999精品在线视频,手机成人午夜在线视频,久久不卡国产精品无码,中日无码在线观看,成人av手机在线观看,日韩精品亚洲一区中文字幕,亚洲av无码人妻,四虎国产在线观看 ?

氧化應激對粗柄羊肚菌菌絲生長和菌核發生的影響

2014-08-28 19:16:54何培新等
湖北農業科學 2014年13期
關鍵詞:氧化應激

何培新等

摘要:采用平板覆蓋玻璃紙培養法,初步探討了甘露醇、二甲基亞砜(DMSO)、苯甲酸鈉和N,N-二甲基對亞硝基苯胺等4種羥基自由基清除劑, L-半胱氨酸、還原型谷胱甘肽和β-巰基乙醇等3種巰基化合物和抗壞血酸對粗柄羊肚菌(Morchella crassipes)菌絲生長和菌核發生的影響。結果表明,作為可以降低真菌胞內氧化應激的活性氧自由基清除劑,測試藥劑對菌絲生長和菌核發生具有抑制作用,且該抑制作用隨著藥劑濃度的增加而增強,較高濃度的添加藥劑可完全抑制菌核發生。隨著測試藥劑的羥基自由基清除能力增強,完全抑制粗柄羊肚菌菌核發生的濃度相應降低,菌絲生長也大致表現出類似的趨勢。測試的較強自由基清除劑苯甲酸鈉、N,N-二甲基對亞硝基苯胺、3種巰基化合物和抗壞血酸改變了粗柄羊肚菌菌落的色澤,表明打破了粗柄羊肚菌正常的生理活動。

關鍵詞:粗柄羊肚菌(Morchella crassipes);自由基清除劑;氧化應激;菌絲生長;菌核發生

中圖分類號:S646.7 文獻標識碼:A 文章編號:0439-8114(2014)13-3085-05

Effects of Oxidative Stress on Mycelial Growth and Sclerotial Metamorphosis

of Morchella crassipes

HE Pei-xin1,LIU Wei2,CAI Ying-li3,MA Ben-jun1,CHEN Lei-tao1,WU Xiao-rui1

( 1. School of Food and Biological Engineering, Zhengzhou University of Light Industry, Zhengzhou 450002,China;

2. Institute of Hydrobiology, Chinese Academy of Sciences, Wuhan 430072, China;

3. Institute of Applied Mycology, Huazhong Agricultural University, Wuhan 430070, China)

Abstract:Cellophane-cover plating method was used to study the influences of radical scavengers on mycelial growth and sclerotial metamorphosis of Morchella crassipes. Five hydroxyl radical scavengers (mannitol, DMSO, sodium benzoate and N,N-dimethyl nitrosoaniline), three mercapto compounds (L-cysteine, glutathione and β-mercaptoethanol) and ascorbic acid were tested. Results showed that the reactive oxygen radical scavengers could reduce fungal intracellular oxidative stress. The chemical agents tested inhibited the mycelial growth and sclerotia occurrence. The inhibition was enhanced with the increase of tested agents. Drugs with high concentrations inhibited completely the occurrence of sclerotia. With the enhancement of hydroxyl radical scavenging capacity, the concentration of scavengers completely inhibited occurrence of the sclerotia reduced accordingly. The effects on mycelial growth were similar. It is indicated that strong free radical scavengers such as sodium benzoate, N,N-dimethyl nitrosoaniline, mercapto compounds and ascorbic acid changed the color of colonies of M. crassipes, indicating the normal physiological activity was interrupted.

