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基于巢式PCR的重疊延伸PCR優化

2016-09-08 06:12:14馬銀花
安徽農業科學 2016年20期
關鍵詞:融合

彭 雷,趙 艷,馬銀花

(1.貴州師范大學生命科學學院,貴州貴陽 550001;2.武漢大學生命科學學院,湖北武漢 430072)

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基于巢式PCR的重疊延伸PCR優化

彭 雷1,趙 艷2,馬銀花2

(1.貴州師范大學生命科學學院,貴州貴陽 550001;2.武漢大學生命科學學院,湖北武漢 430072)

[目的]結合巢式PCR對重疊延伸PCR進行優化。[方法]以褐飛虱Actin1基因啟動子區與EGFP表達盒區基因融合為例,通過巢式PCR對重疊延伸PCR進行優化。[結果]成功獲得融合片段,經過巢式PCR優化后大大簡化試驗流程,縮短試驗時間,并增強PCR特異性與檢出率。[結論]優化了重疊延伸PCR,可更快速高效融合基因片段。

重疊延伸PCR;巢式PCR;褐飛虱;Actin1啟動子

重疊延伸PCR(splicing by overlap extensionPCR,SOE-PCR)由Horton 等[1-2]于1989 年創立。重疊延伸PCR是一種通過基因間重疊的部分互相搭橋,通過PCR延伸來擴增出融合基因,被廣泛應用于基因定點突變、基因融合等領域[3-4]。巢式PCR(nested PCR)是一種在普通PCR技術上發展而來的技術,其原理為設計兩對引物,其中一對引物在另一對引物擴增產物的片段上,通過二次PCR反應對某個基因進行檢測[5]。巢式PCR可大大降低假陽性,同時可使檢測的下限下降幾個數量級。筆者以褐飛虱Actin1基因啟動子區與增強綠色熒光蛋白(Enhanced Green Fluorescent Protein,EGFP)融合為例,結合巢式PCR對重疊延伸PCR進行優化,優化后重疊延伸PCR可更快速高效融合基因片段。

1 材料與方法

1.1材料供試褐飛虱飼養在溫室,飼養溫度為(22~28)℃,光照時間 14 h/d。

1.2試劑pEGFP-N1載體、Top 10感受態細胞為武漢大學雜交水稻重點實驗室保存。高保真聚合酶KOD Plus購自Toyobo;PMD18-T Simple Vector、DNA solution I為TaKaRa產品。PCR產物膠回收試劑盒購自Omega。其他試劑均為國產或進口分析純。

1.3褐飛虱DNA提取褐飛虱基因組 DNA 提取皆為單頭蟲提取,所用方法為 CTAB 法,參照文獻[6-7]并略做改動。將采集的單頭褐飛虱放入裝有400 μL 2%CTAB的1.5 mL離心管中,用勻漿小棒搗碎勻漿;將勻漿液放入60 ℃水浴鍋水浴60 min裂解;在裂解完畢后的勻漿液中加入200 μL氯仿/異戊醇(24∶1)抽提2次;加入2倍體積無水乙醇-20 ℃沉淀;最后DNA風干后溶于50 μL TE,于-20 ℃保存備用。

1.4PCR擴增以褐飛虱基因組為模板,引物A1-1與A1down擴增褐飛虱Actin1基因啟動子區,A1-1序列:5′-CCTATAAAATGATCATCTATTG-3′;A1down序列:5′-CTTGCTCACCATGTTGATATCCTTTCTTGTTTAGTTAA-3′。A1-1位于Actin1距ATG上游1 031 bp的位置,A1down為下游嵌合引物,位于Actin1 ATG前端側翼起始位置。以pEGFP-N1載體作為模板,引物EGFPoverlapF與EGFP1擴增EGFP ORF框序列。EGFPoverlapF序列:5′-AGGATATCAACATGGTGAGCAAGGGCGAGGAG-3′;EGFP1序列:5′-TTAAGATACATTGATGAGTTTGG-3′。EGFPoverlapF為上游嵌合引物,從載體679位的EGFP ATG開始,下游EGFP1引物為載體的1 643位開始。50 μL PCR體系:10×buffer 5 μL,2 mmol/L dNTPs 5 μL,25 mmol/L MgSO43 μL,10 μmol/L引物 1.5 μL,KOD Plus 1 μL。兩次PCR擴增條件:94 ℃ 5 min;94 ℃ 30 s,55 ℃ 30 s,72 ℃ 1 min,30個循環。

