孫欣欣,王紅兵,徐海洋
(1.徐州醫學院研究生學院,江蘇 徐州221002;2.徐州醫學院附屬醫院腫瘤內科,江蘇 徐州221002)
乳腺癌易感基因1(breast cancer susceptibility gene 1,BRCA1)是一個抑癌基因,參與基因的轉錄調節、細胞周期調控、DNA 雙鏈損傷修復、細胞凋亡和泛素化等重要的細胞活動,其中DNA 雙鏈修復途徑主要包括:同源重組修復、非同源末端連接[1-3]。胃癌是常見的惡性腫瘤之一,其發生、發展與癌基因的激活、抑癌基因的失活等因素有關,而基因啟動子CpG 島甲基化是抑癌基因失活的一重要途徑[4]。抑癌基因啟動子CpG 島異常甲基化常常導致其轉錄異常、表達下調甚至缺失,進而導致腫瘤的發生[5]。DNA 甲基化在腫瘤基因表達調控、分化發育、細胞增殖等方面起著重要作用,與腫瘤的發生、發展密切相關,因此成為當前分子學研究熱點之一。目前國內關于BRCA1 基因甲基化與BRCA1 mRNA 表達相關性在腫瘤中研究甚少,而在胃癌組織中尚無文獻報道。本研究采用甲基化特異性PCR 技術檢測37 例胃癌組織和對應癌旁組織及6 例正常胃組織中BRCA1 基因啟動子CpG 島甲基化狀態;采用逆轉錄PCR 技術檢測37 例胃癌組織和對應癌旁組織及6 例正常胃組織中BRCA1 mRNA 表達水平,探討BRCA1 基因啟動子CpG 島甲基化與BRCA1 mRNA 表達的相關性及其意義。
1.1 研究對象 收集2013年6月至2013年12月徐州醫學院附屬醫院經病理診斷證實的胃癌組織37 例,同時取其對應癌旁組織,另取6 例胃部良性病變旁正常胃組織作為對照組。所有胃癌患者術前均未接受過放化療,癌旁組織距離癌組織5 cm 以上。37 例患者中,男29 例,女8 例,年齡31 ~80 歲,中位年齡63 歲。所有標本均于術后30 min 內獲得,液氮速凍后-80 ℃冰箱保存。
1.2 主要試劑 基因組DNA 提取試劑盒、逆轉錄PCR 相關試劑盒購自北京天根生化科技有限公司,EZ DNA methylation-Gold、Hot start Taq DNA 聚合酶購自美國Zymo Research 公司,TRIzol 試劑購自美國ABI 公司,引物由上海生工合成。
1.3 方法
1.3.1 組織DNA 提取和甲基化修飾 每個樣本取30 mg 左右組織塊進行勻漿處理,參照組織基因組DNA 提取試劑盒說明書提取基因組DNA,UV3000 紫外分光光度儀測定DNA 濃度和純度,OD260/OD280比值在1.8 ~2.0 之間的DNA 用于甲基化修飾。各樣本DNA 取1.5 μg,參照EZ DNA 甲基化試劑盒說明書進行甲基化修飾,修飾好的DNA 洗脫后于-20 ℃保存。
1.3.2 甲基化特異性PCR 法 甲基化引物:M,F:5'-TCGTGGTAACGGAAAAGCGC-3',R:5'- AAATCTCAACGAACTCACGCCG-3'。非甲基化引物:U,F:5'-TTGGTTTTTGTGGTAATGGAAAAGTGT-3',R:5'-CAAAAAATCTCAACAAACTCACACCA-3'。PCR 反應體系:PCR 混合液(美國Zymo Research 公 司)12.5 μL,上 下 游 引 物(10 μmol·L-1)各1.0 μL,修飾好的模板2 μL,加無核酶水補足至25 μL。循環條件:95 ℃預變性10 min,然后進行40 個循環擴增:95 ℃變性30 s,甲基化引物及非甲基化引物分別在60 ℃、58 ℃退火55 s,72 ℃延伸30 s,最后于72 ℃延伸7 min。甲基化特異性引物(M)擴增的目的片段為75 bp,非甲基化特異性引物(U)擴增的目的片段為86 bp。取10 μL PCR 產物在3%瓊脂糖凝膠上電泳,以TIANGEN 50 bp DNA Lad-der(MD108-01)為標準DNA Marker 同步電泳,EB 染色后凝膠成像系統觀察結果并記錄。判斷標準[6]:M陽性、U 陰性為完全甲基化;M 陽性、U 陽性為部分甲基化;M 陰性、U 陽性為非甲基化。
