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硫化氫保護被ATP損傷的PC12細胞*

2015-05-16 00:50:43宋景貴韓亞州李東亮新鄉醫學院生理學與神經生物學教研室附屬中心醫院第三附屬醫院第二附屬醫院河南新鄉00沁陽市人民醫院神經內科河南沁陽0
中國病理生理雜志 2015年7期

馬 潔,沈 慧,王 璐,宋景貴,韓亞州,李東亮△(新鄉醫學院生理學與神經生物學教研室,附屬中心醫院,第三附屬醫院,第二附屬醫院,河南新鄉00;沁陽市人民醫院神經內科,河南沁陽0)

硫化氫保護被ATP損傷的PC12細胞*

馬潔1,2,沈慧1,3,王璐1,宋景貴4,韓亞州5,李東亮1△
(新鄉醫學院1生理學與神經生物學教研室,2附屬中心醫院,3第三附屬醫院,4第二附屬醫院,河南新鄉453003;5沁陽市人民醫院神經內科,河南沁陽454550)

[摘要]目的:觀察硫化氫的供體硫氫化鈉( NaHS)對三磷酸腺苷( ATP)誘導的PC12細胞活力、胞內Ca(2 +)濃度([Ca(2 +)]i)及膜通透性的變化,探討硫化氫神經保護作用的嘌呤信號機制。方法:將對數生長期高分化的PC12細胞,隨機分為4組,分別為( 1)正常對照組:常規培養,不進行ATP處理; ( 2) ATP組:接種細胞24 h后ATP處理; ( 3) NaHS + ATP組: NaHS預先孵育30 min后再用ATP處理,并且NaHS始終存在于反應體系中; ( 4) KN-62 ( P2X7受體阻斷劑) + ATP組: KN-62預先孵育30 min,其余同NaHS + ATP組。MTT檢測各組細胞活力,Fura-2/ AM熒光染料檢測各組[Ca(2 +)]i,檢測熒光染料YO-PRO-1的相對熒光單位以反映膜的通透性。結果: ( 1) 0. 3 mmol/L ATP對細胞活力無影響,但1、3、5、10 mmol/L ATP則呈濃度依賴式明顯降低細胞活力,200 μmol/L NaHS干預可明顯逆轉ATP引起的細胞活力下降( P<0. 05),而800 μmol/L NaHS預處理則加劇ATP對PC12細胞的損傷( P<0. 05)。( 2) ATP處理PC12細胞會引起[Ca(2 +)]i迅速升高并且呈濃度依賴性,NaHS預處理能對抗ATP引起的[Ca(2 +)]i升高( P<0. 05)。( 3)隨著ATP濃度的增加及作用時間的延長,PC12細胞內YO-PRO-1的熒光強度顯著增加,NaHS預處理可明顯減少細胞對YO-PRO-1的攝取( P<0. 05)。結論:硫化氫可保護ATP損傷的PC12細胞,可能與其抑制[Ca(2 +)]i升高和YO-PRO-1熒光增強有關。

[關鍵詞]三磷酸腺苷;硫化氫;嘌呤P2X7受體; PC12細胞

近年來三磷酸腺苷( adenosine triphosphate,ATP) -P2X嘌呤信號途徑在腦缺血-再灌注損傷中的作用逐漸受到關注,而對P2X7受體亞型的研究則成為焦點。在正常生理狀態下,ATP作用于P2X7受體并將其激活,引起Ca2 +和Na+內流,K+外流,細胞去極化。而在腦缺血-再灌注損傷時,損傷的神經元和膠質細胞釋放大量的ATP[1],這些高濃度的ATP持續地刺激P2X7受體,不僅使神經元去極化的內向電流振幅隨時間增強[2],而且可形成大的“膜孔”,900 Da以下的各種物質(如NMDG+、YO-PRO-1和ethidium)都可以自由通過[3],此后進一步引起活性氧、谷氨酸、ATP等炎性物質的釋放及炎性體的生成,導致細胞水腫,空泡形成,甚至凋亡和壞死,造成腦、神經組織的繼發性損傷[4]。胞外高濃度的ATP是“死亡因子”的理念已經被研究者普遍認可,近年來的研究報道也相繼證實了ATP的損傷作用[5]。

關于硫化氫( hydrogen sulfide,H2S)抗缺血-再灌注損傷的機制目前有幾種說法,如激活KATP通道說、抑制興奮毒說、抗氧化說等。而本實驗室前期的研究結果證實了ATP損傷PC12細胞與P2X7受體有關,本文則關注H2S對ATP損傷PC12細胞保護作用機制及其關鍵分子靶點,試圖為H2S的臨床應用提供一些實驗證據。

