賈永鵬,李霞,周國林,林處發,汪愛華
(1.武漢市農科院蔬菜科學研究所,340065;2.華中農業大學;3.武漢市農科院)
小白菜自交不親和性相關基因的分子標記開發
賈永鵬1,2,李霞1,周國林1,林處發3,汪愛華1
(1.武漢市農科院蔬菜科學研究所,340065;2.華中農業大學;3.武漢市農科院)
以自交親和系WS-199和自交不親和系WS-85為親本雜交獲得的F2分離群體為供試材料,采用BSA法結合SNP芯片技術,篩選出與自交不親和性相關的SNP標記,并將SNP差異位點序列信息與白菜基因組序列進行比對分析,并進一步開發SSR標記,共獲得了與自交不親和性相關的SSR分子標記BrA1-2、BrA1-3和BrA1-14,為分子標記輔助自交不親和性雜交種生產提供技術支持。
小白菜;自交不親和性;SNP;分子標記
小白菜(Brassica campestrisssp.chinensis Makino)又稱不結球白菜,營養價值豐富,生長期短,在適宜環境條件下可進行周年種植,為我國長江中下游及南方地區種植的重要蔬菜種類之一。小白菜的自交不親和現象十分普遍,利用自交不親和系生產F1代雜交種成為小白菜雜種育種的重要方法之一[1]。但是,由于自交不親和的表型容易受到環境條件和植株生理狀況的影響,導致植株的親和性難以判斷,致使在配置雜交組合和種子生產時,費時費力,準確性差[2]。利用分子標記輔助選擇,可以大大提高育種的效率[3]。
小白菜自交不親和性主要由S位點復等位基因控制[4]。當雄蕊花粉粒攜帶的S等位基因與雌蕊的基因相同時,花粉管生長受到抑制,表現出自交不親和;當花粉粒攜帶的S等位基因與雌蕊的基因不相同時,花粉管正常生長,表現為自交親和。在育種實踐中,能夠快速鑒定自交不親和性的S單元型至關重要[5]。隨著分子生物學的發展,利用分子標記鑒定S單元型已成為目前主要的方法之一。前人做了很多研究,Nasrallah等[6]利用SLG6的cDNA克隆作為探針,對多個不同S單元型的全基因組DNA進行RFLP分析,獲得了多個與S單元型連鎖的RFLPs標記,初步建立了一種利用DNA分子標記技術快速鑒定S單元型的方法,可以在苗期鑒定材料的S單元型,比田間更加可靠;Nishio等[7]利用PCR-RFLP對10個白菜和10個甘藍材料的SLG基因多態性進行了分析,發現這種方法可以在十字花科的蔬菜中鑒定S單元型以及F1雜種的純度。寇小培[8]以甘藍型油菜為材料,利用與自交不親和基因連鎖的分子標記輔助選育油菜自交不親和系,最終得到了改良的甘藍型油菜自交不親和系。因此,分子標記在自交不親和性中的利用越來越重要,而開發新的自交不親和性標記成為當前的重點。
本研究以自交親和系WS-199和自交不親和系WS-85為親本構建的F2分離群體為材料,采用BSA法和油菜60K SNP芯片雜交技術,對小白菜自交不親和性相關基因的分子標記進行設計與開發,為后續利用自交不親和性進行分子標記輔助育種提供可靠的理論依據與技術支持。
1.1試驗材料
供試材料為自交親和系WS-199和自交不親和系WS-85(由武漢市蔬菜科學研究所栽培與采后室提供)為親本構建的F2分離群體。于2014年9月底,將F2群體種子播于大田,2015年1月將幼苗移栽到大棚中 (武漢市黃陂區武湖基地),2015年3月進行套袋自交。所有材料依照田間常規方法進行種植和管理。
1.2試驗方法
①F2群體親和性調查、DNA的提取及BSA混池構建a.F2群體親和性調查。在2015年3月對F2群體中的開花植株進行套袋自交,調查植株的角果生長和膨大情況,以及植株的結實情況,最終判斷植株的親和性。
b.DNA提取。選取苗期的小白菜鮮嫩葉片,采用改良CTAB法提取DNA。用UV-1800 PC紫外分光光度計(上海譜達儀器有限公司)測定DNA濃度,用0.8%瓊脂糖凝膠電泳檢測DNA質量,取部分原液稀釋到50 ng/mL作模板,其他放于-20℃保存備用。
c.BSA混池構建。從群體中選取性狀明顯的親和系植株和不親和系植株各17株,采用DNAsecure Plant Kit新型植物基因組DNA提取試劑盒(天根生化科技(北京)有限公司,產品編號DP320)提取DNA,且DNA樣品保存在-80℃。利用組群分離分析法(BSA)構建不親和池與親和池,對DNA進行等量混合,構成4個不親和基因池與4個親和基因池,用于芯片分析及后續引物篩選。
②SNP芯片設計采用油菜60K SNP芯片進行雜交。a.DNA定量、擴增。放在0.1 mol/L NaOH中變性,加入MA2和MSM,放在37℃雜交爐中擴增20~24 h。
b.DNA片段化。加入FMS,在37℃干浴鍋1 h。
c.DNA富集。加入155 μL異丙醇,在4℃冰箱中放置30 min,倒出液體,室溫下干燥1 h。
