抵抗素對HepG2肝細胞胰島素信號通路IRS-2/Akt的影響

羅招凡　李芳萍　程　樺

(中山大學孫逸仙紀念醫院檢驗科，廣東　廣州　510120)

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抵抗素對HepG2肝細胞胰島素信號通路IRS-2/Akt的影響

羅招凡李芳萍1程樺1

(中山大學孫逸仙紀念醫院檢驗科，廣東廣州510120)

目的探討抵抗素對HepG2肝細胞中胰島素信號通路IRS-2/Akt的影響及其與腺苷酸活化蛋白激酶(AMPK)通路之間的關系。方法50 ng/ml重組人抵抗素處理肝HepG2細胞株，siRNA技術抑制HepG2細胞AMPK α2亞基表達，采用實時RT-PCR技術檢測胰島素信號通路相關細胞信號抑制因子3(SOCS-3)和胰島素受體底物2(IRS-2)mRNA的水平，采用蛋白印跡技術檢測蛋白激酶B(Akt)的蛋白含量及磷酸化水平。結果在基礎及胰島素刺激狀態下，抵抗素上調SOCS-3 mRNA的表達(P<0.05)，下調IRS-2 mRNA的表達(P<0.05)，僅在胰島素刺激狀態下降低Akt總蛋白含量及其磷酸化水平(P<0.05)，且未轉染與轉染AMPKα2 siRNA組比較，Akt總蛋白含量及其磷酸化水平差異無統計學意義(P>0.05)。結論抵抗素對HepG2細胞胰島素信號通路IRS-2/Akt起抑制作用，這可能是其導致肝臟胰島素抵抗的機制之一；抵抗素對IRS-2/Akt信號通路與AMPK通路的影響可以相互獨立。

抵抗素；胰島素抵抗；蛋白激酶B；HepG2細胞

抵抗素(Resistin)是一種富含半胱氨酸的蛋白質，屬于抵抗素樣分子(RELMs)，又稱FIZZs(found in inflammatory zone)家族成員，在嚙齒類動物中它是一種脂肪分泌因子〔1〕，曾被認為是聯系肥胖和糖尿病之間的紐帶〔2〕。體試驗表明，輸注抵抗素后能極顯著增加肝糖輸出及損傷肝臟胰島素作用，其主要機制是通過抑制腺苷酸活化蛋白激酶(AMPK)磷酸化上調肝糖異生關鍵酶G6Pase、PEPCK的表達。然而，抵抗素在人類的病理作用還存在爭議〔3，4〕，因為人抵抗素同小鼠的抵抗素在氨基酸水平上只有59%的同源性，而且其來源也不盡相同，人抵抗素主要來源于單核細胞。肝臟胰島素抵抗(IR)被認為是導致2型糖尿病(T2DM)的重要原因〔5〕。其分子機制是胰島素信號通路異常改變〔6〕。胰島素信號通路包括磷脂酰肌醇3-激酶(PI3K)和絲裂原活化蛋白激酶(MAPK)信號通路，其中PI3K/蛋白激酶B(Akt)通路是主要的胰島素信號通路，調節著體內的糖脂代謝。基于此，本課題擬研究人抵抗素是否對HepG2肝細胞PI3K/Akt通路產生影響，并探討其與AMPK通路之間的關系。

1　材料與方法

1.1材料及主要試劑抵抗素 (美國Phoenix.Inc)；胰島素(Humulin，40 IU/ml)(Lily公司)；AMPK α2 siRNA及CY3熒光標記對照siRNA、siPORTNeoFX轉染試劑盒(美國Ambion公司)；DMEM培養基及胎牛血清 (美國Gibco公司)；兔抗磷酸化AMPK α(Thr172)抗體、Akt及磷酸化Akt(Ser473)(美國Cell Signaling公司)；SYBR GreenⅠPCR 通用混合試劑(美國Applied Biosystems公司)。