材料和方法

1細胞系和主要試劑

PC12細胞購于中國科學院上海生科院細胞資源中心。

MTT、ATP、H2S供體硫氫化鈉( sodium hydrosulfide,NaHS)、P2X7受體阻斷劑KN-62和DMEM培養基均購自Sigma; Fura-2/AM購自Dojindo; YO-PRO-1 Iodide購自Invitrogen;胎牛血清購自HyClone。

2方法

2.1母液及工作液配制ATP用無菌三蒸水配成500 mmol/L的母液,NaHS用無菌三蒸水配成50 mmol/L的母液。KN-62用無菌DMSO配成1 mmol/ L的母液。上述各母液分裝后避光于-20℃保存,在使用前配成適宜濃度的工作液。

2.2細胞培養及實驗分組PC12細胞置于含10%胎牛血清的DMEM培養基中,在37℃、5% CO2培養箱中常規培養。實驗取對數生長期細胞進行,分為正常對照組( DMEM培養基常規培養)、ATP組(接種細胞24 h后用ATP處理)、NaHS + ATP組( NaHS孵育30 min后再用ATP處理,并且NaHS始終存在于反應體系中)和KN-62 + ATP組( KN-62預先孵育30 min,其余同NaHS + ATP組)。

2.3MTT檢測細胞活力對數生長期的細胞消化后,稀釋為5×105/L密度的細胞懸液,每孔100 μL接種于96孔板中。按照上述方法分組,每組設5個復孔,藥物按預定作用時間處理后,加入以PBS配制的濃度為5 g/L的MTT 10 μL,以上配液及加藥過程均需避光操作。37℃培養箱中孵育4 h后取出培養板,吸去孔內培養基,每孔加入DMSO 100 μL,置搖床上低速振蕩10 min,使結晶物充分溶解。在酶聯免疫檢測儀波長為490 nm處測量各孔的吸光度( A)。根據下列公式計算各組細胞活力:活力( %) = ( A處理組-A空白組) /( A對照組-A空白組)×100%,實驗重復3次。

2.4細胞內鈣離子濃度( intracellular Ca2 +concentration,[Ca2 +]i)的測定取對數期生長的細胞,以2 ×105/L的細胞密度接種于35 mm的培養皿中,24 h后各組細胞按分組的描述進行處理。5 μmol/L的Fura-2/AM孵育30 min后常規洗滌,HBSS孵育30 min,使用具有Ca2 +成像系統的熒光顯微鏡檢測ATP引起的[Ca2 +]i變化,[Ca2 +]i以340 nm熒光強度與380 nm熒光強度( F340/F380)的比值來計算。

2.5YO-PRO-1攝入實驗檢測膜孔形成細胞膜孔形成時分子量為629 Da的YO-PRO-1可進入細胞與核酸結合發出綠光,因此可根據熒光強度反映膜孔開放的程度。YO-PRO-1與ATP同時加入各組,使YO-PRO-1溶液的終濃度為2 μmol/L。37℃孵育1 h,此后使用多功能酶標儀檢測(激發波長485 nm,發射波長516 nm)。YO-PRO-1熒光強度= A實驗組/ A對照組×100%。本實驗將對照組細胞攝取的熒光強度定為100%。

3統計學處理

數據以均數±標準誤( mean±SEM)表示,采用SPSS統計軟件進行處理,多組間顯著性檢驗用單因素方差分析( one-way ANOVA),以P<0. 05為差異有統計學意義。

結果

1 ATP誘導的PC12細胞活力的變化

以空白對照組細胞活力設為100%,0. 3、1、3、5 和10 mmol/L ATP作用3 h后,PC12細胞活力分別為98. 7%、87. 5%、83. 0%、80. 4%和72. 4%,除0. 3 mmol/L組與對照組無顯著差異外,其余各組細胞活力均明顯低于空白對照組( P<0. 05),且隨著ATP濃度增大,PC12細胞活力逐漸下降,見圖1。

2 NaHS對ATP誘導的PC12細胞活力的影響

不同濃度NaHS預孵育PC12細胞半小時后再用ATP( 3 mmol/L)處理。以空白對照組細胞活力為100%,ATP ( 3 mmol/L)組為83. 0%,50 μmol/L NaHS組為80. 0%,與ATP組相比無明顯差異; 200 μmol/L NaHS組為88. 4%,明顯高于ATP組( P<0. 05) ; 800 μmol/L NaHS組為74. 2%,與ATP組相比反而下降( P<0. 05)。由此表明濃度為200 μmol/ L的NaHS對ATP損傷的PC12細胞具有保護作用,但濃度為800 μmol/L的NaHS對細胞表現為損傷作用,見圖1。