d.DNA片段回收。加入RA1,用銀箔紙封口,在48℃雜交鍋中培養1 h。
e.DNA變性。在干浴鍋于95℃下變性20 min。
f.DNA與芯片雜交。準備雜交盒,在芯片的每個樣品孔點樣12 μL,放在48℃雜交爐中16~24 h,轉速調至5檔。
g.洗芯片與染色。
h.芯片掃描。采用BeadArray Reader激光共聚焦掃描系統,并進行數據分析。
③SSR引物設計及篩選通過芯片數據分析處理,將獲得的差異序列和白菜基因組進行Blast對比分析,選取同源序列相似度高的基因序列區段,進行下一步SSR引物的開發,并提交到http:// wsmartins.net/websat/數據庫。SSR引物由上海生工工程公司(武漢)合成。
PCR反應體系:DNA模板1 μL,引物1 μL,10×PCR Buffer 1 μL,dNTPs 0.2 μL,Mg2+0.8 μL,Taq聚合酶0.2 μL,用ddH2O補充至 10 μL。PCR擴增反應程序:94℃3 min;94℃30 s,55~56℃30 s,72℃30 s,35個循環;72℃10 min;25℃30 min。將擴增產物采用6%聚丙烯酰胺凝膠(PAGE)電泳檢測,在電壓200 V下70~80 min后,進行銀染和顯影,用清水沖洗干凈。在室溫下自然晾干,統計擴增條帶,并拍照保存。
2.1SNP芯片分析
對不同混池間芯片分析后,將SNP數據經Genome Studio軟件進行基因分型處理,通過不親和與親和數據之間的比較分析,共獲得100個差異位點,然后從芯片對應數據庫中下載這100個差異位點序列,將下載的100個差異位點序列和白菜基因組進行對比,選取同源序列相似度大于98%的位點數據。分析表明,這些位點主要集中分布在白菜基因組的第1連鎖群(2 517 659~24 006 839)和第10連鎖群(8 961 370~16 442 481)。
2.2SSR分子標記開發
針對第1和第10連鎖群上包含的差異堿基序列區段,在線設計SSR引物32對,部分引物序列如表1。將32對引物在親和池與不親和池中進行DNA擴增,共有 3對引物 BrA1-2、BrA1-3和BrA1-14在混合池中表現出多態性(圖1)。

表1 部分引物序列

圖1 SSR引物在混合池中的篩選情況
2.3群體單株驗證
利用引物BrA1-2對F2群體中的親和單株進行驗證。結果表明,90株親和單株中僅有2個交換單株,遺傳距離約2.2 cM(圖2)。

圖2 引物BrA1-2在F2親和性單株中的驗證
Bateman[4]首次提出了關于自交不親和性受單位點復等位基因控制的遺傳模式,為自交不親和性研究奠定了重要基礎。在S復等位基因位點上包含有S位點特異性糖蛋白SLG[9]、S位點受體激酶SRK[10]、S位點富含半胱氨酸蛋白SCR[11]和SP11[12]。當花粉中的SCR或SP11與柱頭中的SRK、SLG相互識別,引發了自交不親和反應。葛婷婷[13]利用不結球白菜(矮腳黃)002和210為親本,構建了F2分離群體,開發到了一個與自交不親和基因連鎖的分子標記BrSS15。Katsunori等[14]利用Kal-22(Brasscia rapa subsp.rapa)和Hal-400(B.rapa subsp.pekinensis)構建了F2群體,通過對群體進行2 a的自交不親和性調查和統計,結合884對SSR標記和55對SNP與indel標記進行了自交不親和性的QTL分析,定位到了5個高度不親和性QTL位點BrHLSI-1、BrHLSI-2、BrHLSI-3、BrHLSI-4和BrHLSI-5,它們分別分布在白菜第7、3、2、10、6連鎖群上,而BrPUB8在第1連鎖群。BrPUB8是PUB8的同源基因,而PUB8可能是調控假性自花授粉植物自交不親和性的關鍵基因[15,16]。
隨著全基因組序列鑒定技術的快速發展,SNP標記作為最新分子標記類型,具有密度高、分布范圍廣、分型簡單等優點,在分子遺傳研究中逐漸興起,已成功應用在油菜QTL定位和全基因組關聯分析的研究當中[17,18]。而在白菜研究上,目前,利用油菜60K SNP芯片技術開發標記非常少見。由于進行傳統的雜交測試(親和指數法)時,植株結實會受到外界環境的影響,因此親和性難以判斷,耗費較長的時間和較多的人力。本研究將BSA分析法和SNP芯片技術結合起來,對小白菜中普遍存在的自交不親和現象進行快速標記開發,并能較快應用于自交不親和基因類型的鑒定,加快育種的進程,為白菜雜交組合的配置和實現傳統育種與分子育種的結合提供參考。
[1]楊林棟.分子標記技術及其在大白菜遺傳育種中的應用[J].安徽農業大學學報,2015,3(4):30-33.
