金明,牛宏亮,袁輝,趙煜
(甘肅省輕工研究院,甘肅蘭州,730000)
雞肉中富含蛋白質,而蛋白質的質量主要取決于氨基酸的組成和比例,尤其是必需氨基酸的組成和比例[1]。在目前儀器分析的領域中,禽肉類產品中多種氨基酸的分析方法的相關報道較少。最常用的分析方法有:氨基酸專用分析儀分析,高效液相色譜聯合柱前衍生系統分析,高效液相色譜柱后衍生法分析等。但是氨基酸專用分析儀的價格昂貴,專屬性強,儀器利用率低;高效液相色譜柱前衍生法分析自動化程度低、對柱子的損害大、前處理繁瑣;而高效液相色譜柱后衍生法分析彌補了這些缺點——自動化程度高、衍生物的穩定性高、對柱子的損害小、前處理簡單[2],尤其在一些中小型實驗室,能夠實現液相色譜檢測方法和液相色譜柱后衍生法之間的及時切換,提高了儀器的使用率。
美國七彩山雞肉,甘肅敦煌酒業有限公司提供。
18種氨基酸標準品:天門冬氨酸99.4%、蘇氨酸99.1%、絲氨酸 99.6%、谷氨酸 98.9%、甘氨酸98.8%、丙氨酸99.4%、纈氨酸99.4%、半胱氨酸99.1%、蛋氨酸99.2%、異亮氨酸99.4%、亮氨酸99.5%、酪氨酸99.4%、苯丙氨酸99.9%、脯氨酸99.0%、組氨酸99.5%、色氨酸99.1%、鹽酸賴氨酸99.2%、精氨酸99.0%,北京恒元啟天化工技術研究院;TRIONE?茚三酮柱后衍生試劑(型號T100C、色譜純)、酸性洗脫液Li275、中性洗脫液Li750、色譜柱再生液RG003等試劑,美國Pickering公司;石油醚(分析純)天津科密歐化學試劑有限公司;HCl(優級純),北京化工廠。
Agilent1200高效液相色譜分析儀(配有四元泵、紫外檢測器和真空在線脫氣機),美國安捷倫科技有限公司;Pickering PCX柱后衍生儀(配有Pickering離子交換柱及Pickering PCX工作站),美國Pickering公司;真空干燥箱(DZG-6050),上海森信實驗儀器有限公司;電熱恒溫干燥箱;數控超聲波清洗器,上海科導有限公司;離心機,長沙湘儀儀器有限公司。
1.3.1 混合氨基酸標準溶液的配制
根據各個氨基酸在色譜圖上的響應值高低不同,為使它們的響應值在色譜圖上一致,配制混標時,將各個單標的濃度配制在40~160 μg/mL內[3]。
1.3.2 樣品處理
雞肉需要取不同部位絞碎、稱量2.0~5.0 g,采用石油醚索氏抽提4~6 h,除去樣品中的脂肪,烘干。將樣品轉入到帶塞的玻璃試管中加入6mol/L HCl,經抽真空充入氮氣封住試管口,110℃烘箱內恒溫水解24 h,取出放置冷卻,將水解液用濾紙過濾到50 mL的容量瓶中用去離子水定容,再吸取1~2 mL于10 mL容量瓶內,50℃真空干燥后用去離子水定容,過 0.45 μm 膜,上機檢測[4]。
1.3.3 色譜分析條件
離子交換柱:Lithium Ion-exchange Column,3.0 mm ×250 mm;保護住(Lithium Guard Column),2.0 mm×2.mm,紫外檢測波長570 nm;反應器溫度,130℃;衍生試劑,茚三酮;衍生試劑流速0.30 mL/min;柱溫,40℃;進樣體積,10 μL。梯度洗脫條件:流動相流速0.32 mL/min,按表1中的條件進行梯度洗脫[5]

表1 流動相梯度洗脫程序Table 1 Mobile phase composition for the gradient elution program used in the chromatograph analysis
本試驗中選用的流動相為 Li275、Li750、RG003的梯度洗脫。Li275為酸性洗脫液,Li750為中性洗脫液,RG003為色譜柱再生液,全部由美國Pickering公司提供,使用該流動相時儀器響應信號較高。在這個流動相體系的梯度下洗脫,各個組分的分離比較好,得到滿意的色譜圖。
由美國 Pickering公司提供的 SERAPREP和URIPREP 2種樣品前處理試劑對雞肉類樣品并不適用。通過實驗證明,還是傳統的將樣品經過索氏抽提去除脂肪后再用HCl水解的方法比較實際,雖然時間較長,但是樣品回收率比較高。

