水稻種子活力的快速測定方法

張薇　耿雷躍　楊雅華等

摘要 以2014年收獲的5個粳稻品種和2013年收獲的5個粳稻品種為試驗材料，設置3個濃度的紅墨水溶液和3個濃度的TTC（氯化三苯基四氮唑）溶液，對10份試驗材料分別浸種4.5、12.0、24.0 h，測定種子的生活力，并與實際發芽率進行比較。研究表明：5.0%紅墨水溶液和0.10% TTC溶液測定的種子生活力與發芽率結果相關系數更高，TTC染色法比紅墨水染色法測定結果更準確。不同浸種時間對這2種快速測定種子活力的方法影響不明顯，綜合考慮以0.10% TTC和5.0%紅墨水浸種12 h為佳，可以準確預測水稻發芽率。

關鍵詞 水稻；種子活力；紅墨水染色法；TTC染色法；濃度

中圖分類號 S330.3+1；S511 文獻標識碼 A 文章編號 1007-5739（2015）08-0029-02

種子發芽率是衡量種子質量和實用價值的重要指標，是種子質量檢驗的主要內容，同時又是種子分級和定價的重要憑據。在水稻種子的生產、收購、貯藏運輸及銷售中需及時了解其發芽率，以確定能否作為播種材料或銷售材料，而用常規方法測定的發芽率，時間較長。目前，關于紅墨水染色法測定花生、麥、玉米、腰果、大豆等種子發芽率報道和TTC染色法作為種子生活力的鑒定標準已被廣泛應用[1-7]。

種子的胚細胞只要具有活力，其原生質膜就具有選擇透性，能選擇性吸收物質。像苯胺類染料（如紅墨水）不能進入活細胞內，胚部不被染色；而喪失活力的種子，它的胚細胞原生質膜沒有選擇吸收能力，染料就能自由進入死細胞內染色。因此，可根據種子胚部染色情況判斷種子是否具有活力。

具有生命活力的種子胚的細胞內有脫氫輔酶（NADH2或NADPH2），而且只要是有生命活力的種子胚，在呼吸作用過程中都有氧化還原反應，而沒有生命活力的種子胚沒有此反應，當TTC無色溶液深入種子胚的活細胞時，接受活種子呼吸過程中脫氫輔酶產生的氫，被脫氫酶還原成不溶于水的紅色穩定不擴散的TTF（三苯基甲酯）。

試驗設置不同濃度的紅墨水溶液和不同濃度的TTC溶液進行不同時間浸種，使水稻種子染色，鑒定種子的生活力，并將結果與常規方法所測發芽率進行比較，估測水稻種子發芽率，探討出測定水稻種子發芽率準確、快速、方便的檢測方法。

1 材料與方法

1.1 試驗材料

供試水稻品種共10個，其中2014年收獲的品種5個：墾育118、墾育88、豐粳1、粳優558和洼粳1；2013年收獲的品種5個：墾育118（以下表示為墾育118-）、墾育88（以下表示為墾育88-）、墾育16（以下表示為墾育16-）、墾育40（以下表示為墾育40-）和墾育60（以下表示為墾育60-）。

試驗用具：恒溫箱、培養皿、濾紙、量筒、燒杯、刀片、鑷子、蒸餾水等。

1.2 試驗方法

1.2.1 常規方法。每個品種設3次重復，每個重復隨機取種子100粒，將種子放在經過消毒的培養皿中，培養皿內已經鋪好濾紙，在培養皿中加水，保持濕潤。然后放在30 ℃左右恒溫培養箱中，5 d后初次計數（發芽勢），末次在10～14 d統計發芽率（胚根露出種皮3 mm視為發芽）。

1.2.2 紅墨水染色法。配制2.5%、5.0%、7.5%的紅墨水溶液；每個品種分別浸種4.5、12.0、24.0 h，3次重復。剝去種皮，用刀片沿腹溝縱切兩半（測定的一半一定要帶胚），取100粒待測定帶胚的種子放入培養皿中，進行編號。分別加入2.5%、5.0%、7.5%紅墨水，以覆蓋種子為度，染色10～15 min，取出洗凈，直到洗液無色為止。凡是胚部完全沒有染色或胚根尖端著色部分小于種胚全長的1/3，都具有生活力。但如果種胚與胚乳著色程度相同或子葉著色、胚根著色部分大于種胚全長的1/3或胚莖著色，即為無活力種子[8]。

1.2.3 TTC染色法（氯化三苯基四氮唑染色法）。配制0.05%、0.10%、0.50% TTC溶液，避光保存，溶液一旦變成紅色不能再用。樣品處理與紅墨水染色法相同。每個培養皿中分別加入0.05%、0.10%、0.50% TTC溶液，然后將其放在30 ℃左右的恒溫箱中1.5 h左右，隨后將TTC溶液倒掉，并用水反復沖洗幾次，觀察染色情況。胚部呈紅色的則具有生活力，呈淺紅色的具有較弱的生活力，無色的便是無活力種子。但發芽試驗發現呈淺紅色的一般也可發芽，所以呈淺紅色的也算具有發芽能力。

