萬勝利,何 丹,晏子俊,張嚴方,張景勍
(重慶醫科大學高校藥物工程研究中心,重慶400016)
殼聚糖修飾的L-天門冬酰胺酶脂質體的穩定性
萬勝利,何 丹,晏子俊,張嚴方,張景勍*
(重慶醫科大學高校藥物工程研究中心,重慶400016)
考察殼聚糖修飾的L-天門冬酰胺酶脂質體在體外的穩定性。分別從最適pH、最適溫度、儲存穩定性、酸堿穩定性、熱穩定性,以及抗胰蛋白酶水解的能力等方面,對比游離L-天門冬酰胺酶及殼聚糖修飾的L-天門冬酰胺酶脂質體。結果表明:游離L-天門冬酰胺酶和殼聚糖修飾的L-天門冬酰胺酶脂質體的最適pH分別為7.5和7.0,最適溫度分別為60℃和50℃,殼聚糖修飾的L-天門冬酰胺酶脂質體的儲存穩定性、酸堿穩定性、熱穩定性,以及抗胰蛋白酶水解的能力均優于游離酶。因此,殼聚糖修飾的L-天門冬酰胺酶脂質體能明顯提高游離酶的穩定性。
L-天門冬酰胺酶;脂質體;殼聚糖;穩定性
L-天門冬酰胺酶(L-asparaginase,L-ASP)是一種大分子蛋白質類生化藥物,能將腫瘤細胞生長所需要的L-天冬酰胺水解為氨和L-天冬氨酸,從而有效地抑制腫瘤細胞的生長[1]。L-ASP對急性淋巴細胞白血病及非何杰淋巴瘤有較好的療效,是一種重要的治療白血病的藥物。但L-ASP穩定性差,易被蛋白酶分解等缺點限制了L-ASP的應用[2]。脂質體是一種新型的藥物載體,具有類生物膜的雙分子層結構,可提高被包封藥物的穩定性,現已廣泛應用到抗癌藥物、蛋白多肽類中[3]。殼聚糖是一種高分子天然多糖,具有易化學修飾性和獨特分子結構,對脂質體表面進行修飾的同時,能提高其穩定性[4]。
本研究首次將L-ASP制備成殼聚糖修飾的LASP脂質體 (Chitosan modified liposomes containing L-asparaginase,LACL),以期提供增強酶類穩定性的方法,對L-ASP有重要意義,同時也為其他酶類穩定性的研究奠定了科學理論基礎。
1.1 材料和儀器
1.1.1 主要材料、試劑 L-ASP,以色列Prospec公司產品;殼聚糖,浙江金殼生物化學有限公司產品;卵磷脂,德國Lipoid公司產品;膽固醇,美國Sigma公司產品;L-天門冬酰胺,美國Sigma公司產品;奈斯勒指示劑,作者所在實驗室自制。
1.1.2 主要儀器 KQ 2200 B型超聲波清洗器,昆山市超聲儀器有限公司制造;RE-52AA旋轉蒸發器,上海亞榮生化儀器廠制造;pH計,上海精密科學儀器有限公司制造;85-2型恒溫磁力攪拌器,上海司樂儀器有限公司制造;UV-7504 PC紫外分光光度計,上海欣茂儀器有限公司制造。
1.2 試驗方法
1.2.1 LACL的制備 采用逆向蒸發法制備L-ASP脂質體,取處方量的卵磷脂、膽固醇溶于二氯甲烷中,旋轉蒸發至形成均勻透明薄膜,加入乙醚和10 mL含L-ASP的緩沖液,超聲處理后繼續分散得L-ASP脂質體;將L-ASP脂質體滴加到一定濃度的殼聚糖溶液中,攪拌3 h后4℃靜置12 h即得LACL[5-6]。
1.2.2 L-ASP活性的測定 在50 mmol/L Tris-HCL的緩沖液中(pH7.3),以L-天門冬酰胺為底物,加入0.1 mL L-ASP,于37℃水浴中保溫10 min,加0.1 mL三氯醋酸溶液,終止反應。離心后,取0.5 mL上清液滴入7.0 mL蒸餾水中,再加1.0 mL奈斯勒指示劑,放置10 min后,在480 nm處比色測定生成的氨。酶的活性單位定義:每分鐘催化L-天門冬酰胺水解釋放1 μmol氨所需的酶量[7-8]。
1.2.3 L-ASP和LACL最適pH的選擇 在pH為6.0、6.5、7.0、7.5、8.0、8.5及9.0的條件下,分別測定L-ASP及LACL的活性。以L-ASP在最適pH下的活性為100%,計算其余各點的相對活性。
1.2.4 L-ASP和LACL最適溫度的選擇 在溫度為20、30、40、50、60、70℃的環境下,分別測定L-ASP及LACL的活性。以L-ASP在最適溫度下的活性為100%,計算其余各點樣品的相對活性。
1.2.5 L-ASP和LACL儲存穩定性的考察 L-ASP和LACL在4℃下避光密封貯存,分別于0、1、2、5、10、15、20、28 d測定其活性,結果以活性保留百分率進行計算。
1.2.6 L-ASP和LACL酸堿穩定性的考察 取適量L-ASP和LACL,分別在pH為6.0、6.5、7.0、7.5、8.0、8.5及9.0的一系列緩沖液中孵育40 min,測定其活性。以LACL在pH 7.5時的酸堿穩定性結果為100%,計算其余各點樣品的相對活性。
1.2.7 L-ASP和LACL熱穩定性的考察 將L-ASP和LACL置于55℃的水浴中,分別于0、1、2、3、4 h測定其活性,結果以活性保留百分率進行計算。
1.2.8 L-ASP和LACL抗胰蛋白酶水解能力 取適量L-ASP和LACL,分別加入適量質量濃度為0.1 mg/mL的胰蛋白酶液,混合均勻后,放置于37℃的水浴中,在60 min內測定其活性,結果以活性保留百分率進行計算。
2.1 L-ASP和LACL的最適pH
測定結果見圖1,L-ASP和LACL的最適pH分別為7.5和7.0。pH 6~8時,LACL的活性都高于LASP,當L-ASP和LACL都在最適pH時,LACL的活性約為L-ASP的1.4倍,在pH7.5(約等于血漿的生理pH 7.4)時,LACL的活性也明顯高于L-ASP。