3 ATP處理對PC12細胞[Ca2 +]i的影響

Figure 1.The effects of NaHS on the viability of PC12 cells injured by ATP.Mean±SEM.n = 3.**P<0. 01 vs control group;#P<0. 05 vs ATP group.圖1 NaHS對ATP致傷PC12細胞活力的影響

Figure 2.The effects of different concentrations of ATP on[Ca2 +]iof PC12 cells.Mean±SEM.n = 20.**P<0. 01 vs control group.圖2 不同濃度ATP對PC12細胞[Ca2 +]i的影響

如圖2所示,加入1 mmol/L ATP后[Ca2 +]i輕微升高,與給藥前相比無明顯差異,但3 mmol/L ATP組[Ca2 +]i增加50%,顯著高于給藥前的基礎值( P<0. 01),5 mmol/L ATP組給藥后[Ca2 +]i增加66. 3%,也明顯高于給藥前( P<0. 01)。結果提示一定濃度的ATP激活相應的嘌呤受體后,可使[Ca2 +]i明顯增加,Ca2 +或許是嘌呤信號分子在細胞內傳遞的關鍵分子。

4 KN-62與NaHS抑制ATP介導的[Ca2 +]i增高

分別給予P2X7受體阻斷劑KN-62與NaHS處理PC12細胞均未引起[Ca2 +]i增加,表明單獨使用KN-62或NaHS并不能改變PC12細胞[Ca2 +]i,即KN-62與NaHS均不能激活P2X7受體。

而P2X7受體阻斷劑KN-62預孵育0. 5 h后再加入ATP( 3 mmol/L),KN-62 + ATP組[Ca2 +]i增幅為14. 5%,明顯低于ATP( 3 mmol/L)組的50%增幅( P<0. 01),表明ATP介導的[Ca2 +]i增高與P2X7受體的激活有關。NaHS預孵育0. 5 h后再加入ATP ( 3 mmol/L),NaHS + ATP組[Ca2 +]i增幅為21. 3%,也明顯低于ATP( 3 mmol/L)組的50% ( P<0. 01)。表明NaHS有類似于KN-62下調ATP介導的[Ca2 +]i升高的作用。

若將NaHS和ATP同時加入,[Ca2 +]i增幅為42. 6%,與單純ATP( 3 mmol/L)處理組沒有顯著差異( P>0. 05)。而NaHS預孵育0. 5 h后再加入ATP ( 3 mmol/L),[Ca2 +]i為21. 3%,明顯低于ATP( 3 mmol/L)組( P<0. 01)。表明NaHS存在于反應體系的時間及與ATP加入的先后順序決定其作用的效果,0. 5 h的預處理能逆轉ATP介導的[Ca2 +]i升高,見圖3。

Figure 3.Inhibitory effects of KN-62 and NaHS on the increase in[Ca2 +]iinduced by ATP in PC12 cells.Mean±SEM.n = 20.**P<0. 01 vs ATP group;##P<0. 01 vs NaHS + ATP group.圖3 KN-62與NaHS抑制ATP介導的PC12細胞[Ca2 +]i的升高

5 ATP對PC12細胞膜孔形成的影響

不同濃度的ATP作用于PC12細胞1 h后,細胞對YO-PRO-1的攝取量隨ATP濃度的增加而增強,3 mmol/L ATP在分別作用15、30和60 min后,PC12細胞對YO-PRO-1的攝取隨時間的延長也明顯增強。表明ATP介導的PC12細胞膜孔形成既取決于ATP的濃度,又受到ATP作用時間長短的影響,見圖4。

Figure 4.The effect of ATP on the uptake of YO-PRO-1 in PC12 cells.Mean±SEM.n =3.**P<0. 01 vs 0 mmol/L;##P<0. 01 vs 15 min.圖4 ATP對PC12細胞YO-PRO-1攝入的影響

6 KN-62與NaHS抑制ATP介導的細胞膜孔形成

分別用KN-62和NaHS預孵育0. 5 h再加入ATP( 3 mmol/L),如圖5所示,NaHS + ATP組與KN-62 + ATP組對YO-PRO-1的攝取都明顯弱于單純ATP( 3 mmol/L)組( P<0. 01),表明NaHS和KN-62 對ATP介導的細胞膜孔形成都有抑制作用。

Figure 5.The effects of KN-62 and NaHS on YO-PRO-1 uptake induced by ATP in PC12 cells.Mean±SEM.n = 3.**P<0. 01 vs control group;##P<0. 01 vs ATP group.圖5 KN-62和NaHS對胞外ATP誘導的PC12細胞攝入YO-PRO-1的影響