1.3.3 RNA 提取及逆轉錄PCR 檢測mRNA 每個樣本取約100 mg 組織,采用Trizol 試劑(按照說明書操作)提取組織總RNA,紫外分光光度計檢測其濃度、純度,取總RNA 1 μg,按照逆轉錄說明書合成cDNA。普通PCR 擴增BRCA1 基因,引物如下:F:5'-TTGCGGGAGGAAAATGGGTAGTTA-3',R:5'-TGTGCCAAGGGTGAATGATGAAAG-3',擴增的目的片段為292 bp,內參照選用β-actin,F:5'-AAATCTGGCACCACACCTTC-3',R:5'-CCATCTCTTGCTCGAAGTCC-3',擴增的目的片段為432 bp。PCR 為25 μL 體系:2 ×Taq PCR Master-Mix(北京天根生化科技有限公司)12.5 μL,上下游引物(10 μmol·L-1)各1.0 μL,模板cDNA 2 μL,加水至25 μL,95 ℃預變性2 min,然后進行35 個循環擴增:95 ℃變性30 s,56 ℃退火30 s,72 ℃延伸1 min,最后于72 ℃延伸5 min。2%瓊脂糖凝膠電泳,電泳結果在紫外燈下觀察。根據以下標準判斷結果:432 bp 處出現條帶,同時292 bp 處出現條帶即可判斷該標本BRCA1 mRNA 表達陽性;僅432 bp 處出現條帶則判斷為BRCA1 mRNA 表達陰性。
1.4 統計學處理 采用SPSS 16.0 進行數據分析,BRCA1 基因甲基化、BRCA1 mRNA 表達結果比較采用χ2檢驗;BRCA1 基因甲基化與BRCA1 mRNA 表達之間的關系分析采用確切概率法及定性資料相關分析,檢驗水準α=0.05。
2.1 不同胃組織中BRCA1 基因啟動子CpG 島甲基化狀態 37 例胃癌組織中有18 例甲基化,其中6 例為完全甲基化,12 例為部分甲基化,總甲基化率為48.6%(18/37);對應37 例癌旁組織中2 例部分甲基化,總甲基化率為5.4%(2/37);6 例正常胃組織中均未檢測到BRCA1 基因甲基化,總甲基化率為0. 0%(0/6)。胃癌組織中BRCA1 基因啟動子CpG 島甲基化率顯著高于癌旁組織及正常胃組織,差異有統計學意義(χ2=17.541、5.021,P 均<0.05)。見圖1。
2.2 不同胃組織中BRCA1 mRNA 表達 37 例胃癌組織中,陽性表達18 例,陽性表達率為48. 6%(18/37);對應37 例癌旁組織中,陽性表達35 例,陽性表達率為94.6%(35/37),6 例正常胃組織中均陽性表達,陽性表達率100. 0% (6/6)。胃癌組織中BRCA1 mRNA 陽性表達率顯著低于癌旁組織和正常胃組織,差異有統計學意義(χ2=19.215、5.520,P 均<0.05)。見圖2。

圖1 不同胃組織中BRCA1 基因啟動子CpG 島甲基化檢測結果

圖2 不同胃組織中BRCA1 mRNA 表達情況
2.3 BRCA1 基因啟動子CpG 島甲基化與BRCA1 mRNA 表達的關系 18 例BRCA1 基因啟動子CpG島甲基化的胃癌組織中有4 例BRCA1 mRNA 表達陽性,19 例BRCA1 基因啟動子CpG 島非甲基化的胃癌組織中有14 例BRCA1 mRNA 表達陽性,胃癌組織中發生BRCA1 基因啟動子CpG 島甲基化的BRCA1 mRNA 陽性表達率顯著低于未發生甲基化的胃癌組織(χ2=9. 799,P <0. 05),BRCA1 基因甲基化與BRCA1 mRNA 表達成負相關(r= -0.515,P <0.05)。