取上2次PCR產物各1 μL作為模板并加入巢式引物,PCR反應體系同上。PCR反應條件:94 ℃ 5 min;94 ℃ 30 s,50 ℃ 30 s,72 ℃ 1 min,30個循環。巢式引物:A1-2 5′-TTGAAAAGTGCATCAATTTATAA-3′位于ATG上游1 007 bp位置;EGFP2 5′-TTTGGACAAACCACAACTAGAA-3′位于載體1 625 bp的位置。

1.5重疊片段測序鑒定先將擴增到的重疊片段純化后加入A尾,加A尾為普通PCR體系:10×PCR buffer 5 μL,2 mmol/L dNTPs 5 μL,10 μL普通Taq酶,1 μg PCR產物,加dH2O至50 μL。反應條件:72 ℃延伸30 min。加尾后的重疊片段和PMD18-T載體按3∶1混合,加入等體積DNA solution I,16 ℃連接5 h。將連接片段轉化Top10感受態細胞,涂布氨芐LB平板,37 ℃培養過夜,挑取白色菌落。以載體通用測序引物M13-47和RV-M 進行菌落PCR擴增,1%瓊脂糖電泳檢測插入片段大小,將陽性克隆的菌液送出測序。

2 結果與分析

利用褐飛虱基因組為模板擴增Actin1啟動子區序列,擴增出1 031 bp長片段(圖1)。以pEGFP-N1載體作為模板擴增EGFP完整表達盒序列,擴增到964 bp片段 (圖1)。各取2個基因PCR產物1 μL作為模板,加入巢式引物擴增得到1 953 bp片段(圖1)。連接PMD18-T載體,T-A克隆測序后證實成功通過重疊延伸PCR將兩基因融合(圖2)。

3 討論

對于2個基因融合的重疊延伸PCR的一般步驟:先設計4條引物A1、A2、B1、B2,其中,A2和B2為嵌合引物。A1和A2擴增A基因,B1和B2擴增B基因,將兩基因片段電泳切膠回收作為模板,加入A1與A2引物擴增,在A、B基因3′端的A2、B2引物嵌合序列搭橋將A、B融合,再用A1與A2引物以融合基因作為模板進行擴增。對于三段基因融合,同樣也擴增出三段基因,其中一段基因與另兩段基因搭橋[8]。重疊延伸PCR需要注意:重疊延伸PCR由于是多重PCR,擴增易產生堿基錯配,因此,重疊延伸PCR一般用高保真酶且控制循環數來最大限度地減低錯配幾率[9]。該研究以褐飛虱Actin1基因啟動子區和EGFP基因融合為例,結合巢式PCR對重疊延伸PCR進行優化。只需多設計一對巢式引物,并在重疊延伸反應中用巢式引物進行擴增,這樣可大大加快重疊延伸PCR過程,并增強特異性。傳統重疊延伸PCR首先擴增基因后需要切膠純化后才能進行下一步重疊,這樣才能保證擴增特異性,減少雜帶。且由于需純化,對前2個基因擴增產物有一定要求才能保證回收效果,而引入巢式PCR后可省去切膠回收過程,且對前2次PCR產物要求也降低。用巢式PCR對重疊延伸PCR優化后使整個過程大大簡化,同時極大提高PCR檢出率,降低PCR擴增條件。

