朱 瑾 夏春鳳 李艷菊 馬國詔 段瑞生 朱梅佳
(山東大學附屬省立醫院神經內科,山東 濟南 250021)
過度氧化應激與自由基毒性作用在AD的發病中起著重要作用。Aβ產生大量的自由基,可直接氧化酶蛋白氨基酸殘基,使酶失活,影響Na+-K+-ATP酶活性,引起神經細胞內Na+的聚集,K+的流失,細胞的離子失衡,內環境的紊亂。已有研究表明單唾液酸四已節苷脂(GM1)可以通過維持中樞神經細胞膜上的Na+-K+-ATP酶的活性〔1~4〕,起到維持細胞內外離子平衡、減輕神經細胞水腫、防止細胞內Ca2+聚集的作用;還可以對抗興奮性氨基酸的神經毒性作用,減少自由基對神經細胞的損害,起到神經保護作用。而ATP敏感鉀通道(ATP,KATP通道)開放藥物二氮嗪可降低Aβ寡聚體聚集,用二氮嗪預處理能夠抵抗Aβ1~42的神經毒性〔5〕。但二氮嗪的預處理是否影響Aβ對Na+-K+-ATP酶β亞基蛋白的表達,目前尚未報道。因此,本研究旨在探討Aβ1~42及二氮嗪預干預對神經細胞Na+-K+-ATP酶β亞基蛋白表達的影響。
1.1 實驗材料 Wistar種系的大乳鼠(出生24 h內),雌雄不限,由山東大學實驗動物中心提供;Aβ1~42、二氮嗪、多聚賴氨酸均購自美國Sigma公司;胎牛血清、B27 supplement及Neurobasal培養基均購自美國Gibco公司;DMEM高糖培養基購自海克隆公司;Na+-K+-ATP酶β亞基抗體購自美國Santa Cruz公司;DyLight 488,山羊抗鼠 IgG購自Abbkine公司;山羊抗鼠IgG/辣根酶標記購自中杉公司;二甲基亞砜(DMSO)購自上海生博醫學生物工程科技有限公司。
1.2 實驗方法
1.2.1 大鼠皮層海馬神經細胞培養 選用Wsitar大鼠新生24 h的胎鼠,75%酒精消毒,在無菌條件下,用顯微鑷子分離出大腦皮層及海馬置于D-Hank液中,剝除腦膜,然后將腦組織剪成碎塊,0.125%胰酶(37℃)消化10 min,用含10%胎牛血清的DMEM培養液終止消化,吸管吹打均勻后200目不銹鋼篩網過濾,1000 r/min離心10 min,加入含10%胎牛血清的DMEM培養液,吸管吹打成單細胞懸液,加到多聚賴氨酸包被的12孔板,接種密度6×105個/ml,培養皿的接種密度 2×106個/ml,37℃、5%CO2孵育箱中培養,第二天換含2%B27 supplement的Neurobasal的培養液,以后每2 d換液1次,第7天加藥處理。
1.2.2 分組及藥物處理 Aβ1~42人工重組蛋白質0.1 mg,溶于 10 μl DMSO 中,再用 100 μl磷酸鹽緩沖液稀釋(pH7.4),配成濃度為221 μmol/L,即為原液。將原液置于37℃恒溫箱內孵育48 h進行老化處理,4℃備用。二氮嗪(2 mg)溶于200 μl的DMSO中,終濃度為1 mmol/L,4℃備用。實驗分為四組:空白對照組、單獨 Aβ1~42干預組、二氮嗪預處理 1 h 后 Aβ1~42干預組、單純二氮嗪預處理組,每組又分為24 h及72 h兩個亞組。細胞培養第7天,二氮嗪預處理1 h后Aβ1~42干預組加入二氮嗪(50 μmol/L)預處理 1h 后加入 Aβ1~42(2 μmol/L)作用;單獨Aβ1~42干預組加入等量的磷酸鹽緩沖液預處理1 h后,加入等量Aβ1~42;單獨二氮嗪預處理組為加入二氮嗪預處理1 h后加入等量培養液;對照組加等量磷酸鹽緩沖液和培養液。分別在孵育24、72 h后進行免疫熒光及免疫印跡檢測。
