吳丹,王彩蓮,李春妍,鄭士亞
(1.東南大學醫學院附屬江陰醫院 腫瘤科,江蘇 江陰 214400; 2.東南大學附屬中大醫院 腫瘤科,江蘇 南京 210011; 3.南京醫科大學,江蘇 南京 210029)
·論 著·
胰腺癌Kras基因突變與Glut1高表達協同促進腫瘤發生
吳丹1,王彩蓮2,李春妍3,鄭士亞2
(1.東南大學醫學院附屬江陰醫院 腫瘤科,江蘇 江陰 214400; 2.東南大學附屬中大醫院 腫瘤科,江蘇 南京 210011; 3.南京醫科大學,江蘇 南京 210029)
目的:探討胰腺癌組織中Kras基因點突變的表達以及葡萄糖轉運蛋白-1(Glut1)表達在促進癌細胞惡性增生中的意義及作用,研究兩者之間的相關性。方法:收集46例胰腺癌患者組織蠟塊,應用免疫組織化學染色技術檢測Glut1在胰腺癌中的表達,熒光定量PCR測序法檢測胰腺癌標本中Kras基因點突變率。結果:46例胰腺癌中Glut1的陽性表達為40例(86.9%),正常癌旁組織中Glut1不表達,兩者差異有統計學意義(P<0.01)。Glut1的表達與年齡、腫瘤大小、腫瘤部位相關(P<0.05),與性別、淋巴結轉移、神經侵犯、病理分級、臨床分期、病理類型無關。在46例胰腺癌患者中有26例存在Kras基因點突變(56.5%),其中24例12密碼子突變(G34D 3例,G35D 21例);2例13密碼子突變(G38D 1例,C39D 1例)。Kras基因點突變與腫瘤大小、神經侵犯相關(P<0.05),與年齡、性別、淋巴結轉移、腫瘤部位、臨床分期、病理類型、病理分級無關。胰腺癌中Glut1蛋白呈高表達時,Kras基因存在明顯突變,有明顯相關性(r=0.99,P<0.05)。結論:Glut1高表達與Kras基因異常表達可能協同促進了胰腺癌的惡性病變。
胰腺癌; Kras基因; 葡萄糖轉運蛋白-1; 糖酵解
胰腺癌是惡性程度極高的癌癥之一,早期診斷困難,療效差,總體死亡率高達98%[1],中位生存期為診斷后4~6個月,5年生存率僅為5%[2]。掌握胰腺癌發生、發展的分子生物學機制并針對特定通路進行治療的手段,為胰腺癌的早期診斷以及治療提供有益的線索尤為重要。
我們通過運用免疫組織化學染色及PCR方法分別檢測46例胰腺癌組織標本中葡萄糖轉運蛋白-1(Glut1)的表達和Kras(Kirsten rat sarcoma viraloncogene homolog)基因突變,分析兩者之間的相關性,在分子水平上初步探討胰腺癌發生發展的機制,為胰腺癌的早期診斷及治療提供理論依據。
1.1 一般資料
來自江陰市人民醫院2005年1月至2014年12月間經外科手術切除的胰腺癌組織石蠟標本,共46例。所有病例資料完整,均經病理組織學確診,按照胰腺癌TNM分期標準進行分期[3]。其中男25例,女21例;年齡37~84歲,中位年齡66歲;高分化腺癌(Ⅰ級)10例,中分化腺癌(Ⅱ級)21例,低分化腺癌(Ⅲ級)15例;發生淋巴結轉移15例。病理分期:Ⅰ期25例,Ⅱ期21例。同時切取癌旁的胰腺組織標本作為正常胰腺組織對照。
1.2 主要試劑
兔抗人Glut1多克隆抗體(南京巴傲得生物科技有限公司),免疫組化EliVision plus試劑盒(福州邁新生物技術開發有限公司),人類Kras基因突變檢測試劑盒(蘇州科貝生物技術有限公司)。
1.3 胰腺癌組織及正常組織中Glut1免疫組化檢測
(1) 采用免疫組化S-P法,參照EliVision plus試劑盒說明書進行,具體如下:取胰腺癌組織,連續石蠟切片,60 ℃烘烤2 h,二甲苯脫蠟,然后水化,0.5%過碘酸處理后,予PBS沖洗;接著浸入檸檬酸緩沖液修復液加熱,再用PBS沖洗;滴加3%雙氧水,再次PBS沖洗;最后滴加正常山羊血清封閉液;滴加Glut1多克隆抗體一抗50 μl(稀釋度1∶250),放入4℃冰箱過夜;第2天復溫,PBS沖洗,并依次滴加生物素標化二抗,辣根過氧化物酶標記鏈霉卵白素溶液,PBS沖洗;最后DAB顯色,蘇木精復染,梯度酒精脫水,中性樹脂封片,鏡下查看切片。每組切片均以PBS代替一抗作為陰性對照,其他步驟同前。