Key words: Morchella crassipes; radical scavenger; oxidative stress; mycelial growth; sclerotial metamorphosis

氧化應激(Oxidative stress)是指細胞內氧化增強劑與抗氧化劑之間的平衡向氧化增強的方向變化,高活性分子如活性氧(Reactive oxygen species,ROS)產生過多,超過了細胞的抗氧化能力,造成個體或細胞的氧化損傷[1]。在真菌中,氧化應激會導致DNA、蛋白質和脂肪大分子氧化損傷,誘導細胞循環改變、細胞凋亡和分化的發生。氧化應激會誘導齊整小核菌(Sclerotium rolfsii)等多種真菌菌核分化,通過形成菌核規避氧氣,阻止超氧化狀態的發展,避免對細胞產生更大的損傷[2]。

羊肚菌(Morchella spp.)是一類世界性分布的名貴大型真菌,具有較大的食用和藥用價值。百余年來,國內外對羊肚菌的分類鑒定、自然分布、生理生態、遺傳特性和人工栽培等進行了大量研究。然而,羊肚菌的人工栽培至今仍未得到根本上的解決[3,4]。菌核是多種羊肚菌生活史的必經階段,誘導形成菌核是其人工栽培的基礎[5-7]。關于羊肚菌菌核發生生理學的研究報道較少,沒有發現氧化應激影響羊肚菌菌核發生的系統研究報道。為此,采用平板覆蓋玻璃紙法,初步探討了甘露醇、二甲基亞砜(DMSO)、苯甲酸鈉和N,N-二甲基對亞硝基苯胺等4種羥基自由基清除劑,谷胱甘肽(還原型)、L-半胱氨酸和β-巰基乙醇等3種巰基化合物和維生素族抗氧化劑——抗壞血酸對粗柄羊肚菌(M.crassipes)菌絲生長和菌核發生的影響,以期為深入開展氧化應激影響羊肚菌菌核發育的生理學機制研究奠定基礎。

1 材料與方法

1.1 供試材料

供試粗柄羊肚菌菌株組織分離自河南省鄭州市郊區發生的子囊果,經過形態學和分子生物學分析確定其分類地位[8]。

CYM完全培養基:蛋白胨2 g,酵母膏2 g,硫酸鎂0.5 g,磷酸二氫鉀0.46 g,磷酸氫二鉀1 g,葡萄糖20 g,瓊脂20 g,蒸餾水定容至1 000 mL,121 ℃滅菌25 min。

1.2 試驗方法

測定了甘露醇(0、0.05、0.10、0.20、0.40、0.80 mol/L)、DMSO(0、20、40、100、150、300 mmol/L)、苯甲酸鈉(0、2、6、10、15、20 mmol/L)、N,N-二甲基對亞硝基苯胺(0、0.3、0.6、0.9、1.2、1.5 mmol/L)等4種羥基自由基清除劑,β-巰基乙醇(0、2、4、6、12、24 mmol/L)、L-半胱氨酸(0、1、5、10、20、40、80 mmol/L)和谷胱甘肽(還原型)(0、1、5、10、20、40、80 mmol/L)等3種巰基化合物以及抗壞血酸(0、30、60、90、120、150 mmol/L)對供試菌株菌絲生長和菌核發生的影響。所有化學試劑均為國產分析純,采用0.22 μm的細菌過濾器過濾除菌。采用直徑9 cm的玻璃培養皿培養、試驗。玻璃紙裁成圓形,直徑略小于9 cm,用10 mmol/L的EDTA-Na2水溶液煮沸 10 min,再用去離子水洗滌2次,121 ℃高壓蒸汽滅菌、備用。供試藥物過濾除菌后,待培養基冷卻至約50 ℃時,與培養基混勻、倒平皿,待培養基凝固后覆蓋玻璃紙。用打孔器打取直徑5 mm的菌絲塊接種于玻璃紙中間,24 ℃恒溫培養。接種塊菌絲的菌齡、厚度和大小保持一致。每天觀測并記錄菌落直徑(mm)和菌株生長發育狀態,按下式計算菌絲生長速度:菌絲生長速度(mm/h)=(菌落直徑-5)/(培養時間×2)。連續培養14 d,統計菌核數量,測量菌核大?。╩m);揭下含有菌絲體和菌核的玻璃紙,用鑷子將菌核小心取出,50 ℃烘干至恒重,稱重(mg);將剩余的菌絲刮下、烘干、稱重。每處理3次重復。

