彭又生,陳偉彥,李健雄(廣東省江門市中心醫院 529070)
20世紀80年代,專家利用雜交瘤技術獲得了能識別腫瘤特異性大分子糖蛋白抗原(CA),并研制了單克隆抗體識別系統。CA19-9抗原決定簇是唾液酸化Ⅱ型乳酸巖藻糖,對于胰腺癌等消化道腫瘤有重要的臨床意義[1]。目前,常用于CA19-9檢測的方法有酶標記法、放射免疫法以及化學發光法,因化學發光法檢測CA19-9具有高度敏感性和特異性在臨床廣泛應用。由于不同廠商的檢測系統采用不同的檢測方法,所使用的發光底物也不同,這就可能造成相同樣品在不同系統檢測時結果不一致,給臨床疾病的診斷及預后判斷帶來不便[2]。因此,本研究對本科室2種常用的CA19-9檢測系統的檢測結果進行比較,確定其相關性。
1.1 標本來源 按美國臨床實驗室標準化委員會(NCCLS)EP9-A2文件制備標本,收集江門市中心醫院2013年7月8~18日檢測CA19-9的新鮮血清,并從中抽取40份(低值10份,中值20份,高值10份)作為檢測標本。
1.2 儀器與試劑 Cobas e 411電化學發光儀、Beckman Dxi800化學發光儀,試劑和校準物均用其各自配套產品。Cobas e CA19-9試劑批號為17078504;Cobas e CA19-9校準物批號為16877201。Beckman CA19-9試劑批號為230437;Beckman CA19-9校準物批號為219439。Cobas e 411發光系統用A系統代表;Beckman Dxi800發光系統用B系統代表。
1.3 方法
1.3.1 取高低兩個濃度的BIO-RAD質控物在兩種化學發光檢測儀器上分別進行檢測,每份標本連續測定20次,計算批內變異系數(CV)值,每日測定1次,連續測定20d,計算批間CV值。
1.3.2 用配套定標液對所檢測的項目進行定標,同時做好質控,按EP9-A2將收集標本分別在2臺分析儀上及時進行檢測。
1.3.3 計算方法間的系統誤差,根據臨床使用要求,以CA19-9生物學變異確定的最佳允許總誤差(TEa)22.1%為標準[3],計算B系統和A系統之間的系統誤差即預期偏倚(SE)和相對偏倚(SE%),在CA19-9參考值上限25U/mL和250U/mL(CA19-9目前無醫學決定濃度)(Xc)代入回歸方程,計算Y與X之間的系統誤差及預期偏倚(SE)。SE=|Y-X|;SE%=(SE/Xc)×100%。
1.4 統計學處理 使用SPSS19.0統計學軟件對2種檢測系統相互間的差異作秩和檢驗,采用Wilcoxon檢驗。以P<0.05為差異有統計學意義。用Excel2003做離群值檢驗。以A系統作為基準系統,另外B系統與之做相關回歸分析,計算線性回歸方程YB=aXA+b。
2.1 兩種系統重復性試驗的結果 A、B分析系統低值批內CV分別為4.74%和4.75%;高值批內CV分別為4.33%和5.16%。A、B分析系統低值批間CV分別為4.87%和5.74%,高值批間CV分別為4.42%和6.02%。兩系統精密度良好,適合進行可比性研究。具體結果見表1。

表1 A、B兩種分析系統質控物測定結果
2.2 秩和檢驗結果 A與B系統Wilcoxon檢驗差異無統計學意義(P>0.05)。見表2。

表2 兩種分析系統CA19-9血清測定結果

圖1 A和B系統測定血清CA19-9結果的相關性
2.3 兩種檢測系統的相關性 用Excel2003計算離群值檢驗合格后(實驗時有一組間離群值,計算時刪除該值,補測一標本),以A系統作為基準系統,B系統與A系統相關回歸方程為YB=1.081 2 XA-4.848 4,r2=0.962 2。r2>0.95,說明回歸統計的斜率和截距可靠,可以估計不同檢測系統間的系統誤差。見圖1。
2.4 各發光檢測系統臨床可接受性能評價 以A系統作為基準系統,在CA19-9在測定濃度為25U/mL和250U/mL處,對B系統和A系統之間的SE和SE%進行計算。以是否小于CA19-9生物學變異確定的最佳的TEa22.1%為標準,臨床可接受性性能評價為可接受,見表3。

