謝國芳,王新華,王瑞,金傳緒,周笑犁,劉志剛,鄭雄
(貴陽學院 食品與制藥工程學院,貴州省果品加工工程技術(shù)研究中心,貴州 貴陽,550005)
貴州主栽藍莓品種活性成分及其抗氧化活性評價
謝國芳*,王新華,王瑞,金傳緒,周笑犁,劉志剛,鄭雄
(貴陽學院 食品與制藥工程學院,貴州省果品加工工程技術(shù)研究中心,貴州 貴陽,550005)
為了解貴州主栽藍莓品種果實中活性成分含量及其綜合抗氧化活性,以貴州規(guī)?;N植的粉藍、圓藍、巴爾德溫和燦爛為試材,測定其9種酚類組分含量、多酚、總黃酮、花色苷,并用FRAP法、總還原力(TRAP)、DPPH法和ABTS法開展體外抗氧化活性評價,采用皮爾森相關性分析對4個品種各項指標進行分析。結(jié)果顯示:沒食子酸、表兒茶素、蘆丁、p-香豆酸、槲皮素、兒茶素、鞣花酸、綠原酸、阿魏酸是供試藍莓果實中的酚類成分較高,4個品種藍莓果實中活性成分含量差異顯著(P<0.05),粉藍中沒食子酸、阿魏酸和總黃酮含量最高,圓藍中綠原酸、鞣花酸和蘆丁含量最高,巴爾德溫中槲皮素和花色苷含量最高,燦爛果實中兒茶素、表兒茶素、p-香豆酸和總酚含量最高;4個品種藍莓果實的抗氧化活性差異顯著(P<0.05),燦爛的抗氧化活性指數(shù)最高;藍莓果實中不同活性成分對抗氧化活性差異顯著(P<0.05),綠原酸含量對FRAP值具有較強貢獻,阿魏酸、多酚和總黃酮含量對TRAP值的貢獻極強,沒食子酸含量對DPPH值的貢獻極強,花色苷含量對ABTS值的貢獻較強,抗氧化活性指數(shù)(ACI)與表兒茶素和p-香豆酸含量呈現(xiàn)極其顯著的正相關(P<0.01)。
藍莓;活性成分;抗氧化活性;相關性分析
藍莓又名越橘,富含花色苷、黃酮類化合物,低糖、低脂肪,具有改善視力、提高免疫力和抗氧化等功效[1-3]。 2000年貴州省黔東南州共引入藍莓4大類30多個品種,現(xiàn)已篩出‘圓藍’、‘頂峰’、‘芭爾德溫’、‘梯夫藍’、‘燦爛’、‘粉藍’、‘杰兔’、‘S13’等8個藍莓品種進行規(guī)?;N植[4]。前期研究及文獻顯示,藍莓果實中酚類物質(zhì)含量顯著高于花色苷含量,其不同品種和產(chǎn)地對總酚含量影響較大[5-10],目前,國內(nèi)外對藍莓的花色苷的提取、純化、穩(wěn)定性、功效及其開發(fā)應用等方面報道較為全面[11~15],而酚類物質(zhì)的研究仍以總酚、粗提取及其抗氧化活性研究為主,僅DASTMALCHI等、PERTUZATTI等及劉翼翔等對藍莓果實中酚類組分及其抗氧化活性進行分析[16~18],發(fā)現(xiàn)不同區(qū)域和品種果實中酚類組分差異明顯,尚無貴州引種藍莓果實酚類組分的相關報道。本文以貴州省黔東南州規(guī)模化種植的粉藍、圓藍、巴爾德溫和燦爛4個藍莓品種為試驗材料,對總酚、總黃酮及其9種酚類組成成分進行分析,使用DPPH法、ABTS法、FRAP法和總還原力開展體外抗氧化活性評價。
1.1 材料與試劑
以種植10年樹齡藍莓為實驗樹,種植均按照黔東南州《藍莓栽培與管理技術(shù)》實施,2015年7月14日在麻江縣龍奔藍莓種植基地采摘粉藍、圓藍、巴爾德溫和燦爛4個品種藍莓果實,采摘完全成熟(果實呈現(xiàn)深藍色)、大小均勻的果實;具體按照GB/T 8855—2008 《新鮮水果和蔬菜 取樣方法》,采摘后以125 g/盒分裝于PE保鮮盒中,貯藏于4 ℃采樣箱中,運回貴州省果品加工工程技術(shù)研究中心實驗室,保留于-70 ℃超低溫冰箱。
沒食子酸(99%)、表兒茶素(≥98.0%)、p-香豆酸(≥99.0%)、槲皮素(≥98.5%)、兒茶素(≥95.0%)、鞣花酸(≥96.0%)、綠原酸(≥98.0%)、阿魏酸(≥99.5%)、甲醇(色譜純)、三氟乙酸(≥99.5%,色譜純),上海阿拉丁生化科技股份有限公司(中國上海);DPPH、TPTZ、ABTS、Gallic Acid、Rutin(99.0%)、Trolox(99.0%),美國Sigma公司;其他分析劑均為國產(chǎn)分析純。
1.2 儀器與設備
LC-20A高效液相色譜儀,日本島津公司;UV-2550型紫外分光光度計,日本島津公司;超聲清洗器( KQ5200DE),昆山市超聲儀器有限公司;IKA A11研磨機,IKA公司(德國);C18色譜柱(250mm x 4.6mm,5 μm),Waters公司(中國上海)。
1.3 實驗方法
1.3.1 酚類成分提取