(2) 免疫組化結果判斷:Glut1陽性表達定位于細胞膜和(或)細胞質。按腫瘤細胞陽性比率評分:0分,沒有細胞著色;1分,腫瘤細胞陽性率≤5%;2分,腫瘤細胞陽性率6%~14%;3分,腫瘤細胞陽性率15%~30%;4分,腫瘤細胞陽性率>30%。按腫瘤細胞著色強弱評分:0分,沒有細胞著色;1分,淺黃色;2分,棕黃色;3分,棕褐色。腫瘤細胞陽性率評分+腫瘤細胞著色強弱評分作為最終評分。根據最終評分,將Glut1染色分為4個等級:0-1分為陰性(0),2-3分為弱陽性(1+),4-6分為陽性(2+),>6分為強陽性(3+)。片內正常胰腺組織及間質細胞無著色,作為陰性對照。
1.4 PCR檢測胰腺癌組織中Kras突變基因的表達
(1) 基因組DNA抽提:采用Qiagen公司的DNA提取試劑盒(QIAamp DNA Mini Kit)提取組織DNA,常規切片厚4 μm 5~10張,經脫蠟、蛋白酶K消化及離心,將DNA洗脫。將DNA稀釋,稀釋至質量濃度為100 ng·μl-1,體積為50 μl。1張用于HE染色觀察形態,其余用于下一步提取DNA;顯微鏡下觀察HE切片,選取富于腫瘤細胞的區域,對應HE切片將腫瘤組織刮入裂解液,保證腫瘤成分80%以上。
(2) PCR法擴增Kras基因第2號外顯子:根據Kras基因組DNA序列設計PCR引物,Kras基因第2號外顯子上游引物為KRAS F1(GCCTGCTGAAAATGACTGAA)和KRAS F2(AAGGCCTGCTGAAAATGACTG),下游引物為KRAS R1 (GTATCGTCAAGGCACTCTTGC)和KRAS R2 (AGAATGGTCCTGCACCAGTAA)。PCR反應體系20 μl,反應條件如下: 95 ℃預變性15 min,95 ℃變性15 s,60 ℃退火15 s,72 ℃延伸15 s,共45個循環;72 ℃延伸2 min,至40 ℃結束。以雙蒸水代替DNA模板作為陰性對照,已知陽性病例作為陽性對照。取PCR擴增產物5 μl,2%瓊脂糖凝膠電泳,溴乙啶染色。
(3) DNA測序:將DNA PCR產物(20 μl)磁珠純化,配制測序反應體系,總反應體積5 μl,蓋緊PCR 管,用手指彈管混勻,稍離心后,將PCR 管置于PCR 儀上進行擴增。反應產物醋酸鈉純化后,上ABl3730 DNA Analyzer進行PAGE電泳。采用Sequence Analysis 軟件進行序列分析。
1.5 統計學處理
采用SPSS 19.0統計軟件進行數據處理,Glut1表達、Kras突變與各臨床指標的關系之間比較采用卡方檢驗,Glut1表達與Kras突變的相關性用Spearman法,P<0.05為差異有統計學意義。
2.1 Glut1在胰腺癌及正常胰腺組織中的表達結果
46例胰腺癌組織中,Glut1棕黃色或棕褐色陽性染色顆粒位于細胞質和(或)細胞膜,主要定位于細胞膜,陽性表達率為86.9%(40/46),正常胰腺組織中無陽性表達(表1、圖1),差異有統計學意義(P<0.01)。
表1 Glut1 在胰腺組織中的表達
2.2 Kras在胰腺癌中的突變情況
46例胰腺癌患者中有26例患者存在Kras基因突變(56.5%),其中24例12密碼子突變(G34D 3例,G35D 21例),2例13密碼子突變(G38D 1例,C39D 1例)。
2.3 胰腺癌中Glut1蛋白表達及Kras基因突變與胰腺癌臨床病理特征的關系
胰腺癌組織中Glut1表達與年齡、腫瘤大小、腫瘤部位具有顯著相關性,差異具有統計學意義(P<0.05)。Kras的突變與腫瘤大小和神經侵犯相關,差異具有統計學意義 (P<0.05)。見表2。
2.4 胰腺癌中Glut1蛋白表達與Kras基因突變的相關性
在Glut1陽性表達的標本中,隨著Glut1染色評分的遞增,KRAS基因的突變率明顯增加,差異具有統計學意義(r=0.99,P<0.05)。見表3。
Kras基因是Ras原癌基因家族的一員,其表達與細胞生長及分化密切相關[4]。以往研究證實,超過90%的胰腺癌都存在Kras基因的點突變[5]。在胰腺癌中,單氨基酸置換G12、G13或Q61導致K-ras GTP水解活性失活,而且降低了對GAP的敏感性,從而導致磷酸化的K-ras持續聚積,與下游效應分子結合,導致了細胞的惡性轉化[6]。Glut1是分布最廣泛的葡萄糖轉運蛋白,是一種膜性易化葡萄糖轉運蛋白,它的功能是運輸葡萄糖進入上皮細胞及促進細胞的代謝[7],它的表達強弱與腫瘤惡性程度有關[8]。