[2]田磊.甘藍自交不親和S單元型的鑒定[D].北京:中國農業科學院,2012.
[3]朱墨.孢子體自交不親和的雌雄S決定子及顯隱性關系[J].首都師范大學學報:自然科學版,2005,26(2):63-68.
[4]Bateman A J.Self-incompatibility systems in angiosperums: Ⅲ.Cruciferae[J].Heredity,1955,9:52-68.
[5]劉基生.十字花科自交不親和位點的進化[D].北京:中國農業科學院,2014.
[6]Nasrallah J B,Nasrallah M E.The molecular genetics of self-incompatibility inBrassica[J].Ann rev Genet,1989,(23):121-139.
[7]Nishio T,Sakamoto K,Yamaguchi J.PCR-RFLP of S locus for identification of breeding lines in cruciferous vegetables [J].Plant Cell Rep,1994,13:546-550.
[8]寇小培.分子標記輔助選育甘藍型油菜自交不親和系[D].武漢:華中農業大學,2012.
[9]Nasrallah J B,Kao T H,Goldberg M,et al.A cDNA clone encoding an S-locus-specific glycoprotein fromBrassica oleracea[J].Nature,1985,318:263-267.
[10]Stein J C,Howlett B,Boyes D C,et al.Molecular cloning of a putative receptor protein kinase gene encoded at the self-incompatibility locus ofBrassica oleracea[J].Proc Natl Acad Sci USA,1991,88:8 816-8 820.
[11]Schopfer C R,Nasrallah M E,Nasrallah J B.The male determinant of self-incompatibility inBrassica[J].Science, 1999,286:1 697-1 700.
[12]Suzuki G,Kai N,Hirose T,et al.Genomic organization of theSlocus:Identification and characterization of genes in SLG/SRK region ofS9haplotype ofBrassica campestris (syn.rapa)[J].Genetics,1999,153:391-400.
[13]葛婷婷.不結球白菜‘矮腳黃’自交不親和性的SSR分子標記[D].南京:南京農業大學,2013.
[14]Katsunori H,Atsushi H,Satoru M.Mapping of quantitative trait loci for high level of self-compatibility inBrassica rapa L[J].Genome,2010,53:257-265.
[15]Liu P,Sherman B S,Nasrallah M E,et al.A cryptic modifiercausingtransientself-incompatibilityin Arabidopsis thaliana[J].Current Biology,2007,17(8): 734-740.
[16]張劍鋒.甘藍型油菜自交不親和保持機理及AtPUB2在自交不親和反應中功能研究[D].武漢:華中農業大學,2013.
[17]劉列釗,李加納.利用甘麟型油菜高密度SNP遺傳圖譜定位油酸、亞麻酸及芥酸含量QTL位點[J].中國農業科學,2014,47(1):24-32.
[18]桑世飛,王會,梅德圣,等.利用全基因組SNP芯片分析油菜遺傳距離與雜種優勢的關系[J].中國農業科學,2015,48 (12):2 469-2 478.
Molecular Marker Development of Self-incompatibility Related Genes in Chinese Cabbage
JIA Yongpeng1,2,LI Xia1,ZHOU Guolin1,LIN Chufa3,WANG Aihua1
(1.Vegetable Research Institute,Wuhan Academy of Agricultural Science and Technology,340065;2.Huazhong Agricultural University;3.Wuhan Academy of Agricultural Science and Technology)
Taking an F2segregating population obtained by hybridization between self-compatible line WS-199 and self-incompatible line WS-85 as materials,combining with the BSA method and SNP biochip technology,we screened SNP markers which related to self-incompatibility,and compared the sequence information of SNP different loci with cabbage genome sequences.Furtherly,we developed SSR markers,and got SSR molecular markers BrA1-2,BrA1-3 and BrA1-14 which were related to self-incompatibility,providing technical support for the production of self-incompatibility hybrid assisted by molecular markers.
Chinese cabbage;Self incompatibility;SNP;Molecular markers
S634.3
A
1001-3547(2016)08-0038-04
10.3865/j.issn.1001-3547.2016.08.017
“十二五”國家科技支撐計劃項目資助(2012BAD02B01-17);武漢市農科院2013年英才計劃項目
賈永鵬(1988-),男,碩士,從事蔬菜遺傳育種研究,電話:13476867223,E-mail:372176882@qq.com
周國林(1971-),男,通信作者,碩士,推廣研究員,從事蔬菜育種、蔬菜安全生產技術研究和推廣工作,電話:13971269033,E-maill:glzhou@126.com
汪愛華(1979-),女,通信作者,博士,現從事蔬菜育種研究,E-mail:wangaihualt@163.com
2016-02-24