1.2.3 免疫熒光檢測各組Na+-K+-ATP酶β亞基的蛋白表達培養加藥后的細胞爬片,用4%的多聚甲醛固定15 min,0.2%Triton孵育30 min,用封閉液室溫封閉60 min,去封閉液后加入稀釋的鼠抗大鼠Na+-K+-ATP酶β亞基抗體一抗(1∶50)4℃過夜,次日磷酸鹽緩沖液(PBST)洗3×5 min,加二抗室溫60 min,PBST 洗3×5 min,二脒基-2-苯基吲哚(DAPI)染核后防熒光淬滅封片劑封片,用PBS代替一抗作為陰性對照,熒光顯微鏡觀察染色結果。
1.2.4 Western印跡檢測各組Na+-K+-ATP酶β亞基蛋白的表達 Aβ1~42作用神經細胞24 h及72 h后提取細胞并用PBS洗滌3次后晾干,加入適量的蛋白裂能液(RIPA)裂解液苯甲基磺酰氟溶液(PMSF)(100∶1)冰浴中裂解細胞,刮勺收集細胞,4℃離心后,一組進行蛋白濃度測定,用二喹啉甲酸(BCA)法蛋白定量,另一組加1/3的loading buffer(4×),100℃水浴10 min,-80℃凍存。次日灌膠,取相應蛋白量上樣,行10%十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠(SDS-PAGE)電泳,然后電轉移至聚偏氟乙烯(PVDF)膜上,5%脫脂牛奶封閉后加入一抗稀釋液,鼠抗大鼠Na+-K+-ATP酶β亞基抗體一抗(1∶100)于4℃孵育過夜,次日用TBST緩沖液洗3×10 min,加入辣根過氧化物酶標記的二抗(辣根過氧化物酶標記的山羊抗鼠IgG抗體)于室溫孵育1 h,再用TBST緩沖液洗3×10 min,加入發光劑(ECL)顯色,以β-actin作為內參,用圖像分析軟件Band Scan進行光密度積分值分析。
1.3 統計學方法 應用SPSS17.0軟件行單因素方差。
2.1 免疫熒光檢測24 h、72 h、神經細胞Na+-K+-ATP酶β亞基熒光強度 單獨Aβ1~42作用神經細胞24 h后,Na+-K+-ATP酶β亞基熒光染色強度較對照組沒有明顯改變;經二氮嗪預處理后Aβ1~42作用24 h后,Na+-K+-ATP酶β亞基的熒光染色強度也沒有明顯改變。單獨Aβ1~42作用神經細胞72 h后,Na+-K+-ATP酶β亞基熒光染色強度較對照組顯著降低;經二氮嗪預處理后Aβ1~42作用72 h后,與單獨Aβ1~42干預組相比較有所增強;單獨二氮嗪干預組Na+-K+-ATP酶β亞基熒光染色強度與對照組和Aβ1~42+二氮嗪組沒有明顯改變。見圖1。

圖1 免疫熒光染色觀察各組細胞培養24 h、72 h后Na+-K+-ATP酶β亞基熒光強度變化(×400)
2.2 蛋白電泳檢測24 h、72 h神經細胞Na+-K+-ATP酶β亞基蛋白表達變化 單獨Aβ1~42作用神經細胞24 h后,Na+-K+-ATP酶β亞基蛋白表達與對照組比較沒有明顯改變;二氮嗪預處理神經細胞1 h協同Aβ1~42作用24 h后及單獨二氮嗪組Na+-K+-ATP酶β亞基的蛋白表達明顯低于對照組及單獨Aβ1~42組(P<0.01)。單獨Aβ1~42作用72 h后,Na+-K+-ATP酶 β 亞基蛋白表達較對照組降低(P<0.05);二氮嗪預處理1 h協同Aβ1~42共同作用72 h后,與單獨Aβ1~42干預組相比,增加了Na+-K+-ATP酶β亞基蛋白表達量(P<0.05);單獨二氮嗪干預組Na+-K+-ATP酶β亞基蛋白表達明顯低于以上各組(P<0.01)。見圖2。

圖2 免疫印跡檢測各組處理24 h、72 h Na+-K+-ATP酶β亞基蛋白表達的變化
老年炎性斑內的大量Aβ沉積在AD發病機制中起到重要作用。而Aβ的神經毒性機制也極其復雜,與過度氧化應激、Ca2+的超載、谷氨酸濃度的增高等有著一定的關系。