A.正常胰腺組織中Glut1表達為陰性,標記為(-)(×100); B.胰腺癌組織中Glut1陰性表達,標記為(-)(×200); C.胰腺癌組織中的Glut1的弱陽性表達,標記為(1+),(×200); D.胰腺癌組織中的Glut1的中度陽性表達,標記為(2+)(×200); E.胰腺癌組織中Glut1強陽性表達,標記為(3+)(×200)
圖1 免疫組化檢測Glut1在胰腺癌及正常胰腺組織中的表達
表2 Glut1表達及Kras突變與患者臨床病理特征的關系
表3 Glut1表達與Kras突變之間的相關性
Spearman’s rank test法:r=0.99,P=0.033
在低糖環境下Kras野生型細胞很難存活,而存活下來的Kras突變型細胞中Glut1高表達,且其中4%發生親代未出現過的Kras突變[9]。進一步研究表明,Kras基因突變與Glut1表達在肺癌組織中也存在一定的的相關性[10]。兩者關系在胰腺癌組織中是否相關,目前還沒有相應的臨床研究。鑒于此,我們以胰腺癌組織為標本,檢測了46例癌組織切片中Glut1的表達及Kras的突變,結果顯示胰腺癌中Kras基因突變率為56.5%,主要是12位點突變。而Glut1蛋白陽性表達率為86.9%,對應癌旁組織基本無表達,且其與Kras突變率呈正相關,提示KRAS基因突變可上調Glut1的表達。
在胰腺癌治療中以Kras突變的靶向治療方案并沒有取得令人驚喜的研究進展[11-12]。因此,我們便進一步探討針對細胞Kras基因的下游靶點的療法研究。PET/CT是胰腺癌的可靠而有效的診斷方法[13],而利用氟代脫氧葡萄糖(FDG)可以動態監測腫瘤細胞葡萄糖吸收。目前,抗腫瘤細胞能量代謝正成為抗腫瘤治療的研究熱點。與正常細胞不同,腫瘤細胞即使在供氧充足的情況下,葡萄糖依舊向乳酸轉換,這種代謝稱為有氧酵解或“Warburg效應”。研究發現,缺氧可誘導卵巢癌和肺癌細胞FDG攝入量增加,并可通過低氧誘導因子(hypoxia inducible factor,HIF)HIF-Ia上調Glut1的表達,促進腫瘤細胞糖代謝。
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癌基因Ras的突變或者過表達常見于惡性腫瘤,通過介導HIF表達,來促進糖酵解。在應用誘導Kras G12位點突變建立的胰腺癌小鼠模型中,Kras G12位點突變在控制腫瘤代謝中作用很大,主要通過刺激葡萄糖攝取,驅動糖酵解,促進腫瘤發生發展[14]。已有研究結果[15]證實,針對糖酵解過程的腫瘤治療手段是可行的。Kras突變與Glut1存在一定的相關性[16-17]。因此,我們猜想胰腺癌細胞Glut1的高表達可能與腫瘤在低氧環境下Kras基因的突變介導HIF的高表達有關,但是仍需要大量后續研究去證實。靶向Glut1及糖酵解治療胰腺癌也不失可作為Kras分子靶向治療的新手段,且具有良好的應用前景。
[1] SIEGEL R,NAISHADHAM D,JEMAL A,et a1.Cancer statistics,2013[J].CA Cancer J Clin,2013,63(1):11-30.
[2] LI D,XIE K,WOLFF R,et al.Pancreatic cancer[J].Lancet,2004,363:1049-1057.
[3] 孫燕,石遠凱.臨床腫瘤內科手冊[M].5版.北京:人民衛生出版社,2011:527-528.
[4] COX A D,DER C J.Ras history:the saga continues[J].Small GTPases,2010,1(1):2-27.
[5] BIANKIN A V.Pancreatic cancer genomes reveal aberrations in axon guidance pathway genes[J].Nature,2012,491:399-405.