表3 2種檢測系統的臨床可接受性能評價(A系統作為基準系統)
CA19-9抗原決定簇是唾液酸化Ⅱ型乳酸巖藻糖,是腫瘤細胞神經節苷脂。CA19-9的特異單抗1116NS99是1981年從大腸腺癌系和免疫鼠雜交瘤產物分離而來,相對分子質量210×103。CA19-9升高見于胰腺癌、肝膽系癌、胃癌、結直腸癌、慢性胰腺炎、糖尿病等疾病[4]。CA19-9的檢測方法有放射免疫分析、酶免疫分析和化學發光免疫分析等多種方法。同一實驗室有時會用不同檢測系統進行相同檢驗項目的檢測,但結果是否具有可比性需要進行研究。本文按照美國臨床實驗室標準化委員會(NCCLS)EP9-A2文件要求,對2種全自動免疫分析儀檢測結果進行比對。2種系統重復性實驗的結果顯示,精密度均處于理想水平,可保證結果的可靠性。40例新鮮血清比對結果顯示,不同檢測系統血清CA19-9檢測值的差異無統計學意義(P>0.05,r2>0.95),說明這2種系統檢測的CA19-9結果相關性好,以CA19-9生物學變異確定的TEa22.1%為標準,符合臨床可接受性能評價。
雖然以生物學變異為標準通過了臨床可接受性能評價,但是CA19-9方法間SE%較大,本次實驗中出現一組間離群值。因CA19-9屬于既無參考測量程序又無參考物的項目,方法學狀況復雜多樣,系統間CV較大。Reinaur等[5]報道的室間質評結果中顯示,CA系列項目的中位數組間CV相對于其他腫瘤標志項目大。導致CA19-9測定方法和儀器系統檢測結果差異的原因主要有兩方面:其一,每家公司通常使用自己開發的特異性抗體和方法[6-7],抗體的特異性和親和性不同,原理也不相同。Cobas e 411采用三聯吡啶釕為底物的電化學發光,Beckman Dxi800采用堿性磷酸酶為底物的化學發光。其二,不同公司使用不同的校準物,校準物賦值方法和過程不同,由于生產廠商各自選擇了自己的“候選參考方法”和“參考物”。如Roche公司的CA系列根據其“Enzymun-Tes”進行標準化,后者又溯源至Fujirebio公司的RIA方法[7]。此外,對本次試驗中一組間離群值進行追蹤分析,排除偶然誤差和系統誤差引起,應是免疫反應的特異性有局限所引起。腫瘤患者體內其他高濃度CA可能會產生交叉反應,不同試抗體中其抗原結合位點特異性識別能力的高低,以及患者體內存在嗜異性抗體可競爭性結合CA19-9,而不同檢測系統排除上述干擾的能力差異也較大,這些原因都可能導致測定值的差異和離群值出現[8]。張江濤等[9]認為,腫瘤標志物評價項目大于80%的方法和儀器系統中位數之間無可比性,并且CV較大,參考各項目質量指標,不能實現結果可比,但貝克曼系統與羅氏系統間中位數差異無統計學意義(P>0.05)。本文檢測結果與其報道基本相符。建立標準化的免疫檢測系統,需要科研工作者的努力。由于科技的進步,方法內的精密度已經很高[10],如果能溯源至同一方法,方法間的可比性就會達到新的水平。
總之,本次研究結果顯示,以CA19-9生物學變異確定的TEa22.1%為標準,Cobas e 411檢測系統和Beckman Dxi800檢測系統CA19-9測定結果臨床可接受性能評價具有可比性。
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