1.3 數據分析與處理

采用SPSS 17.0軟件分析和處理數據。所有分析的數據為3個重復的平均值±標準差(SD)。

2 結果與分析

2.1 羥基自由基清除劑對粗柄羊肚菌菌絲生長和菌核發生的影響

從圖1可以看出,甘露醇對粗柄羊肚菌菌絲生長的影響較小。低濃度(≤0.10 mol/L)時不影響菌絲生長,較高濃度則產生輕微的抑制作用。添加濃度達0.80 mol/L時,菌絲生長速度較對照組低10%左右。甘露醇整體上抑制菌核發育,其抑制效果隨著藥劑濃度的升高而增強,≥0.40 mol/L時完全抑制菌核的發生。此外,在給定的濃度條件下,甘露醇不影響粗柄羊肚菌菌落的色澤。

從圖2可以看出,DMSO對粗柄羊肚菌菌絲生長和菌核發生的影響強于甘露醇。低濃度(20 mmol/L)的DMSO,菌絲的生長速度和對照組相當;隨著濃度的持續升高,菌絲生長速度平緩降低;最高濃度(300 mmol/L)條件下也沒有完全抑制菌絲體的生長。隨著DMSO濃度的增加,對菌核發生的抑制作用增強;濃度≥150 mmol/L時完全抑制菌核的發生。在測試的藥劑濃度下,沒有影響粗柄羊肚菌菌落的顏色。

從圖3可以看出,苯甲酸鈉對粗柄羊肚菌菌絲生長和菌核發生產生了較強的影響。隨著藥劑濃度的增加,對菌絲生長的抑制作用增強。15 mmol/L的條件下,24 ℃恒溫培養14 d,菌落未能長滿平板,菌落邊緣不整齊; 20 mmol/L時則完全抑制菌絲體的生長,表現為強抑制作用。濃度2 mmol/L苯甲酸鈉的平板有少量菌核的發生,菌核總重量為10.2 mg;濃度≥6 mmol/L以上時完全抑制菌核的發生。隨著苯甲酸鈉濃度的增加,菌落的顏色逐漸加深。15 mmol/L條件下,菌落顏色為深棕色。

從圖4可以看出,N,N-二甲基對亞硝基苯胺對粗柄羊肚菌菌絲生長和菌核發生的抑制作用最強。隨著藥劑濃度的升高,菌絲生長速度逐漸下降,菌核數量和總重量逐漸降低。1.5 mmol/L時完全抑制菌核的發生。菌落的顏色隨著藥劑濃度的升高逐漸變淺,濃度1.2 mmol/L下為淺棕色,濃度1.5 mmol/L下為黃白色。

2.2 巰基化合物對粗柄羊肚菌菌絲生長和菌核發生的影響

從圖5可以看出,谷胱甘肽(還原型)和L-半胱氨酸對粗柄羊肚菌菌絲生長和菌核發生產生了相似的影響。添加藥劑的濃度為1 mmol/L不影響菌絲的生長,但菌核發生比對照組顯著減少;藥劑濃度升高,對菌絲生長和菌核發生產生了顯著影響,濃度≥10 mmol/L時完全抑制菌核發生。通過藥物處理后的菌落形態和菌核發育狀況可以看出,谷胱甘肽(還原型)對菌絲生長的抑制作用強于L-半胱氨酸,濃度≥10 mmol/L時,24 ℃恒溫培養14 d,添加谷胱甘肽(還原型)菌絲難以長滿平板,菌落邊緣不整齊,菌落的顏色逐漸變淺,最終表現為白色菌落;而添加L-半胱氨酸,菌絲緩慢生長,最終可發滿平板,但菌絲生物量明顯降低,菌落顏色隨著藥劑濃度增高而逐漸變淺,最終為淺棕色至淡黃色。

從圖6可以看出,CYM平板中不同濃度的β-巰基乙醇表現出對粗柄羊肚菌菌絲生長和菌核發生產生較強的抑制作用。2 mmol/L時菌絲以較低的速度(0.02 mm/h)生長;持續培養14 d,菌絲可長滿平板,菌落淺棕色,氣生菌絲較少。4 mmol/L時強烈抑制菌絲生長,持續培養14 d菌絲未能長滿平板,菌落邊緣不整齊。濃度大于4 mmol/L則完全抑制菌絲生長。所有添加藥劑的平板均沒有菌核發生,表現為對菌核的強烈抑制作用。