[6] SCHEFFZEK K,AHMADIAN M R,KABSCH W.The Ras-RasGAP complex:structural basis for GTPase activation and its loss in oncogenic Ras mutants[J].Sci,1997,277(5324):333-338.
[8] SMITH T A.Facilitative glucose transporter expression in human cancer tissue[J].Br J Biomed Sci,1999,56:285-292.
[9] YUN J,RAGO C,CHEONG I,et al.Glucose deprivation contributes to the development of KRAS pathway mutations in tumor cells[J].Science,2009,325:1555-1559.
[10] SASAKI H,SHITARA M,YOKOTA K,et al.Overexpression of Glut1 correlates with Kras mutations in lung carcinomas[J].Mol Med Rep,2012,5:599-602.
[11] RINEHART J,ADJEI A A,LORUSSO P M,et al.Multi-center phase Ⅱ study of the oral MEK inhibitor,CI-1040,in patients with advanced non-small-cell lung,breast,colon,and pancreatic cancer[J].J Clin Oncol,2004,22:4456-4462.
[12] SINGH A,SETTLEMAN J.Oncogenic K-ras “addiction” and synthetic lethality[J].Cell Cycle,2009,8:2676-2677.
[13] 包善華,余仔軍,謝敏,等.PET/CT對胰腺癌診斷價值的初步探討[J].現代醫學,2010,38(3):234-237.
[14] SCHEFFZEK K,AHMADIAN M R,KABSCH W,et al.Oncogenic Kras maintains pancreatic tumors through regulation of anabolic glucose metabolism[J].Cell,2012,149:656-670.
[15] CLEM B F,O’NEAL J,TAPOLSKY G,et al.Targeting 6-phosphofructo-2-kinase (PFKFB3) as a therapeutic strategy against cancer[J].Mol Cancer Ther,2013,12(8):1461-1470.
[16] HIGASHI T,SAGA T,NAKAMOTO Y,et al.Relationship between retention index in dual-phase (18)FFDG PET,and hexokinase-Ⅱ and glucose transporter-1 expression in pancreatic cancer[J].J Nucl Med,2002,43(2):173-180.
[17] RESKE S N,GRILLENBERGER K G,GLATTING G,et al.Overexpression of glucose transporter 1 and increased FDG uptake in pancreatic carcinoma[J].J Nucl Med,1997,38(9):1344-1348.
Synergy of tumorigenesis between high-Glut1 expression and Kras mutation in pancreatic cancer
WU Dan1,WANG Cai-lian2,LI Chun-yan3,ZHENG Shi-ya2
(1.DepartmentofOncology,theAffiliatedJiangyinHospitalofSoutheastUniversityMedicalCollege,Jiangyin214400,China; 2.DepartmentofOncology,ZhongdaHospital,SoutheastUniversity,Nanjing210009,China; 3.NanjinMedicalUniversity,Nanjing210029,China)
Objective: To analyze the relationship between overexpression of Glut1 and Kras mutations in pancreatic cancer.Methods:In 46 cases of pancreatic carcinoma and 46 cases of tumor adjacent normal pancreatic tissues,immunohistochemistry was performed for Glut1 expression status. Kras mutation status was also evaluated using PCR-based assays.Results:Glut1 expression was increased in 40(86.9%) pancreatic cancer cases. At the same time ,it was not expressed in adjacent controls (P<0.001).The Glut1 overexpression was significantly associated with age(<56,62.5%vs>56,92.1%,P<0.05),tumor size(<6 cm,92.1%vs>6 cm,62.5%,P<0.05),tumor location(head,100%vsnon-head,71.4%,P<0.01),Kras mutation was found in 26 (56.5%) pancreatic cancer cases. The Kras mutation was associated with tumor size(<6 cm, 63.2%vs>6 cm, 25%,P<0.05),nerve invasion (absent,51.3%vspresent,88.9%,P<0.05). The Glut1 overexpression status was significantly correlated with Kras mutation status (r=0.99,P<0.05).Conclusion:Our results strongly suggest that overexpression of Glut1 is significantly correlated with Kras mutations in pancreatic cancer to increase the tumor genesis.
pancreatic cancer; glucose transporter isoform 1; Kras; glycolysis
2015-09-22
2015-10-14
吳丹(1978-),女,江蘇江陰人,主治醫師。E-mail:wudan96121@163.com
吳丹,王彩蓮,李春妍,等.胰腺癌Kras基因突變與Glut1高表達協同促進腫瘤發生[J].東南大學學報:醫學版,2015,34(6):982-986.
R735.9
A
1671-6264(2015)06-0982-05
10.3969/j.issn.1671-6264.2015.06.028