討論

PC12細胞是一種大鼠腎上腺嗜鉻細胞瘤細胞,在NGF誘導下其分化、生長、生理功能等方面均類似于神經元。用高濃度ATP處理PC12細胞,則類似于模擬體內各種病理條件如缺血、炎癥、休克時損傷神經元、膠質細胞釋放的大量ATP對病灶周圍正常神經元產生的損傷。本文的實驗表明0. 3 mmol/L ATP 對PC12細胞活力無影響,但隨ATP濃度的增加,PC12細胞的活力逐漸下降,傷亡的細胞也明顯增多,這些結果表明高濃度的ATP的確能造成神經元損傷并死亡。NaHS對ATP致傷PC12細胞的保護作用與其濃度有關,本實驗的結果顯示200 μmol/L濃度的保護作用較佳,更高濃度800 μmol/L的NaHS卻對ATP誘導的PC12細胞起損傷作用。有文獻指出過量的H2S是細胞色素氧化酶的強抑制劑,能與線粒體內膜呼吸鏈中的氧化型細胞色素氧化酶中的Fe3 +結合,抑制電子傳遞和氧的利用,引起細胞內缺氧,造成細胞內窒息[6]。孟金蘭等[7]也證實了在PC12細胞中,50~200 μmol/L NaHS可呈濃度依賴性促進存活素表達,而800 μmol/L NaHS處理后存活素的表達明顯低于對照組,與本實驗的結果相符合,都表明800 μmol/L NaHS對PC12細胞本身可能有損傷作用。

在真核細胞中,Ca2 +是一個非常重要的第二信使,參與調節細胞的各種生理生化反應過程[8]。在生理情況下,維持細胞內鈣穩態對健康細胞的生命活動是非常必要的,胞內Ca2 +的失調必將引起細胞損傷死亡。行妍妍等[9]提出了“鈣調整點”的假說,認為細胞內Ca2 +濃度過高或過低都會抑制細胞神經突起的生長,影響突觸傳遞、可塑性及神經元的發育。然而,神經系統功能發生紊亂(如腦缺血、低氧癥、低血糖癥、癲癇等)時,神經元將受到異常刺激,細胞內外的Ca2 +濃度發生波動[10]。腦卒中發生時,機體內的糖酵解增加,使乳酸和酮體聚積,pH值降低,引起細胞內鈣超載,胞漿內游離Ca2 +增多,線粒體膜電位降低,從而誘發神經細胞凋亡或壞死[11]。30年前Chahwala等[12]報道了細胞外的ATP能夠引起Ca2 +、Na+內流并使MEL細胞的活力下降。由此可見[Ca2 +]i增加會對細胞造成致命的損傷,維持[Ca2 +]i相對穩定對細胞的正常生存具有深遠的意義。

有研究表明體外活化P2X7受體需要細胞外ATP濃度≥1 mmol/L,而活化其它的P2受體需要ATP濃度<100 μmol/L[13],在我們實驗中1 mmol/L ATP對PC12細胞[Ca2 +]i影響甚小,3、5 mmol/L ATP使[Ca2 +]i顯著升高,看來ATP誘導PC12細胞[Ca2 +]i升高可能主要是通過激活細胞上的P2X7受體實現的。為證實這一觀點,我們進一步使用P2X7受體特異性的阻斷劑KN-62預處理,結果發現能對抗ATP引起的[Ca2 +]i升高,從而也印證了上述觀點。NaHS與ATP同時加入培養體系,ATP引起的PC12細胞[Ca2 +]i升高的現象沒有被抑制,而NaHS預孵育0. 5 h后再加入ATP,[Ca2 +]i升高卻明顯被逆轉,表明NaHS預孵育可以抑制P2X7受體的激活,為NaHS臨床使用的適宜時間提供了實驗依據。