2.3 抗壞血酸對粗柄羊肚菌菌絲生長和菌核發生的影響

試驗結果表明,隨著添加藥劑濃度的增加,抗壞血酸對粗柄羊肚菌菌絲生長的抑制作用增強。濃度為30 mmol/L時,菌絲生長速度(0.07 mm/h)明顯低于對照(0.33 mm/h);濃度大于120 mmol/L時則完全抑制菌絲生長,表現出對菌絲生長的毒害作用。添加藥劑的平板菌落顏色為淺黃色至乳白色,邊緣不整齊。所有試驗濃度下平板均沒有菌核發生。

3 小結與討論

按照反應速率常數,測試的4種羥基自由基清除藥劑可分為3種類型:甘露醇為弱清除劑,DMSO和苯甲酸鈉為中等清除劑,N,N-二甲基對亞硝基苯胺為強清除劑。N,N-二甲基對亞硝基苯胺通過苯胺環的羥基化清除羥基自由基,清除速率較高;DMSO與羥基自由基反應產生甲基自由基、烷類、甲烷磺酸、甲醛等多種產物;苯甲酸鹽通過其苯甲酸酯環的羥基化或脫羧作用清除羥基自由基;甘露醇為傳統的羥基自由基清除劑,通過形成羥基過氧化氫自由基發揮作用[9]。本研究表明,隨著測試藥劑的羥基自由基清除能力增強,完全抑制粗柄羊肚菌菌核發生的濃度相應降低,菌絲生長也表現出類似的趨勢。羥基自由基清除劑對粗柄羊肚菌菌核發生的影響,與氧化應激誘導真菌菌核發生的假說[2]相一致。該假說已經在齊整小核菌、核盤菌(Sclerotinia sclerotiorum)、小核盤菌(S. minor)和立枯絲核菌(Rhizoctonia solani)等產菌核的植物病原真菌上得到驗證[10,11]。隨著藥劑自由基清除能力和濃度的增加,對自由基的清除程度加大,降低了胞內氧化應激水平,抑制了菌核的發生。相比而言,DMSO完全抑制粗柄羊肚菌菌核發生及明顯抑制菌絲生長的添加濃度(分別為150 mmol/L和大于300 mmol/L)遠高于自由基清除反應速率常數相近的苯甲酸鈉(分別為6 和15 mmol/L),原因可能是DMSO較難通過真菌的細胞膜,被完全吸收發揮作用的能力更低。類似的結果也見于齊整小核菌等植物病原真菌研究[10,11]。

巰基氧化還原態(Thiol redox state,TRS)是很多主要的生物學過程,特別是氧化應激的必需代謝效應物[12]。還原態(游離巰基)和氧化態(形成二硫鍵)的TRS成分分別是氧化應激低與高的指示劑。L-半胱氨酸含有游離巰基基團,對維持多數抗氧化酶的活性具有重要作用。谷胱甘肽(還原型)是重要抗氧化酶谷胱甘肽過氧化物酶(GPX)的底物。GPX利用谷胱甘肽催化過氧化氫生成水,或使有機氫過氧化物(ROOH)還原為ROH。β-巰基乙醇是潛在的還原分子、抗氧化劑和膜穩定劑。這些巰基化合物均可直接或間接清除自由基,降低氧化應激[9]。本研究表明,測試的3種巰基化合物對粗柄羊肚菌菌絲生長和菌核發生產生了較強的抑制作用,隨著添加濃度的增加,更顯著降低了氧化應激,對菌核發生的抑制作用也加強。該結果與齊整小核菌等植物病原真菌的結果一致[13-15],也符合氧化應激誘導真菌菌核發生的假說[2]。

抗壞血酸是維生素族水溶性抗氧化劑,可清除多數ROS,如過氧化氫自由基、超氧化物自由基、羥基自由基和單態氧;還能充當脂質抗氧化劑及間接脂質抗氧化劑,恢復維生素E的脂質抗氧化劑性質[9]。本研究表明,一定濃度的外源抗壞血酸對粗柄羊肚菌菌絲生長具有明顯抑制作用,對菌核發生的抑制作用更加顯著。該結果與立枯絲核菌、小核盤菌和齊整小核菌的研究結果一致[16-18],也進一步驗證了氧化應激誘導真菌菌核發生的假說。