BRCA1 基因是與家族性乳腺癌和卵巢癌相關的基因,定位于人染色體17q21,基因組DNA 長約100 kb,具有24 個外顯子,其中22 個外顯子轉錄7.6 kb mRNA,最終編碼一個由1 863 個氨基酸組成的蛋白質,其相對分子質量為220 000[7]。表觀遺傳學首先提出基因的DNA 序列沒有發生改變,而基因功能發生可遺傳的變異,并最終導致表型的改變,主要包括X 染色體失活、DNA 甲基化、組蛋白修飾、非編碼RNA 調控等[8]。DNA 甲基化是表觀遺傳學研究最深入的內容之一[9],指生物體在DNA 甲基轉移酶的催化下,以S-腺苷甲硫氨酸為甲基供體,將甲基轉移到特定的堿基上的過程。甲基化主要發生在啟動子CpG 島5'端胞嘧啶堿基,這些位點在正常情況下處于完全非甲基化狀態,CpG 島發生甲基化往往會導致基因的轉錄失活或沉默[10]。近年來研究[11]表明,抑癌基因的啟動子CpG 島異常甲基化導致其功能失活是腫瘤發生的重要機制之一。研究[12]也已證實啟動子CpG 島異常甲基化以及腫瘤相關基因的沉默是胃癌發生的重要機制,p16、APC 等基因甲基化在胃癌中已被研究。
本研究采用甲基化特異性PCR 技術檢測37 例胃癌組織和對應癌旁組織及6 例正常胃組織中BRCA1基因啟動子CpG 島甲基化狀態,結果顯示胃癌組織中總甲基化率為48.65%,顯著高于癌旁組織的5.4%和正常胃組織的0.0%。本研究結果提示胃癌組織中存在高比例的BRCA1 基因啟動子CpG 島甲基化,說明BRCA1 基因啟動子CpG 島甲基化可能參與了胃癌的發生、發展。本研究在2 例癌旁組織中也檢測到BRCA1 基因啟動子CpG 島甲基化,且對應癌組織中均存在該基因完全甲基化,癌旁組織中存在BRCA1 基因啟動子CpG 島甲基化,這一現象可能預示癌旁組織已經處于癌前病變階段。采用逆轉錄PCR 檢測37 例胃癌組織和對應癌旁組織及6 例正常胃組織中BRCA1 mRNA 表達水平,結果顯示,BRCA1 mRNA 的陽性表達率在胃癌組織中為48.6%,明顯低于對應癌旁組織的94. 6% 和正常胃組織的100. 0%。為了證實BRCA1 基因啟動子CpG 島甲基化狀態與BRCA1 mRNA 表達之間的關系,我們對胃癌組織中甲基化組和非甲基化組BRCA1 mRNA 表達的差異進行分析,結果顯示:18 例BRCA1 基因啟動子CpG 島甲基化的胃癌組織中有4 例BRCA1 mRNA 表達陽性,19 例BRCA1基因啟動子CpG 島非甲基化的胃癌組織中有14 例BRCA1 mRNA 表達陽性,而且BRCA1 基因啟動子CpG 島甲基化與BRCA1 mRNA 表達呈顯著負相關(r= -0.515,P <0.05),提示BRCA1 基因啟動子CpG島甲基化是導致BRCA1 基因失表達的原因之一。
綜上所述,我們初步證實了胃癌組織中存在高比例的BRCA1 基因啟動子CpG 島甲基化,BRCA1 基因啟動子CpG 島甲基化可能是導致BRCA1 mRNA 失表達的主要原因之一,BRCA1 基因啟動子CpG 島甲基化與胃癌的發生、發展有一定關系。由于DNA 甲基化是可逆的基因修飾過程,通過逆轉抑癌基因的甲基化狀態,恢復細胞正常生長的調節功能,可能成為胃癌治療的新靶點。
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