內鏡下自體耳屏軟骨膜鼓室成形術的臨床研究

沈 菊，鄒輝文，向維仁

（九江市第一人民醫院耳鼻咽喉-頭頸外科，江西 九江 332000）

1967年Mers等［1］首先將耳內境手術應用于臨床耳科手術檢查及治療，由于微創、視野清晰及操作簡便，已被耳科醫師廣泛應用。2009年5月至2012年7月，九江市第一人民醫院在耳內境下應用自體耳屏軟骨膜對95例鼓膜穿孔的患者行Ⅰ型鼓室成形術，均取得了良好的效果。

1 對象與方法

1.1 研究對象

選擇在本院住院治療的鼓膜穿孔患者95例（均為單耳），男 53耳，女 42耳，年齡 17～58歲，病程3個月～20年。鼓膜穿孔均為中央型，直徑為2～8mm。其中慢性中耳炎鼓膜穿孔79例，外傷性鼓膜穿孔16例。所有患者術前均行全身常規檢查、電測聽、顳骨CT和耳內鏡檢查，所有病例骨導均正常，為500、1000及2000 Hz，平均骨導差為15～30 dB。顳骨CT檢查示:中耳乳突均無膽脂瘤及肉芽，無炎癥存在，咽鼓管功能均正常。

1.2 主要設備

使用桐廬醫療器械廠生產的0度、直徑為2.7 mm耳內鏡、stroz內鏡顯影系統及耳顯微器械。

1.3 手術方法

患者呈仰臥位，行全身麻醉插管后頭偏向健側，常規消毒鋪巾，以耳屏尖作縱行切開，取耳屏上方軟骨膜，耳屏軟骨膜盡量取大，最少比穿孔直徑大3 mm，晾干備用，縫合切口。

在耳內鏡下用鉤針刮除殘余鼓膜中鱗狀上皮及鈣化斑。搔刮穿孔緣內側面，使殘余鼓膜穿孔緣內側面形成新鮮滲血創面作為移植床，鼓室內填入適量的明膠海綿粒以支持植入物，將軟骨膜修剪至大于穿孔直徑2 mm。內植法:將軟骨膜自穿孔前端開始放置，然后再使其余各部置入內側，與移植床貼敷鋪平。鼓膜外面放置明膠海綿及填入碘仿紗條固定。術后給予抗生素預防感染，7 d切口拆線，2周后抽取外耳道內碘仿紗條。

2 結果

95例患者術后均隨訪1年，89例（93.68%）鼓膜完全愈合，術后3個月復查聽力，86例（89.6%）氣導聽閾均提高10 dB以上；6例鼓膜未愈合者主要是再次感染。

3 討論

內鏡在醫學領域應用已有近百年的歷史。近20年來隨著內鏡技術影像監視系統及手術器械的不斷發展，內鏡下微創手術以損傷小、患者痛苦少及恢復快等特點已在臨床上廣泛應用，由于內鏡多視角、視野廣、損傷小及操作方便，國內外已將其廣泛應用于耳科臨床中。Mers等［1-2］1967年最早詳盡描述了中耳內鏡檢查。并將內鏡用于外淋巴瘺可疑患者的診斷中。Tarabichi［3］將內鏡代替顯微鏡用于鼓室成型和膽脂瘤手術中。本院自2009年5月將耳內鏡應用于Ⅰ型鼓室成形術中，通過對95例鼓膜穿孔患者的手術，筆者認為其優點如下:1）取內鏡配合監視放大系統，作近距離窺視及操作，能更清楚地了解鼓膜穿孔的大小及形狀，易于移植物的裁剪及除去穿孔邊緣，不易造成殘余鼓膜撕裂；2）可窺視不同角度，圖像放大清晰，移動方便、創傷小，較手術顯微鏡使用方便、視野廣，可隨患者頭位變化，無須作耳道內切口，出血少，術中可多角度觀察鼓室內情況。但也有其不足之處，主要是內鏡鏡面易受血液污染，無法雙手操作，并缺乏立體感，但經過訓練亦可克服［4］。軟骨膜行鼓室成形術是一種操作簡單、安全有效的方法。

Ⅰ型鼓室成形術是耳科常規手術，所用的修補材料很多，如顳肌筋膜、蛋白海綿、雞蛋衣及自體脂肪導等，移植材料只是起到支架作用。Reijnen Duncan［5］以貓作實驗，證實筋膜移植 24 h 后，增生的上皮細胞主要從筋膜外側移行，5 d后大量的間葉細胞進入筋膜中，原來的筋膜組織逐漸退化，2周后筋膜大部分被新生的結締組織取代，其含有很多毛細血管和淋巴細胞，仍可以看到原結締組織的殘留，外層上皮完全覆蓋穿孔，并逐漸變薄。本研究中，筆者采用的是耳屏軟骨膜作移植材料，取材方便、材料新鮮、切口隱蔽及瘢痕小，質地較顳肌筋膜的韌性好，不易回縮變形，易于鋪平，不易隨吸引器或其他器械的移動而變動位置，手術時間短、花費小，術后效果好，鼓膜完全愈合率為93.68%。

綜上所述，筆者認為，耳內鏡下應用自體耳屏

［1］Mers B,Derbyshire A J,Brushenko A,et al.Fiberopic endotoscopesforexaminingthemiddleear［J］.Arch Otolargngol,1967,85:387－393.

［2］Cafaro J,Lee G S,Stone J S.Atoh1 expression defines activated progenitors and differentiating hair cells during avian hair cell regeneration［J］.Dev Dyn,2007,236（1）:156－170.

［3］Tarabichi M.Endoscopic middle ear surgery［J］.Ann Otol Rhinol Laryngol,1999,108（1）:39－46.

［4］Cotanche D A,Kaiser C L.Hair cell fate decisions in cochlear development and regeneration［J］.Hear Res,2010,266（1/2）:18－25.

［5］Reijnen Duncan L J,Anderson J K,Williamson K E,et al.Pattern of myosin expression during hair cell death and regeneration in the chick cochlea［J］.J Comp Neurol,2011,499:691－701.