1.3 數據處理公式

2 結果與分析

2.1 水稻種子活力與發芽率相關性

根據相關系數公式，測定水稻種子活力與實際發芽率相關系數如表1所示。可以看出，測定生活力與實際發芽率的相關系數在0.61～0.95之間，平均為0.80。除浸種4.5 h 7.5%紅墨水測定發芽率相關系數未達到顯著水平外，其余處理相關系數均達顯著或極顯著水平。由此表明，以5.0%紅墨水和0.10% TTC處理效果最好。浸種時間：紅墨水12～24 h均可，TTC 4.5～24.0 h均可，實際操作中，浸種4.5 h，種子較硬，刀片切割困難，綜合考慮以浸種12 h為宜。

2.2 方差分析

根據相關系數計算結果，進行方差分析，結果如表2所示。可以看出，不同浸種時間下測定的種子活力相關系數沒有顯著差異。不同處理之間測定種子活力相關系數差異達到極顯著水平。其中0.10% TTC相關系數平均值最高，達到0.94。

2.3 TTC法和紅墨水法的比較

由表1可知，紅墨水法處理的相關系數平均為0.76，TTC法處理的相關系數平均值為0.84。經t檢驗，差異達到極顯著水平。TTC法測定種子活力相關系數高于紅墨水法測定種子活力相關系數。0.10% TTC處理較5.0%紅墨水處理判定水稻種子活力更準確。

2.4 不同濃度的紅墨水測定種子生活力比較

由表1可知，2.5%紅墨水相關系數的平均值為0.77， 5.0%紅墨水相關系數的平均值為0.85，7.5%紅墨水相關系數的平均值為0.65。由此可見，5.0%紅墨水所測定的種子活力更接近實際發芽率。

2.5 不同濃度TTC測定種子生活力比較

由表1可知，0.05%TTC相關系數的平均值為0.81， 0.10% TTC相關系數的平均值為0.94，0.50% TTC相關系數的平均值為0.77。由此可見，0.10% TTC所測定的種子活力更接近實際發芽率。

2.6 依據回歸方程測定實際發芽率

將5.0%紅墨水和0.10% TTC所測活力率分別與實際發芽率進行t檢驗，差異不顯著。根據5.0%紅墨水測定種子活力與實際發芽率，得到預測方程為y=1.127 4x-0.081 1，R2=0.774 1（圖1）。根據上述方程，采用紅墨水法測定種子生活力來估測發芽率（表3）。

根據0.10% TTC測定種子活力與實際發芽率，得到預測方程為y=0.910 6x+0.101 9，R2=0.901 9（圖2）。根據上述方程，采用四唑法測定種子生活力來估測發芽率（表3）。

R2越接近1，y隨x的預測值越準確。而0.10% TTC法所測得的R2比5.0%紅墨水法測得的R2高，說明0.10% TTC比5.0%紅墨水法預測更準確。

3 結論與討論

（1）紅墨水染色法和TTC染色法均可以快速測定種子活力，并準確地估測出水稻種子發芽率，是快速測定水稻種子發芽率簡單可行的好方法。

（2）5.0%紅墨水溶液和0.10% TTC溶液所測結果更接近實際發芽率。雖然紅墨水法不需要特殊試劑，操作簡單，但測定結果沒有TTC法準確，而且在區分染色與被染色數目時不如TTC法容易觀察。

（3）除了7.5%紅墨水浸種4.5 h外，不同浸種時間下測定的種子活力沒有顯著差異，但是浸種時間為4.5 h的種子，不能充分地吸收水分，且在切種子時不容易操作，容易將種子切碎。因此，在時間允許的情況下，在以種子浸泡12 h為宜。

（4）水稻實際發芽率與紅墨水法和TTC法測定生活力的回歸方程分別為y=1.127 4x-0.081 1、y=0.910 6x+0.101 9，因此可以將紅墨水法和TTC法測定水稻的生活力值代入回歸方程，預測水稻種子實際發芽率。

（5）紅墨水和TTC測定法方便、快速、操作簡單、成本低廉，但其只用來預測種子的潛在生活力，并不能完全取代實際發芽率試驗，尤其對于法定檢驗機構來說更應以實際檢驗結果為憑據。

4 參考文獻

[1] 李雙鈴，袁美，任艷，等.花生種子發芽率快速測定法[J].花生學報，2005，33（4）：30-32.

[2] 張振宗.大麥種子發芽率的快速測定方法——紅墨水染色法[J].大麥科學，1995（3）：39.

[3] 秦家順.改進的種子生活力快速測定法[J].植物生理學通訊，1998，34（1）：52-54.

[4] 宋志剛，趙曙國，郭成亮，等.玉米發芽率快速檢測方法的研究[J].檢驗檢疫科學，2003，13（4）：39-41.

[5] 劉汝符，鄭秀珍.紅墨水染色法 麥種發芽力鑒定[J].農業科技通訊，1980（8）：1.

[6] 洪彩香.腰果種子發芽率的快速測定方法[J].熱帶農業科學，2004，23（4）：5-9.

[7] 沈增學，張阿三.紅墨水速測桑籽發芽率[J].江蘇蠶業，1977（3）：17.

[8] 盛海平，汪為民.水稻種子生活力四唑測定值與發芽率間的相關性[J].種子，2000（2）：30-31.