試驗結果表明,較大濃度的供試自由基清除劑對粗柄羊肚菌菌絲生長具有一定的抑制作用,且該抑制作用與藥劑濃度正相關,濃度過大完全抑制菌絲的生長。在齊整小核菌等植病真菌的研究中,也發現類似的結果[2,10-12]。通常情況下,抗氧化劑通過形成有毒的次級自由基產物和最終穩定的副產物而清除自由基[9]。清除劑濃度越高,這些次級自由基的積累也越多,超過了真菌抗氧化機器的中和能力,因而掩蓋了清除劑的抗氧化作用,最終導致真菌死亡[10,11]。該結果可用于開發新型殺真菌劑,較高濃度的自由基清除劑可強烈抑制真菌菌絲生長,打破真菌的生活史。

CYM平板添加較強自由基清除劑(如苯甲酸鈉、N,N-二甲基對亞硝基苯胺、3種巰基化合物和抗壞血酸)會改變粗柄羊肚菌菌落的顏色。羊肚菌菌落顏色的改變是真菌正常生理活動被打破的信號,是自由基清除劑保護性抗氧化應答的表現(色素也具有抗氧化作用)。

與核盤菌等多種植病真菌不同,羊肚菌的菌核沒有明顯分化,因此可稱之為“假菌核”(Pseudosclerotium)。雖然為假菌核,但其發育過程與真菌核相似。菌核形成時,菌絲重復分枝,細胞膨大,細胞壁加厚,鄰近小菌核聚結和產生色素[3-6]。本研究表明,與核盤菌、齊整小核菌等多種植物病原真菌相似,氧化應激也誘導粗柄羊肚菌菌核的發生,暗示羊肚菌菌核發育的生理學機制與其他真菌相似,可借鑒其研究成果。進一步測定不同生理狀態菌株的TRS分子成分、凋亡或壞死相關的小片段DNA以及主要ROS成分、超氧化物自由基的變化,有助于深入理解羊肚菌菌核發育的生理學機制。采用比較轉錄組學技術結合基因功能分析,深入研究羊肚菌菌核發育的分子機制,將會有效地促進羊肚菌人工栽培馴化的發展。

參考文獻:

[1] HALLIWELL B. Biochemistry of oxidative stress[J].Biochemical Society Transactions,2007,35(5):1147-1150.

[2] GEORGIOU C D, PATSOUKIS N, PAPAPOSTOLOU L,et al. Sclerotial metamorphosis in filamentous fungi is induced by oxidative stress[J]. Integrative and Comparative Biology,2006, 46 (6): 691-712.

[3] 李 華,包海鷹,李 玉.羊肚菌研究進展[J].菌物研究,2004,2(4):53-60.

[4] PILZ D, MCLAIN R,ALEXANDER S,et al. Ecology and Management of Morels Harvested from the Forests of Western North America[R]. Pacific Northwest Research Station, General Technical Report PNW-GTR-710, 2007.

[5] OWER R D. Notes on the development of the morel ascocarp: Morchella esculenta[J]. Mycologia,1982,74:142-144.

[6] VOLK T J, LEONARD T J. Cytology of the life-cycle of Morchella[J]. Mycological Research, 1990,94(3):399-406.

[7] MASAPHY S. Biotechnology of morel mushrooms: successful fruiting body formation and development in a soilless system[J]. Biotechnology Letters,2010,32(10):15-23.

[8] 何培新,劉 偉.粗柄羊肚菌分子鑒定及羊肚菌屬真菌系統發育分析[J].江蘇農業學報,2010,26(2):395-399.

[9] HALLIWELL B,GUTTERIDGE C M J. Free Radicals in Biology and Medicine[M].London: Oxford University Press,2007.