圖1 L-ASP和LACL最適pH(n=3)Fig.1 Optimum pH of L-ASP and LACL(n=3)
2.2 L-ASP和LACL的最適溫度
測定結果見圖2,L-ASP的最適溫度為60℃,LACL的最適溫度為50℃,更接近人體體溫,在30~60℃時,LACL的活性明顯高于L-ASP。
2.3 L-ASP和LACL的儲存穩定性
測定結果見圖3,大約在18 d時,L-ASP的活性降至50%,而此時,LACL仍存約有80%的活性;在28 d時,L-ASP僅保留有33.10%的活性,LACL仍保留有61.18%的活性。結果顯示,LACL的儲存穩定性明顯優于L-ASP。

圖2 L-ASP和LACL最適溫度(n=3)Fig.2 Optimum temperature of L-ASP and LACL(n=3)

圖3 L-ASP和LACL的儲存穩定性(n=3)Fig.3 Storage stabilities of L-ASP and LACL(n=3)
2.4 L-ASP和LACL的酸堿穩定性
在pH 6.0~9.0時,LACL的活性保留值均高于L-ASP,見圖4,LACL的酸堿穩定性優于L-ASP。在pH 6.5~8.5時,LACL保留有90%以上的活性;在pH 7.5時,LACL和L-ASP都保留有最大活性,但此時LACL的活性保留值明顯比L-ASP高。結果表明,LACL有更好的抗外界環境酸堿變化的能力。

圖4 L-ASP和LACL的酸堿穩定性(n=3)Fig.4 pH stabilities of L-ASP and LACL(n=3)
2.5 L-ASP和LACL的熱穩定性
L-ASP在3 h時,活性消失,而此時LACL仍保留有約60%的活性,見圖5,結果表明LACL的熱穩定性比L-ASP好。

圖5 55℃條件下L-ASP和LACL的穩定性(n=3)Fig.5 Stability of L-ASPand LACL incubated at 55℃(n=3)
2.6 L-ASP和LACL抗胰蛋白酶水解的能力
L-ASP在有胰蛋白酶的環境中,活性快速下降,30 min時活性降至約50%,此時LACL仍保留有約70%的活性;50 min時,L-ASP的活性消失,此時LACL仍保留有約53%的活性。見圖6,結果顯示,LACL比L-ASP有更好的抗胰蛋白酶水解的能力。