本研究提示Aβ對Na+-K+-ATP酶β亞基有影響,其機制可能與啟動細胞的氧化應激反應、神經細胞的凋亡級聯反應有關〔6〕。Aβ本身或通過多種途徑可以產生、誘導活性氧(ROS),使神經細胞質中自由基濃度升高,它的增加使脂質過氧化,形成脂質過氧化物,蛋白被氧化修飾,線粒體功能失調〔7〕,使有氧呼吸鏈電子傳遞形成短路,減少ATP生成;還可經自由基鏈式反應的作用,使細胞膜受到損害〔8〕,繼而影響ATP酶,使其活性下降。谷胱甘肽(GSH)在抗氧化物及自由基的損傷中有重要作用,是大腦的主要抗氧化劑,氧自由基攻擊Na+-K+-ATP酶中富含的賴氨酸、脯氨酸、半胱氨酸等,減少GSH的合成,加重氧化應激〔9〕;還能導致細胞內 Na+、Ca2+增加,K+降低,影響跨膜Na+濃度梯度的重建,進一步影響Na+-Ca2+交換,加重Ca2+濃度的升高。Aβ還會直接導致細胞內Ca2+的升高〔10〕,Ca2+超載也會引起細胞內環境失衡,從而導致離子通道開放,谷氨酸大量釋放到突觸間隙或直接影響谷氨酸轉運體(GLT)-1和谷氨酸-天冬氨酸轉運體(GLAST)的活性功能,從而導致突觸間隙谷氨酸濃度的異常增高及線粒體功能失調〔11〕,刺激N-甲基-D-天冬氨酸(NMDA)受體過度興奮〔12〕,細胞代謝紊亂。
二氮嗪在有神經細胞毒性物質Aβ1~42長時間如72 h存在時,首先Aβ1~42啟動了細胞線粒體介導的過度氧化應激反應和細胞凋亡級聯反應,二氮嗪預開放線粒體ATP敏感鉀離子通道,它的開放對維持線粒體膜電位的極化狀態有極其重要的作用。K+主要自細胞質流向線粒體內,離子的跨膜轉運形成線粒體膜電位的升高〔13〕,細胞膜超極化或復極化,抑制電壓依賴性鈣通道的開放,減少Ca2+通過L型通道內流,以及Na+-Ca2+交換的逆轉〔14〕,有益于減少細胞線粒體內鈣超載,增強細胞在代謝應激條件下的活性。線粒體膜電位升高在一定程度上可以減少細胞內氧自由基的生成,減少了氧化應激反應,產生自身保護作用,保護了神經細胞活性,維持了細胞的ATP正常代謝,促進了細胞膜上Na+-K+-ATP酶的生理功能,增強向細胞內轉運K+的功能,從而增加了Na+-K+-ATP酶β亞基蛋白表達水平;還使線粒體基質體積增加,能夠激活脂肪酸氧化及電子轉移,促進ATP的生成,有利于神經細胞的存活〔15〕。
但是,二氮嗪在有神經細胞毒性物質Aβ1~42較短時間如24 h存在時,一方面,有研究表明,當胞內ATP水平低到某一臨界值時,KATP通道被激活發揮作用〔16〕。另一方面,Aβ1~42作用導致細胞線粒體介導的氧化應激反應,同時還沒有啟動細胞凋亡級聯反應。因此,即使當二氮嗪預開放 KATP通道,鉀離子主要自細胞質流向組織間液,還沒有流向線粒體內。可能24 h細胞的氧化應激反應主要發生在細胞間質,而不是線粒體內。因此,Aβ1~42和二氮嗪共同作用24 h,并沒有明顯地影響到 Na+-K+-ATP酶β亞基的生理作用,可能是二氮嗪與Aβ1~42共同作用對Na+-K+-ATP酶β亞基的影響呈現時間依賴性。
另有研究證實二氮嗪作用神經細胞可導致ROS的產生,在健康細胞中此作用可能不明顯〔17〕,當單獨二氮嗪作用神經細胞時,產生氧化應激反應,影響Na+-K+-ATP酶活性。另外,二氮嗪是KATP通道開放劑,開放了KATP通道后,可促進神經細胞胞膜超極化,線粒體內膜去極化,K+主要由細胞質外流到組織間液,從而在一定程度上抑制了Na+-K+-ATP酶將2個K+泵入細胞內的生理作用。因此,24 h和72 h蛋白電泳顯示單獨應用二氮嗪明顯降低了Na+-K+-ATP酶β亞基的蛋白表達水平。
1 紀 慧,田 華,劉 富,等.葛根素對血管性癡呆小鼠腦組織AchE及Na+-K+-ATP酶活性的影響〔J〕.齊齊哈爾醫學院學報,2013;34(21):3121-3.