注:M.DNA Marker III;1和3.重疊延伸PCR產物;2.褐飛虱Actin 1基因啟動子區擴增產物;4.EGFP 表達盒擴增產物。Note:M:DNA Marker III;Lanes 1 and 3 were SOE-PCR products;Lane 1 was amplification products of Actin 1 promoter;Lane 4 was amplification products of EGFP expression cassette圖1 目的基因擴增與重疊延伸PCR擴增產物Fig.1 Amplification products of SOE-PCR and target gene amplification

注:方框為嵌合引物EGFPoverlapF序列,灰色背景序列為EGFP序列,灰色背景前序列為Actin 1啟動子區序列。Note:Box was the EGFPoverlapF sequence of chimeric primer;sequence of gray background was EGFP sequence;antecedent? sequence of gray background was the sequence of Actin 1 promoter.圖2 重疊延伸PCR融合基因測序部分結果Fig.2 Sequencing results of fusion gene by SOE-PCR

[1] HO S N,HUNT H D,HORTON R M,et al.Site-directed mutagenesis by overlap extension using the polymerase chain reaction[J].Gene,1989,77(1):51-59.

[2] HORTON R M,HUNT H D,HO S N,et al.Engineering hybrid genes without the use of restriction enzymes:Gene splicing by overlap extension[J].Gene,1989,77(1):61-68.

[3] 魏薇,李凡,陳海如.利用重疊延伸 PCR 技術擴增長片段 DNA[J].云南大學學報(自然科學版),2008(S1):86-88.

[4] 徐芳,姚泉洪,熊愛生,等.重疊延伸 PCR 技術及其在基因工程上的應用[J].分子植物育種,2006,4(5):747-750.

[5] 黃昆侖,羅云波.用巢式和半巢式 PCR 檢測轉基因大豆 Roundup Ready 及其深加工食品[J].農業生物技術學報,2003,11(5):461-466.

[6] MAGUIRE T L,COLLINS G G,SEDGLEY M.A modified CTAB DNA extraction procedure for plants belonging to the family proteaceae[J].Plant molecular biology reporter,1994,12(2):106-109.

[7] TANG M,LV L,JING S,et al.Bacterial symbionts of the brown planthopper,Nilaparvatalugens(Homoptera:Delphacidae)[J].Applied and environmental microbiology,2010,76(6):1740-1745.

[8] THORNTON J A.Splicing by overlap extension PCR to obtain hybrid DNA products[J].Methods Mol Biol,2015,1373:43-49.

[9] 楊宇,吳元華,鄭雅楠.利用重疊延伸 PCR 技術進行 DNA 的人工合成[J].安徽農業科學,2006,34(9):1810-1811.

Optimization of Splicing by Overlap Extension PCR Using Nested PCR

PENG Lei1, ZHAO Yan2, MAYin-hua2

( 1. College of Life Sciences, Guizhou Normal University, Guiyang, Guizhou 550001; 2. College of Life Sciences, Wuhan University, Wuhan, Hubei 430072)

[Objective] To optimize the Splicing by overlap extension PCR using nested PCR. [Method] Nested PCR was used to optimize SOE-PCR (splicing by overlap extension PCR) for combining brown planthopper (BPH)Actin1 promoter and EGFP expression cassette. [Result] Nested PCR could greatly optimize SOE-PCR. After optimization of nested PCR, the test process was simplified, and the detection time was shortened. The PCR specificity and detection rate were enhanced. [Conclusion] The optimized SOE-PCR can rapidly and effectively fuse the gene segment.

SOE-PCR; Nested PCR; Brown planthopper;Actin1 promoter

國家自然科學基金項目“水稻抗褐飛虱基因多樣性持續控制褐飛虱的分子機理”(31230060)。

彭雷(1980- ),男,四川南充人,實驗師,博士,從事水稻與褐飛虱互作研究。

2016-07-06

Q 78

A

0517-6611(2016)20-126-02

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