圖6 L-ASP和LACL抗胰蛋白酶水解的能力(n=3)Fig.6 Proteolytic stabilities of L-ASP and LACL(n=3)
L-ASP作為一種酶蛋白質藥物,其不穩定性和易被蛋白酶降解等缺點,在一定程度上限制了其被廣泛應用[2,9]。殼聚糖是自然界中一種帶正電的陽離子多糖,具有無毒性和良好的生物相容性,對生物分子、有機物及許多離子有很好的螯合、吸附和離子交換能力[4,6]。本研究中首次將 L-ASP制備成LACL,LACL的穩定性較游離的L-ASP有明顯提高。無論是4℃的儲存條件下,還是55℃的加熱環境下,LACL都能保持較好的活性。結果表明,LACL與L-ASP比較,LACL有更好的抗外界溫度變化的能力。在pH 6.0~9.0時,LACL的活性保留值均高于L-ASP,LCAL較L-ASP有更好的抗外界酸堿變化的能力。游離的L-ASP易被胰蛋白酶水解,半衰期短,而LCAL則表現出良好的抗胰蛋白酶水解的能力。LACL優越的穩定性可能是殼聚糖脂質體對酶起保護作用的結果[10-11]。L-ASP的最適溫度為60℃,而LACL的最適溫度為50℃,更接近人體體溫;在40℃(接近人體體溫)時LACL的活性約為L-ASP的1.1倍。pH6.0~8.0時,LACL的活性高于L-ASP;當L-ASP和LACL都在最適pH下時,LACL的活性約為L-ASP的1.4倍。結果表明,將L-ASP制備成LACL可在一定程度上提高L-ASP的活性,這可能是酶和脂質體膜及殼聚糖相互作用的結果[5,10-11]。
本研究結果顯示,LACL有提高游離酶活性,增強其穩定性的優點,為蛋白酶類藥物的深入研究提供了理論依據。
[1]Kim M,Kim T M,Kim K H,et al.Ifosfamide,methotrexate,etoposide,and prednisolone (IMEP)plus L-asparaginase as a first-line therapy improves outcomes in stage III/IV NK/T cell-lymphoma,nasal type(NTCL)[J].Ann Hematol,2015,94(3):437-444.
[2]Anqiolillo A L,Schore R J.Devidas M,et a1.Pharmacokinetic and pharmacodynamic properties of calaspargase pegol Escherichia coli L-asparaginase in the treatment of patients with acute lymphoblastic leukemia:results from Children's Oncology Group Study AALL07P4[J].J Clin Oncol,2014,32(34):3874-3882.
[3]Miao Z L,Deng Y J,Du H Y,et al.Preparation of a liposomal delivery system and its in vitro release of rapamycin[J].Exp Ther Med,2015,9(3):941-946.
[4]賈海紅,周洪英,王雪松.生物吸附劑殼聚糖對剛果紅的吸附[J].食品與生物技術學報,2013,32(6):651-655. JIA Honghai,ZHOU Hongying,WANG Xuesong.Study on the biosorption of congo red by chitosan[J].Journal of Food Science and Biotechnology,2013,32(6):651-655.(in Chinese)
[5]王娜,趙春景,黃開順,等.產朊假絲酵母尿酸酶脂質納米粒的制備及其藥效學特性分析[J].中國生物制品學雜志,2013,26(8):1147-1150. WANG Na,ZHAO Chunjing,HUANG Kaishun,et al.Preparation and pharmacodynamics of lipid nanoparticles containing uricase from candida utilis[J].Chinese Journal of Biologicals,2013,26(8):1147-1150.(in Chinese)
[6]Chen H,Wu J,Sun M,et al.N-trimethyl chitosan chloride-coated liposomes for the oral delivery of curcumin[J].J Liposome Res,2012,22(2):100-109.
[7]Ha W,Meng X W,Li Q,et al.Self-assembly hollow nanosphere for enzyme encapsulation[J].Soft Matter,2010(6):1405-1408.
[8]施特爾馬赫(德).酶的測定方法[M].錢嘉淵譯.北京:中國輕工業出版社,1992:85-88.
[9]Borqhorst S,Hempel G,Poppenborq S,et al.Comparative pharmacokinetic/pharmacodynamic characterisation of a new pegylated recombinant E.coli L-asparaginase preparation(MC0609)in Beagle dog[J].Cancer Chemoth Pharm,2014,74(2):367-378.
[10]郭健新,平其能,董雋,等.殼聚糖包衣脂質體對α-糜蛋白酶降解醋酸亮丙瑞林的保護作用[J].中國藥學雜志,2005,40(1):47-50. GUO Jianxin,PING Qineng,DONG Jun,et al.Protection effect of chitosan-coated liposome on the degradation of leuprolide by α-chymotrypsin[J].Chinese Pharmaceutical Journal,2005,40(1):47-50.(in Chinese)
[11]Rescia V C,Ramos H R,Takata C S,et al.Diphtheria toxoid conformation in the context of its nanoencapsulation within liposomal particles sandwiched by chitosan[J].J Liposome Res,2011,21(1):116-123.
Preliminary Study on the Stability of Chitosan-Modified Liposomes Containing L-Asparaginase
WAN Shengli,HE Dan,YAN Zijun,ZHANG Yanfang, ZHANG Jingqing*
(Engineering Research Center in University,Chongqing Medical University,Chongqing 400016,China)
To investigate the in vitro stability of chitosan-modified liposomes containing L-asparaginase(LACL),the optimal pH,temperature,storage stability,pH stability,thermal stability and proteolytic stability were investigated in this study.The optimal pH values of L-ASP and LACL were at 7.5 and 7.0,respectively.The optimal temperatures of L-ASP and LACL were at 60℃and 50℃,respectively.The stabilities of LACL were higher than that of L-ASP.The results shown that the stability of L-ASP was significantly enhanced by the LACL.
L-asparaginase,liposome,chitosan,stability
Q 556,R 392-33
A
1673—1689(2016)08—1041—04
2015-03-07
國家自然科學基金項目(30973645)。
*通信作者:張景勍(1973—),女,上海人,理學博士,教授,博士研究生導師,主要從事新藥研究與開發。E-mail:zjqrae01@163.com