圖1 18種氨基酸的標準色譜圖Fig.1 Chromatograms of 18 mixed standards amion acids

圖2 雞肉自身樣品中的18中氨基酸Fig.2 Chromatograms of 18 mixed amion acids in chicken sample
準確吸取已配制好的18種氨基酸的標準溶液2、4、8、10、20 μL 進樣,以峰面積對濃度進行線性回歸,繪制標準曲線。其中以天冬氨酸、纈氨酸、苯丙氨酸為例,其回歸方程分別和相關系數分別為:Y=5.26e+004x+1.37e+002,r=0.999 2;Y=5.35e+004x-1.47e+003,r=0.999 0;Y=3.93e+004x+2.51e+002,r=0.999 5。表明18種氨基酸在8 ~80 μg/mL內線性關系良好。其他氨基酸的回歸方程和相關系數見表2。
精密度試驗:準確吸取18中氨基酸混標10μL進樣,在上述色譜條件下重復進樣6次,測定峰面積,其中以天冬氨酸、纈氨酸、苯丙氨酸為例,計算其RSD分別為0.87%、0.81%、0.95%(n=6)。
重復性試驗:準確稱取5份樣品,按樣品處理方法處理制備樣品溶液,進樣測定,記錄峰面積,其中以天冬氨酸、纈氨酸、苯丙氨酸為例,計算其RSD分別為 1.2%、0.9%、1.1%(n=5)。
取已經測得含量的樣品溶液,分別加入18種氨基酸混標溶液,0.5、1、2 mL,其中以天冬氨酸、纈氨酸、苯丙氨酸為例,測得其平均回收率和相關系數分別為:102.5%(RSD=1.15%)、92.4%(RSD=1.04%)、87.6%(RSD=0.94%)。
其他氨基酸的精密度、重復性和回收試驗數據見表2。

表2 試驗方法線性、精密度、重復性、回收試驗數據表Table 2 linear,precision,repeatability,recovery of test method
按照上述1.3.2的樣品處理方法和1.3.3的色譜條件,對七彩山雞不同部位肉的18種氨基酸進行檢測,結果見表3。

表3 七彩山雞不同部位肉中18種氨基酸的含量Table 3 The content of 18 amino acid in different parts of chicken
從表3中得出:七彩山雞雞肉中18種氨基酸的平均含量為:天冬氨酸18.78 mg/g、蘇氨酸9.96 mg/g、絲氨酸 9.16 mg/g、谷氨酸 10.28 mg/g、甘氨酸12.31 mg/g、丙氨酸11.71 mg/g、纈氨酸10.18 mg/g、半胱氨酸 2.48 mg/g、蛋氨酸 5.72 mg/g、異亮氨酸8.49 mg/g、亮氨酸 11.22mg/g、酪氨酸 9.05 mg/g、苯丙氨酸9.44 mg/g脯氨酸9.66 mg/g、組氨酸3.15 mg/g、色氨酸 6.14 mg/g、鹽酸賴氨酸 8.97 mg/g、精氨酸10.91 mg/g,雞腿肉中各個氨基酸含量水平最高。整個雞肉中必需氨基酸(EAA)的含量為70.12 mg/g,氨基酸總量(TAA)為167.61 mg/g。非必需氨基酸(NEAA)含量為 97.49mg/g。EAA/TAA為41.84%,EAA/NEAA為0.72,分別超過WHO/FAO提出的EAA/TAA應為40%左右和EAA/NEAA應為0.6以上的參考蛋白質模式標準[6-8]。
經過計算,普通雞肉中必需氨基酸(EAA)的含量為:57.96 mg/g,氨基酸總量(TAA)為:141.77 mg/g。非必需氨基酸(EAA)的含量為:83.81 mg/g。EAA/TAA為:40.88%,EAA/NEAA為0.69,分別超過WHO/FAO提出的EAA/TAA應為40%左右和EAA/NEAA應為0.6以上的參考蛋白質模式標準。但是都低于美國七彩山雞肉中EAA/TAA和EAA/NEAA 的比值[9-10]。

表4 七彩山雞肉和普通雞肉樣品中18種氨基酸含量對比數據表Table 4 The contrast data of 18 amino acid,content in colorful montain chicken and ordinayr chicken
采用石油醚索氏抽提去除脂肪,6 mol/L鹽酸水解樣品。并且優化了色譜條件,采用Lithium Ion-exchange色譜柱(3.0 mm×250 mm),流動相采用Li175、Li750、RG003的梯度洗本文研究了高效液相色譜柱后衍生法測定雞肉中18種氨基酸的前處理方脫。以TRIONE茚三酮為柱后衍生試劑,檢測波長為570 nm。試驗方法的線性回歸、精密度、重復性、回收率等試驗都滿足檢測的要求。方法簡便、快捷、準確,分離效果好,選擇性高,檢測靈敏度高,方法穩定,同時適用于其他各種肉類產品中18種氨基酸的檢測。并且分析了雞肉中氨基酸的種類和比例,EAA/TAA為:41.84%,EAA/NEAA為0.72,分別超過 WHO/FAO提出的EAA/TAA應為40%左右和EAA/NEAA應為0.6以上的參考蛋白質模式標準。
分別對美國七彩山雞肉和市售普通雞肉中的18種氨基酸進行測定,根據試驗數據,2種雞肉中EAA/TAA和EAA/NEAA的比值分別都超過WHO/FAO提出的EAA/TAA應為40%左右和EAA/NEAA應為0.6以上的參考蛋白質模式標準。但是二者比之,七彩山雞肉的EAA/TAA和EAA/NEAA的比值比普通市售雞肉更高。
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