參考白鴿等[19]的方法并作適當修改。稱取10 g凍果研磨成漿,取2 g果漿裝入10 mL離心管中,加入4.0 mL體積分數(shù)為70% 甲醇溶液,50 ℃超聲波輔助提取30 min,冷卻后10 000 r/min離心15 min,將上清液過濾到10 mL的容量瓶中,加入3 mL體積分數(shù)為70%甲醇溶液于殘渣中再提取30 min,在4 ℃、12 000 r/min離心10 min,合并上清液,用體積分數(shù)為70%甲醇溶液定容,用0.45 μm的濾膜過濾后待測,取1.0 mL轉(zhuǎn)移至進樣瓶中等待進樣,每個樣品3次重復。
1.3.2 花色苷、總酚和總黃酮含量測定
花色苷含量測定:采用pH示差法測定,以100 g鮮樣中所含矢車菊素-3-葡萄糖苷量(mg)表示[20];多酚含量:采用福林-酚比色法測定[21],以1 g鮮樣所含沒食子酸當量(mg)表示,即mg GAE/g;總黃酮采用比色法,以1 g鮮樣中所含蘆丁當量(mg)表示,即mg RE/g[22]。
1.3.3 色譜條件
準確稱取 9種酚類物質(zhì)標準品各10.00 mg,用甲醇溶解并定容至10.00 mL,配制成1.00 mg/mL的酚類物質(zhì)標準品貯備液,保存于-20 ℃?zhèn)溆谩?/p>
C18色譜柱(250 mm×4.6 mm,5 μm),溶液A(甲醇)和溶液B(0.3% 三氟乙酸),利用溶液B進行線性梯度洗脫:0~5 min,88%B;5~10 min,88%~75%B;10~15 min,75%B;15~20 min,75%~70%B;20~25 min,70%B;25~35 min,70%~65%B;35~40 min,65%B;40~50 min,50%B;50~60 min,88%B。柱溫:30 ℃;流動相速率:0.8 mL/min;進樣量10 μL;檢測器:紫外檢測器;波長:258 nm和280 nm。
1.3.4 抗氧化活性測定
抗氧化能力(FRAP)參照TODOROVIC等的方法,以100 g鮮樣中所含當量Trolox(mmol)的清除能力表示,即mmol TE/g[23];DPPH自由基清除能力參照TAUCHEN等的方法,以100 g鮮樣中所含當量Trolox的清除能力(mmol)表示,即mmol TE/g[24];總還原力參照OLIVEIRA等的方法,以100 g鮮樣中所含當量Trolox的清除能力(mmol)表示即mmol TE/g[25];ABTS自由基清除能力參照SCHAICH等的方法,以100 g鮮樣中所含當量Trolox的清除能力(mmol)表示,即mmol TE/g[23]。
1.4 數(shù)據(jù)處理
用 IBM SPSS19.0 軟件統(tǒng)計分析數(shù)據(jù)和作圖,測定結(jié)果用(平均值±標準誤差)來表示。實驗數(shù)據(jù)進行單因素差異分析(one-way analysis of variance,ANOVA),皮爾森相關性分析(pearson′s correlation analysis)。
2.1 不同品種藍莓果實中活性成分分析
4個藍莓中活性成分含量見表1。由表1結(jié)果可知,4個品種藍莓果實中活性成分及其含量差異顯著(P<0.05),粉藍中沒食子酸[(750.37±52.03) μg/g FW]、阿魏酸[(128.95±4.73) μg/g FW]和總黃酮[(3.08±0.01) mg/g]含量最高,粉藍中沒食子酸含量顯著高于其他3品種,粉藍中沒食子酸含量是圓藍[(51.13±1.11) μg/g FW]的14倍,與PERTUZATTI等(2012)的研究結(jié)果基本一致[17],綠原酸[(0.93±0.02) μg/g FW]、香豆酸[(2.78±0.05) μg/g FW]、槲皮素[(2.77±0.02) μg/g FW]含量最低;圓藍中綠原酸含量[(56.62±2.16) μg/g FW]、鞣花酸[(79.01±3.51) μg/g FW]和蘆丁[(30.41±1.88) μg/g FW]含量最高,綠原酸含量接近是巴爾德溫[(0.59±0.02) μg/g FW]的100倍,鞣花酸含量是燦爛中的9倍,香豆酸、阿魏酸、總酚和花色苷含量最低;巴爾德溫中槲皮素[(14.58±0.67) μg/g FW]、花色苷[(140.55±2.01) mg/100g