2 馬立峰,郭 艾,于浩森,等.鈉鉀ATP酶α亞基表達和細胞生長相關性的研究進展〔J〕.中華損傷與修復,2013;8(6):68-71.
3 Marshall WS,Bryson SE.Transport mechanisms of seawater teleost chloride cells:an inclusive model of a multifunctional cell〔J〕.Comp Biochem Physiol A Mol Integr Physiol,1998;119(1):97-106.
4 Kreutz F,Scherer EB,Ferreira AG,et al.Alterations on Na+-K+-ATPase and acetylcholinesterase activities induced by amyloid-β peptide in rat brain and GM1 ganglioside neuroprotective action〔J〕.Neurochem Res,2013;38(11):2342-50.
5 付慶喜,馬國詔,車峰遠,等.二氮嗪預處理對Aβ1~42作用神經細胞KATP各亞基表達的影響〔J〕.山東大學學報(醫學版),2011;49(9):24-9.
6 Zeng XW,Wang T,Jiang LL,et al.Diazoxide and cyclosporin a protect primary cholinergic neurons against beta-amyloid(1~42)-induced cytotoxicity〔J〕.Neurol Res,2013;359(5):529-36.
7 Nelson TJ,Alkon DL.Oxidation of cholesterol by amyloid precursor pro-tein and β-amyloid peptide〔J〕.J Biol Chem,2005;280(8):7377-87.
8 Singh RB,Hryshko L,Freed D,et al.Activation of proteolytic enzymes and depression of the sarcolemmal Na+-K+-ATPase in ischemia-reperfused heart may be mediated through oxidative stress〔J〕.Can J Physiol Pharmacol,2012;90(2):249-60.
9 Vitvitsky VM,Garg SK,Keep RF,et al.Na+and K+ion imbalances in Alzheimer's disease〔J〕.Biochim Biophys Acta,2012;1822(11):1671-81.
10 Lawton JS,Hsia PW,Damiano RJ Jr.The adenosine-triphosphate-sensitive potassium-channel opener pinacidil is effective in blood cardioplegia〔J〕.Ann Thora Surg,1998;66(3):768-73.
11 Tickler AK,Wade JD,Separovic F.The role of Aβ peptides in Alzheimer's disease〔J〕.Protein Pept Lett,2005;12(6):513-9.
12 Roselli F,Tirard M,Lu J,et al.Soluble β-amyloid1-40 induces NMDA-dependent degradation of postsynaptic density-95 at glutamatergic synapses〔J〕.J Neurosci,2005;25(48):11061-70.
13 Ding F,Shao ZW,Yang S,et al.Role of mitochondrial pathway in compression-induced apoptosis of nucleus pulposus cells〔J〕.Apoptosis,2012;17(6):579-90.
14 Jahangir A,Terzic A.KATP channel therapeutics at the bedside〔J〕.J Mol Cell Cardiol,2005;39(1):99-112.
15 Gross GJ.The role of mitochondrial KATP channels in cardioprotection〔J〕.Basic Res Cardiol,2000;95(4):280-4.
16 Liu J,Yin F,Zhang X,et al.Geniposide,a novel agonist for GLP-1 receptor,prevents PC12 cells from oxidative damage via MAP kinase pathway〔J〕.Neurochem Int,2007;51(6-7):361-9.
17 O'Rourke B.Evidence for mitochondrial K+channels and their role in cardioprotection〔J〕.Circ Res,2004;94(4):420-32.