Nonsurgical manag ement of hypertrophic scars:evidence-based therapies,standard practices,and emerging methods[J].Aesthetic Plast Surg,2007,31(5):468-492.

[2]Ogawa R.Keloid and hypertrophic scarring may result from a mechanoreceptor or mechanosensitive nociceptor disorder[J].Med Hypotheses,2008,71(4):493-500.

[3]Ogawa R,Akaishi S,Huang C,et al.Clinical applications of basic research that shows reducing skin tension could prevent and treat abnormal scarring:the importance of fasical/subcutaneous tensile reduction sutures and flap surgery for keloid and hypertrophic scar reconstruction[J].J Nippon Med Sch,2011,78(2):68-76.

[4]Al-Attar A,Mess S,Thomassen JM,et al.Keloid pathogenesis and treatment[J].Plast Reconstr Surg,2006,117(1):286-300.

[5]Aarabi S,Bhatt KA,Shi Y,et al.Mechanical load initiates hypertrophic scar formation through decreased cellular apoptosis[J].FASEB J,2007,21(12):3250-3261.

[6]Davidson JM,Yu F,Opalenik SR.Splinting strategies to overcome confounding wound contraction in experimental animal models[J].Adv Wound Care,2013,2(4):142-148.

[7]Breedis C.Regeneration of hair follicles and sebaceous glands from the epithelium of scars in the rabbit[J].Cancer Res,1954,14(8):575-579.

[8]Ito M,Yang Z,Andl T,et al.Wnt-dependent de novo hair follicle regeneration in adult mouse skin after wounding[J].Nature,2007,447(7142):316-320.

[9]Jameson J,Ugarte K,Chen N,et al.A role for skin γδ T cells in wound repair[J].Science,2002,296(5568):747-749.

[10]Gay D,Kwon O,Zhang Z,et al.Fgf9 from dermal γδ T cells induces hair follicle neogenesis after wounding[J].Nat Med,2013,19(7):916-923.

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