1.2方法

1.2.1細胞培養及分組干預人肝HepG2細胞株來源于中山大學實驗動物中心。HepG2細胞用含10%胎牛血清的DMEM 培養液培養，消化傳代，取對數生長期細胞進行實驗。按1×105個/孔的密度接種細胞于培養板，經AMPK α2 siRNA(res50+ siRNA group)、陰性對照siRNA(res50+ con siRNA group)轉染24 h的HepG2細胞用含50 ng/ml抵抗素的低糖DMEM培養液處理24 h，同時未轉染的HepG2細胞在相同條件下用無(res0 group)或50 ng/ml抵抗素(res50 group)處理24 h，之后用去血清的無糖DMEM培養液(仍含對應濃度的抵抗素)饑餓3～5 h，最后用無或含100 nmol/L胰島素的低糖DMEM培養液處理2 h后收集細胞。

1.2.2siRNA序列合成及轉染根據GenBank AMPK α2基因已知序列(Accession No.NM-006252)，已確證的AMPK α2 siRNA(Silencer?Validated siRNA)由Ambion公司提供，AMPK α2 siRNA正義鏈：5′-GGUUUCUUAAAAACAGCUGtt-3′，并采用CY3熒光標記的陰性對照siRNA(siRNA control) 監測轉染效率，用轉染試劑處理組作為空轉對照組(mock組)。

1.2.3RNA的提取及實時定量RT-PCR檢測mRNA水平用TRIZOL分離提取細胞總RNA，逆轉錄成cDNA，用SYBR GreenⅠ實時定量PCR進行擴增，擴增條件為95℃變性10 min，然后95℃15 s，60℃1 min，共40個循環。在PCR反應結束后采用溶解曲線方法驗證反應的特異性。實驗結果以管家基因18 sRNA的循環閾值(Ct)作標準化，稱為ΔCt，最終各基因的表達結果為2-ΔΔCT，其中-ΔΔCT 等于處理組ΔCt減去對照組ΔCT，對照組2-ΔΔCT值為1。各基因引物用Primer Express2.0軟件設計，其特異性及有效性在實驗前均被證實。各正義及反義引物序列見表1。

表1　實時定量PCR引物

1.2.4Western印跡檢測總Akt、AMPK及Akt磷酸化蛋白表達收集6孔板細胞，加200 μl的裂解液，按Western印跡操作流程進行檢測，用Image-Quant分析軟件測定結果中條帶灰度值，以目的蛋白與β-actin 條帶灰度值的比值表示各組蛋白的相對表達量。

2　結　果

2.1AMPK α2 siRNA對AMPK α2 mRNA和蛋白表達的影響轉染24 h后，AMPK α2 mRNA表達抑制率為(52.3±0.8)%，轉染72 h后AMPK α2蛋白表達抑制率為(48.1±2.3)%。

2.2抵抗素在基礎及胰島素刺激狀態下對HepG2細胞胰島素信號通路相關基因mRNA表達的影響與res0組比較，在基礎及胰島素刺激狀態下，抵抗素增加SOSC-3 mRNA的表達(P<0.05)，降低IRS-2 mRNA的表達(P<0.05)；單獨抵抗素處理組(res50 group)與轉染AMPK α2 siRNA的抵抗素處理組(res50+siRNA group)比較，IRS-2和SOSC-3 mRNA的表達差異無統計學意義，見表2。

表2　抵抗素在基礎及胰島素刺激狀態下對HepG2細胞胰島素信號通路相關基因mRNA相對表達量的影響±s)

與res0組比較：1)P<0.05；與基礎狀態下對應組比較：2)P<0.05

2.3抵抗素在基礎及胰島素刺激狀態下對HepG2細胞AMPK及Akt蛋白及磷酸化水平的影響與res0組比較，在基礎及胰島素刺激狀態下抵抗素降低AMPK的磷酸化水平(P<0.05)，僅在胰島素刺激狀態下降低Akt總的蛋白含量及其磷酸化水平(P<0.05);單獨抵抗素處理組(res50 group)與轉染AMPK α2 siRNA的抵抗素處理組(res50+siRNA group)比較，Akt總蛋白含量及其磷酸化水平無統計學差異，而AMPK的磷酸化水平有統計學差異(P<0.05)，見圖1，表3。