FW]含量最高,顯著高于其他3個品種,其中槲皮素是燦爛果實的5倍,鞣花酸[(74.35±2.65) μg/g FW]和蘆丁[(0.59±0.02) μg/g FW]含量與圓藍果實的無明顯差異(P>0.05),綠原酸[(0.59±0.02) μg/g FW]、兒茶素[(2.60±0.19) μg/g FW]和表兒茶素[(1.09±0.38) μg/g FW]和總黃酮[(2.07±0.00) mg/g FW]含量最低;燦爛果實中兒茶素含量[(6.10±0.12) μg/g FW]、表兒茶素[(66.49±2.4) μg/g FW]、香豆酸[(7.57±0.43) μg/g FW]和總酚[(26.32±0.38) μg/g FW]顯著(P≤0.001)高于其他3個品種,總酚含量是圓藍[(12.79±0.57) mg/g FW]的2倍,表兒茶素含量是巴爾德溫[(1.09±0.38) μg/g FW]的60倍,鞣花酸[(8.52±0.38) mg/g FW]、槲皮素[(2.54±0.06) mg/g FW]含量最低;粉藍與燦爛中花色苷含量差異不顯著(P>0.05)。

表1 不同品種藍莓果實中活性成分分析
注:同一列不同字母表示差異顯著(P<0.05)。
2.2 不同品種藍莓果實抗氧化活性分析
不同藍莓果實中抗氧化活性結(jié)果如圖1所示。

圖1 不同品種藍莓果實抗氧化活性分析Fig.1 Antioxidant activity analysis in blueberry of different cultivars
通過單因素方差分析,圓藍的FRAP值[(91.78±0.00) mmol TE /g FW]顯著高于其他3個品種(P<0.05);燦爛的TRPA[(200.04±8.12) mmol TE/100g FW]顯著高于其他品種果實(P<0.05),圓藍和巴爾德溫的TRPA差異不顯著(P>0.05),巴爾德溫的TRPA[(99.09±5.17) mmol TE/100g FW]最低,僅為燦爛的1/2;燦爛的DPPH[(27.37±1.10) mmol TE/100g FW]顯著高于其他3個品種(P<0.05),圓藍和巴爾德溫的DPPH值差異不顯著(P>0.05),粉藍的DPPH值[(3.21±0.68) mmol TE/100g FW]極其顯著低于其他3個品種(P<0.001),僅為燦爛的1/8;粉藍的ABTS值[(170.98±3.77) mmol TE/g FW]顯著高于其他3個品種(P<0.05),圓藍的ABTS值[(98.20±5.67) mmol TE/g FW]著低于其他3個品種(P<0.001)。
2.3 酚類物質(zhì)及抗氧化活性的相關性分析
利用IBM SPSS Statistics 19軟件對4個品種藍莓果實的各項指標進行相關性分析結(jié)果如表2所示。由表2可知,多酚含量與阿魏酸含量呈極顯著正相關,與表兒茶素含量呈顯著正相關,與鞣花酸和蘆丁含量呈極顯著負相關,與槲皮素含量呈顯著負相關;總黃酮含量與沒食子酸、阿魏酸含量呈極顯著正相關,與鞣花酸、蘆丁和槲皮素呈極顯著負相關;FRAP值與綠原酸呈極顯著正相關,與鞣花酸和蘆丁含量呈顯著正相關,與阿魏酸和花色苷含量呈極顯著負相關,與多酚和總黃酮呈顯著負相關;TRPA值與阿魏酸、多酚和總黃酮呈極顯著正相關,與兒茶素呈顯著正相關,與鞣花酸和槲皮素呈極顯著負相關,與蘆丁呈顯著負相關;DPPH值與沒食子酸和總黃酮含量呈顯著負相關;ABTS值與花色苷含量呈極其顯著正相關,ABTS值與阿魏酸和花色苷含量呈顯著正相關,與綠原酸和總黃酮呈極顯著負相關;抗氧化活性指數(shù)與表兒茶素和p-香豆酸呈極顯著正相關,與多酚呈顯著正相關。
不同品種間藍莓果實的酚類物質(zhì)成分及其含量差異顯著,主要以沒食子酸、綠原酸、阿魏酸和蘆丁為主,粉藍果實中含有豐富的沒食子酸、阿魏酸和總黃酮,圓藍果實中含有豐富的綠原酸、鞣花酸和蘆丁,巴爾德溫中含有豐富的槲皮素,燦爛果實中含有豐富的表兒茶素、p-香豆酸和多酚;藍莓果實中酚類單體成分對不同抗氧化活性存在極其顯著的差異,其中,綠原酸含量對FRAP值具有較強貢獻,阿魏酸、多酚和總黃酮含量對TRAP值的極強貢獻,而蘆丁和槲皮素卻呈極強的負相關;沒食子酸含量對DPPH值的貢獻最強;花色苷含量對ABTS值的貢獻最強;表兒茶素和p-香豆酸對抗氧化活性指數(shù)具有極強的貢獻。研究發(fā)現(xiàn)不同藍莓品種果實的活性成分對其體外抗氧化活性的貢獻并不相同,且對不同抗氧化活性評價指標的抗氧化效果也不相同,這與藍莓果實中活性成分含量差異、粗提液中其他抗氧化成分的存在及其各種抗氧化評價方法的原理差異有著密切聯(lián)系。