[10] GEORGIOU C D, TAIRIS N, SOTIROPOULOU A. Hydroxyl radical scavengers inhibit sclerotial differentiation and growth in Sclerotinia sclerotiorum and Rhizoctonia solani[J].Mycological Research,2000,104(10):1191-1196.

[11] GEORGIOU C D,TAIRIS N,SOTIROPOULOU A. Hydroxyl radical scavengers inhibit lateral-type sclerotial differentiation and growth in phytopathogenic fungi[J]. Mycologia,2000,92(5):825-834.

[12] PATSOUKIS N,GEORGIOU C D.Fluorometric determination of thiol redox state[J].Analytical and Bioanalytical Chemistry,2005,383:923-929.

[13] PATSOUKIS N, GEORGIOU C D. Thiol redox state and related enzymes in sclerotium-forming filamentous phytopathogenic fungi[J]. Mycological Research,2008,112:602-610.

[14] PATSOUKIS N,GEORGIOU C D.Differentiation of Sclerotinia minor depends on thiol redox state and oxidative stress[J]. Canadian Journal of Microbiology,2008,54:28-36.

[15] PATSOUKIS N,GEORGIOU C D. The role of thiols on sclerotial differentiation of filamentous phytopathogenic fungi[J]. The Open Mycology Journal,2008,2:1-8.

[16] GEORGIOU C D, PETROPOULOU P K. Effect of the antioxidant ascorbic acid on sclerotial differentiation in Rhizoctonia solani[J]. Plant Pathology,2001,50:594-600.

[17] GEORGIOU C D,PETROPOULOU P K. The role of ascorbic acid in the differentiation of sclerotia in Sclerotinia minor[J]. Mycopathologia,2001,154:71-77.

[18] GEORGIOU C D,ZERVOUDAKIS G,PETROPOULOU P K. Ascorbic acid might play a role in sclerotial differentiation of Sclerotium rolfsii[J].Mycologia,2003,95:308-316.

[2] GEORGIOU C D, PATSOUKIS N, PAPAPOSTOLOU L,et al. Sclerotial metamorphosis in filamentous fungi is induced by oxidative stress[J]. Integrative and Comparative Biology,2006, 46 (6): 691-712.

[3] 李 華,包海鷹,李 玉.羊肚菌研究進展[J].菌物研究,2004,2(4):53-60.

[4] PILZ D, MCLAIN R,ALEXANDER S,et al. Ecology and Management of Morels Harvested from the Forests of Western North America[R]. Pacific Northwest Research Station, General Technical Report PNW-GTR-710, 2007.

[5] OWER R D. Notes on the development of the morel ascocarp: Morchella esculenta[J]. Mycologia,1982,74:142-144.

[6] VOLK T J, LEONARD T J. Cytology of the life-cycle of Morchella[J]. Mycological Research, 1990,94(3):399-406.

[7] MASAPHY S. Biotechnology of morel mushrooms: successful fruiting body formation and development in a soilless system[J]. Biotechnology Letters,2010,32(10):15-23.

[8] 何培新,劉 偉.粗柄羊肚菌分子鑒定及羊肚菌屬真菌系統發育分析[J].江蘇農業學報,2010,26(2):395-399.

[9] HALLIWELL B,GUTTERIDGE C M J. Free Radicals in Biology and Medicine[M].London: Oxford University Press,2007.

[10] GEORGIOU C D, TAIRIS N, SOTIROPOULOU A. Hydroxyl radical scavengers inhibit sclerotial differentiation and growth in Sclerotinia sclerotiorum and Rhizoctonia solani[J].Mycological Research,2000,104(10):1191-1196.

[11] GEORGIOU C D,TAIRIS N,SOTIROPOULOU A. Hydroxyl radical scavengers inhibit lateral-type sclerotial differentiation and growth in phytopathogenic fungi[J]. Mycologia,2000,92(5):825-834.

[12] PATSOUKIS N,GEORGIOU C D.Fluorometric determination of thiol redox state[J].Analytical and Bioanalytical Chemistry,2005,383:923-929.

[13] PATSOUKIS N, GEORGIOU C D. Thiol redox state and related enzymes in sclerotium-forming filamentous phytopathogenic fungi[J]. Mycological Research,2008,112:602-610.