表3　在基礎及胰島素刺激狀態下抵抗素對HepG2細胞AMPKα(Thr172)、Akt蛋白及Akt (Ser473)磷酸化水平的影響

與res0組比較：1)P<0.05，與res50組比較：2)P<0.05，與res50+control siRNA組比較：3)P<0.05；與基礎狀態下對應組比較：4)P<0.05

圖1　抵抗素在基礎及胰島素刺激狀態下對HepG2細胞AMPK磷酸化及Akt蛋白總量及磷酸化水平的影響

3　討　論

絲/蘇氨酸激酶(Akt)主要負責由PI3K始動的生物信息的傳導，Akt處于這一通路的中心環節，它在細胞代謝、細胞周期調控、細胞生長凋亡等多種生物學過程中發揮著重要作用，與IR的發生發展密切相關。以往對抵抗素的研究發現，抵抗素可能通過抑制PI3K/Akt通路導致IR〔7〕，另也有報道胰島素信號級聯途徑的Akt并不受抵抗素的影響〔8〕，因此各家報道并不一致。本研究主要觀察抵抗素對HepG2細胞胰島素IRS-2/PI3K/Akt信號通路的影響，結果發現人抵抗素在胰島素刺激條件下可下調IRS-2 mRNA的表達、減低Akt的蛋白量及其磷酸化水平，抵抗素這一抑制作用可能與其導致肝臟IR的機制有關。

SOCS家族是近年發現含有肉瘤同源區段2(SH2)結構域的蛋白質家族，現共發現8個SOCS家族成員(CIS，SOCS-1～SOCS-7)，廣泛分布于胸腺、腦、心臟、骨骼肌、肝臟等組織器官，其中SOCS-3主要參與負調控細胞因子及一些激素誘導的細胞信號轉導。2005年Steppan等〔9〕首先發現抵抗素可誘導3T3-L1脂肪細胞SOCS-3表達增加，而后者可與胰島素受體競爭性結合。隨后Zhou等〔7〕也報道人抵抗素可刺激L-02肝細胞SOCS-3 mRNA的表達而阻止胰島素信號通路，Qi等〔10〕則報道抵抗素基因敲除鼠SOCS-3水平降低，導致肌肉Akt磷酸化水平上升，使胰島素敏感性增強。

IRS-2是胰島素受體信號耦聯的重要轉導蛋白，胰島素與受體結合后，激活IRS分子，募集含SH2結構域的多種分子并與它們結合，通過這些分子向多個方向進一步傳遞胰島素信號。細胞IRS表達水平的高低是胰島素信號轉導正常與否的基礎，當IRS的濃度下降到一定程度，胰島素信號的胞內轉導就會受到阻滯。資料表明，肝細胞中IRS-2在維持糖代謝平衡及IRS-2缺陷對T2DM發生發展比IRS-1更重要〔11〕。

本實驗表明，HepG2細胞與人抵抗素慢性孵育24 h后，在基礎及胰島素刺激狀態下，人抵抗素作為細胞因子可上調HepG2細胞SOSC-3 mRNA的表達、下調IRS-2 mRNA的表達，僅在胰島素刺激狀態下減低Akt總蛋白含量及其Ser473磷酸化水平。推測抵抗素使表達上調的SOCS-3的SH2結構域競爭性結合胰島素受體，抑制了IRS-2的表達，而IRS-2的下調可使胰島素信號傳導減弱，導致了胰島素生物效應降低，從而誘發肝細胞IR。以上結果與Zhou等〔12〕報道結果相似。

目前對AMPK通路與Akt通路之間的關系尚存在爭議。在3T3-L1脂肪細胞中，AMPK可以增加葡萄糖轉運以及GLUT-4的轉位，該作用與胰島素信號通路不盡相同，研究提示AMPK可能是通過遠離Akt作用位點的胰島素信號通路，或者是一條非胰島素激活的信號通路〔13〕。但另有研究表明，在C2C12肌細胞中AMPK可使胰島素信號級聯途徑的上游組分IRS-1磷酸化，表明AMPK是胰島素信號通路上游潛在的調節子〔14〕。出現以上不同的結果可能是由于研究細胞特性不同、所處環境不同、采用的實驗條件及方法不同等。