通常P2X7受體作為陽離子通道發揮作用,但是經過反復或持續地暴露于高濃度的ATP時,可形成允許900 Da以下分子通透的“膜孔”[1],膜孔的不斷增多導致細胞水腫,空泡形成、最終凋亡壞死。我們以分子量為629 Da的熒光物質YO-PRO-1攝入水平作為膜孔形成的指標,分別以不同濃度的ATP作用于PC12細胞,結果顯示隨ATP濃度的增高,細胞YO-PRO-1攝入水平也明顯增加。隨后我們用3 mmol/L ATP分別處理PC12細胞15 min、30 min、60 min,結果顯示隨ATP作用時間的延長,YO-PRO-1進入細胞也逐漸增多。以ATP作用15 min時PC12細胞內的熒光強度為100. 0%,30 min時熒光強度增至112. 2%,1 h時熒光強度達138. 0%。總之,同一作用時間,提高ATP濃度會加速PC12細胞膜孔的形成;而同一ATP濃度作用,則隨作用時間延長,也會促進膜孔的形成[14]。Auger等[15]在胸腺細胞中也證實了ATP持續地作用會促使膜孔形成,然后大分子的YO-PRO-1即進入細胞,而P2X7受體特異性的阻滯劑o-ATP能明顯拮抗這一現象。在我們的實驗中使用了另一種P2X7受體特異性阻滯劑KN-62,結果發現也能減少ATP引起的細胞對YO-PRO-1的攝取,為P2X7受體在ATP誘導的膜孔形成中的重要作用進一步提供了實驗依據。

細胞膜的通透性隨著ATP濃度改變發生了質的變化,結果細胞膜上形成了大“膜孔”,大量小于900 Da的有機物質自由進出,細胞內穩態失衡而死亡。H2S抗損傷保護細胞的作用已經在多個組織器官得到了證實[16],H2S是否可通過調控膜孔的激活來實現抗損傷而保護細胞呢?本實驗用NaHS ( 200 μmol/L)預孵育30 min可顯著減少ATP誘導的YOPRO-1的攝取,減少PC12細胞對大分子的通透,減輕對PC12細胞的損傷,為NaHS調控膜孔激活觀點取得了初步證據。

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Protective effect of hydrogen sulfide on PC12 cells injured by ATP

MA Jie1,2,SHEN Hui1,3,WANG Lu1,SONG Jing-gui4,HAN Ya-zhou5,LI Dong-liang1
(1Department of Physiology and Neurobiology,2Affiliated Central Hospital,3The Third Affiliated Hospital,4The Second Affiliated Hospital,Xinxiang Medical University,Xinxiang 453003,China;5Department of Neurology,Qinyang People’s Hospital,Qinyang 454550,China.E-mail: xyldl8@126.com)

[ABSTRACT]AIM: To prove the purinergic signaling mechanism of the neuroprotective action of hydrogen sulfide by observing the effects of sodium hydrosulfide ( NaHS),a donor of hydrogen sulfide,on the cell viability,intracellular Ca(2 +)concentration([Ca(2 +)]i) and the change of membrane permeability in the PC12 cells injured by adenosine triphosphate ( ATP).METHODS: PC12 cells in logarithmic growth phase were randomly divided into 4 groups.In control group,the cells were cultured without ATP treatment.In ATP group,the cells were treated with ATP after cultured for 24 h.In NaHS + ATP group,the cells were incubated with NaHS for 30 min before treated with ATP,and NaHS always existed in the reaction system.In KN-62 + ATP group,the cells were pretreated with KN-62 for 30 min,and the other treatments were as the same as those in NaHS + ATP group.The cell viability was assessed by MTT assay.The[Ca(2 +)]iwas detected by Fura-2/AM staining.The membrane permeability was observed by staining with fluorescent dye YO-PRO-1.RESULTS: ATP at concentration of 0.3 mmol/L showed no injury effect on the cells.However,the cell viability was dropped gradually in a dose-dependent manner as the ATP at doses of 1,3,5 and 10 mmol/L.The decline of cell viability by ATP was obviously reversed by 200 μmol/L of NaHS in the PC12 cells ( P<0. 05),but exasperated by 800 μmol/L of NaHS ( P<0. 05).At the same time,ATP evoked the increase in[Ca(2 +)]iin a dose-dependent manner,which was inhibited by NaHS ( P<0. 05).Furthermore,the YO-PRO-1 uptake induced by ATP in a dose-dependent and time-dependent manner was also reduced by NaHS ( P<0. 05).CONCLUSION: Hydrogen sulfide has protective effect on the PC12 cells injured by ATP.The mechanism may be related to the reverse of the increased[Ca(2 +)]iand YO-PRO-1 uptake.

[KEY WORDS]Adenosine triphosphate; Hydrogen sulfide; Purinergic P2X7receptor; PC12 cells

通訊作者△Tel: 0373-3029104; E-mail: xyldl8@126.com

*[基金項目]國家自然科學基金資助項目( No.81371346; No.81271376) ;新鄉醫學院2013年度研究生科研創新支持計劃資助項目( No.YJSCX201318Y)

[收稿日期]2014-10-22[修回日期]2015-03-02

[文章編號]1000-4718( 2015)07-1231-06

[中圖分類號]R363

[文獻標志碼]A

doi:10.3969/j.issn.1000-4718.2015.07.014

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