[14] PATSOUKIS N,GEORGIOU C D.Differentiation of Sclerotinia minor depends on thiol redox state and oxidative stress[J]. Canadian Journal of Microbiology,2008,54:28-36.

[15] PATSOUKIS N,GEORGIOU C D. The role of thiols on sclerotial differentiation of filamentous phytopathogenic fungi[J]. The Open Mycology Journal,2008,2:1-8.

[16] GEORGIOU C D, PETROPOULOU P K. Effect of the antioxidant ascorbic acid on sclerotial differentiation in Rhizoctonia solani[J]. Plant Pathology,2001,50:594-600.

[17] GEORGIOU C D,PETROPOULOU P K. The role of ascorbic acid in the differentiation of sclerotia in Sclerotinia minor[J]. Mycopathologia,2001,154:71-77.

[18] GEORGIOU C D,ZERVOUDAKIS G,PETROPOULOU P K. Ascorbic acid might play a role in sclerotial differentiation of Sclerotium rolfsii[J].Mycologia,2003,95:308-316.

[2] GEORGIOU C D, PATSOUKIS N, PAPAPOSTOLOU L,et al. Sclerotial metamorphosis in filamentous fungi is induced by oxidative stress[J]. Integrative and Comparative Biology,2006, 46 (6): 691-712.

[3] 李 華,包海鷹,李 玉.羊肚菌研究進展[J].菌物研究,2004,2(4):53-60.

[4] PILZ D, MCLAIN R,ALEXANDER S,et al. Ecology and Management of Morels Harvested from the Forests of Western North America[R]. Pacific Northwest Research Station, General Technical Report PNW-GTR-710, 2007.

[5] OWER R D. Notes on the development of the morel ascocarp: Morchella esculenta[J]. Mycologia,1982,74:142-144.

[6] VOLK T J, LEONARD T J. Cytology of the life-cycle of Morchella[J]. Mycological Research, 1990,94(3):399-406.

[7] MASAPHY S. Biotechnology of morel mushrooms: successful fruiting body formation and development in a soilless system[J]. Biotechnology Letters,2010,32(10):15-23.

[8] 何培新,劉 偉.粗柄羊肚菌分子鑒定及羊肚菌屬真菌系統發育分析[J].江蘇農業學報,2010,26(2):395-399.

[9] HALLIWELL B,GUTTERIDGE C M J. Free Radicals in Biology and Medicine[M].London: Oxford University Press,2007.

[10] GEORGIOU C D, TAIRIS N, SOTIROPOULOU A. Hydroxyl radical scavengers inhibit sclerotial differentiation and growth in Sclerotinia sclerotiorum and Rhizoctonia solani[J].Mycological Research,2000,104(10):1191-1196.

[11] GEORGIOU C D,TAIRIS N,SOTIROPOULOU A. Hydroxyl radical scavengers inhibit lateral-type sclerotial differentiation and growth in phytopathogenic fungi[J]. Mycologia,2000,92(5):825-834.

[12] PATSOUKIS N,GEORGIOU C D.Fluorometric determination of thiol redox state[J].Analytical and Bioanalytical Chemistry,2005,383:923-929.

[13] PATSOUKIS N, GEORGIOU C D. Thiol redox state and related enzymes in sclerotium-forming filamentous phytopathogenic fungi[J]. Mycological Research,2008,112:602-610.

[14] PATSOUKIS N,GEORGIOU C D.Differentiation of Sclerotinia minor depends on thiol redox state and oxidative stress[J]. Canadian Journal of Microbiology,2008,54:28-36.

[15] PATSOUKIS N,GEORGIOU C D. The role of thiols on sclerotial differentiation of filamentous phytopathogenic fungi[J]. The Open Mycology Journal,2008,2:1-8.

[16] GEORGIOU C D, PETROPOULOU P K. Effect of the antioxidant ascorbic acid on sclerotial differentiation in Rhizoctonia solani[J]. Plant Pathology,2001,50:594-600.

[17] GEORGIOU C D,PETROPOULOU P K. The role of ascorbic acid in the differentiation of sclerotia in Sclerotinia minor[J]. Mycopathologia,2001,154:71-77.