在本研究中，我們發現在胰島素刺激狀態下，HepG2細胞單獨抵抗素組與AMPK α2 siRNA轉染后的抵抗素處理組SOSC-3和IRS-2 mRNA的表達、Akt的蛋白量及其磷酸化水平并無顯著差異，說明人抵抗素可以影響HepG2細胞胰島素信號通路，但這一影響并不依賴于AMPK。以上結果提示，人抵抗素對HepG2細胞AMPK通路與胰島素PI3K/Akt通路的影響可以相互獨立，但兩條通路之間的關系極為復雜，有待進一步探討。

1Holcomb IN，Kabakoff RC，Chan B，etal.FIZZ1，anovel cysteine rich secreted protein associated with pulmonary inflammation，defines a new gene family〔J〕.Embo J，2000；19(15)：4046-55.

2Steppan CM，Bailey ST，Bhat S，etal.The hormone resistin links obesity to diabetes〔J〕.Nature，2001；409(6818)：307-12.

3Lee JH，Chan JL，Yiannakouris N，etal.Circulating resistin levels are not associated with obesity or insulin resistance in humans and are not regulated by fasting or leptin administration：cross-sectional and interventional studies in normal，insulin-resistant，and diabetic subjects〔J〕.J Clin Endocrinol Metab，2003；88(10)：4848-56.

4Cantley J.The control of insulin secretion by adipokines：current evidence for adipocyte-beta cell endocrine signalling in metabolic homeostasis〔J〕.Mamm Genome,2014；25(9-10)：442-54.

5Kim SP，EllmererM，van Citters GW，etal.Primacy of hepatic insulin resistance in the development of the metabolic syndrome induced by and isocaloric moderate-fat diet in the dog〔J〕.Diabetes，2003；52(10)：2453-60.

6Pessin JE，Saltiel AR.Signaling pathways insulin action：molecular targets of insulin resistance〔J〕.J Clin Invest，2000；106(1)：165-69.

7Zhou L，Li L，Xia T，etal.Resistin overexpression impaired glucose tolerance in hepatocytes〔J〕.Eur Cytokine Netw，2006；17(2)：189-95.

8Moon B，Kwan JJ，Duddy N，etal.Resistin inhibits glucose uptake in L6 cells independently of changes in insulin signaling and GLUT4 translocation〔J〕.Am J Physiol Endocrinol Metab，2003；285(1)：E106-15.

9Steppan CM，Wang J，Whiteman EL，etal.Activation of SOCS-3 by resistin〔J〕.Mol Cell Biol，2005；25(4)：1569-75.

10Qi Y，Nie ZY，Lee YS，etal.Loss of resistin improves glucose homeostasis in leptin deficiency〔J〕.Diatetes，2006；55(11)：3083-90.

11Rother KI，Imai Y，Caruso M，etal.Evidence that IRS-2 phosphorylation is required for insulin action in hepatocytes〔J〕.J Biol Chem，1998；273(28)：17491-97.

12Zhou L，Sell H，Eckardt K，etal.Conditioned medium obtained from in vitro differentiated adipocytes and resistin induce insulin resistance in human hepatocytes〔J〕.FEBS Lett,2007；581(22)：4303-8.

13Yamaguchi S，Katahira H，Ozawa S，etal.Activators of AMP-activated protein kinase enhance GLUT4 translocation and its glucose transport activity in 3T3L1 adipocytes〔J〕.Am J Physiol Endocrinol Metab，2005；289(4)：E643-9.

14Jakobsen SN，Hardie DG，Morrice N，etal.5'-AMP-activated protein kinase phosphorylatesIRS-1 on Ser-789 in mouse C2C12 myotubes in response to 5-aminoimidazole-4-carboxamideriboside〔J〕.J Biol Chem,2001；276(50)：46912-6.

〔2015-12-03修回〕

(編輯李相軍)

國家自然科學基金資助項目(30570886)；教育部留學回國人員科研啟動基金資助項目(教外司留〔2015〕1098號)

羅招凡(1972-)，女，醫學博士，副主任技師，主要從事代謝綜合征與腫瘤的基礎研究。

R589

A

1005-9202(2016)15-3629-03；doi：10.3969/j.issn.1005-9202.2016.15.008

1中山大學孫逸仙紀念醫院內分泌科