[18] GEORGIOU C D,ZERVOUDAKIS G,PETROPOULOU P K. Ascorbic acid might play a role in sclerotial differentiation of Sclerotium rolfsii[J].Mycologia,2003,95:308-316.

猜你喜歡
氧化應激
熊果酸減輕Aβ25-35誘導的神經細胞氧化應激和細胞凋亡
中成藥(2021年5期)2021-07-21 08:39:04
基于炎癥-氧化應激角度探討中藥對新型冠狀病毒肺炎的干預作用
戊己散對腹腔注射甲氨蝶呤大鼠氧化應激及免疫狀態的影響
中成藥(2018年6期)2018-07-11 03:01:24
基于氧化應激探討參附注射液延緩ApoE-/-小鼠動脈粥樣硬化的作用及機制
中成藥(2018年5期)2018-06-06 03:11:43
植物化學物質通過Nrf2及其相關蛋白防護/修復氧化應激損傷研究進展
氧化應激與糖尿病視網膜病變
西南軍醫(2016年6期)2016-01-23 02:21:19
尿酸對人肝細胞功能及氧化應激的影響
DNA雙加氧酶TET2在老年癡呆動物模型腦組織中的表達及其對氧化應激中神經元的保護作用
從六經辨證之三陰病干預糖調節受損大鼠氧化應激的實驗研究
乙肝病毒S蛋白對人精子氧化應激的影響
主站蜘蛛池模板: 国产超碰在线观看| 五月婷婷导航| 在线观看91香蕉国产免费| 成年片色大黄全免费网站久久| 波多野结衣一二三| 中文字幕佐山爱一区二区免费| 天堂成人在线| 欧美α片免费观看| 无码高潮喷水在线观看| 欧美精品在线视频观看| 国产天天色| 一本大道视频精品人妻 | 白浆视频在线观看| 少妇高潮惨叫久久久久久| 亚洲美女视频一区| 免费国产高清精品一区在线| 国产免费羞羞视频| 亚洲成人动漫在线| 国产精品漂亮美女在线观看| 免费毛片a| 亚洲精品免费网站| 青草视频久久| 亚洲精品图区| 亚洲欧洲自拍拍偷午夜色| 亚洲精品中文字幕午夜| 在线无码九区| 2021国产精品自产拍在线| 乱人伦99久久| 欧美日韩一区二区三区在线视频| 99色亚洲国产精品11p| 亚洲一级毛片免费观看| 一级全免费视频播放| 国产精品手机在线观看你懂的 | 国产精品55夜色66夜色| …亚洲 欧洲 另类 春色| 午夜无码一区二区三区| 久久国产亚洲欧美日韩精品| 精品国产91爱| 中文字幕永久在线看| 日韩a级毛片| 国产97公开成人免费视频| 中文字幕日韩欧美| 麻豆a级片| 91精品专区| 在线a网站| 欧美色综合网站| 国产在线观看一区精品| 农村乱人伦一区二区| www.91在线播放| 免费xxxxx在线观看网站| 播五月综合| 国产交换配偶在线视频| 国产欧美日韩精品综合在线| 久久精品人人做人人爽97| 直接黄91麻豆网站| 天天操天天噜| 91综合色区亚洲熟妇p| 性欧美久久| 狠狠色丁婷婷综合久久| 最新痴汉在线无码AV| 青青青国产免费线在| 五月婷婷丁香综合| 国产爽歪歪免费视频在线观看| 成人免费视频一区| 91年精品国产福利线观看久久 | 思思热精品在线8| 日本免费高清一区| 五月天综合网亚洲综合天堂网| 亚洲人成影院在线观看| 福利姬国产精品一区在线| 午夜视频在线观看区二区| 熟妇人妻无乱码中文字幕真矢织江 | 欧美一区中文字幕| 高h视频在线| 99激情网| 91福利片| 亚洲无码高清一区二区| 亚洲中文久久精品无玛| 香蕉久人久人青草青草| 亚洲国产天堂在线观看| 国产微拍精品| 亚洲h视频在线|