表2 各項指標的相關性分析
注:*表示顯著(P<0.05);**表示極顯著相關(P<0.01)。
因此,在后續(xù)研究中將對粗提物進行分離、純化后結(jié)合體內(nèi)外抗氧化活性評價和動物實驗,綜合各種抗氧化活性效果,進而合理評價各種因素對果蔬的抗氧化活性的影響。
[1] 賀強,吳立仁. 藍莓果實中營養(yǎng)成分的生物學功能[J]. 北方園藝, 2011 (24): 222-224.
[2] WANG S Y, CAMP M J, EHLENFELDT M K. Antioxidant capacity and α-glucosidase inhibitory activity in peel and flesh of blueberry (Vacciniumspp.) cultivars[J]. Food Chemistry, 2012, 132(4):1 759-1 768.
[3] FLOIRENDO P F, RAKESH K S,WILLIAM L K, et al. In vitro release properties of encapsulated blueberry (Vacciniumashei) extracts[J]. Food Chemistry, 2015,168:225-232.
[4] 聶飛,房小晶,周紅英,等. 我國藍莓栽培現(xiàn)狀及在貴州的產(chǎn)業(yè)化發(fā)展前景[J].貴州農(nóng)業(yè)科學,2010,38(10):69-71.
[5] 謝國芳,譚彥,王瑞,等. 貴州主栽藍莓晚熟品種及產(chǎn)地加工特性評價[J]. 食品與發(fā)酵工業(yè),2016,42(1):128-133.
[6] 謝國芳,王瑞,劉曉燕.采前二氧化氯噴施處理對藍莓保鮮效果的影響.現(xiàn)代食品科技,2014,30(6),207-213.
[7] 王瑞,岑順友,謝國芳,等. 不同晚熟藍莓貯藏期間的品質(zhì)變化研究[J].現(xiàn)代食品科技, 2014,30(3):43-48.
[8] 朱穎,孫曉紅,姜文潔,等. 四種北高叢藍莓提取物抗氧化作用的研究[J]. 食品工業(yè)科技,2014,35(22):119-123.
[9] 李斌,雷月,孟憲軍,等. 藍莓營養(yǎng)保健功能及其活性成分提取技術(shù)研究進展[J]. 食品與機械,2015(06):251-254.
[10] HUANG W, ZHANG H, LIU W, et al. Survey of antioxidant capacity and phenolic composition of blueberry, blackberry, and strawberry in Nanjing[J]. Journal of Zhejiang University Science B, 2012, 13(2): 94-102.
[11] RODRIGUEZ-MATEOS A, CIFUENTES-GOMEZ T, TABATABAEE S, et al. Procyanidin, anthocyanin, and chlorogenic acid contents of highbush and lowbush blueberries[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2012, 60(23): 5 772-5 778.
[12] 張楊,謝筆鈞,孫智達. 藍莓酒渣、果、酒中花色苷成分鑒定及酒渣與果中花色苷抗氧化活性比較[J]. 食品科學,2016,37(2): 165-171.
[13] 謝國芳,王瑞,周笑犁,等. 藍莓花色苷穩(wěn)定性研究進展[J]. 北方園藝, 2016(7): 190-194.
[14] 程佑聲,王鴻飛,許鳳,等. 藍莓皮渣花色苷提取及抗氧化活性的研究[J]. 果樹學報,2015,32(4):696-704.
[15] 曹雪丹, 方修貴, 趙凱, 等. 藍莓花色苷研究進展[J]. 中國農(nóng)學通報, 2012, 28(15): 221-226.
[16] 劉翼翔,吳永沛,劉光明,等. 野生藍莓酚酸成分鑒定及其清除細胞內(nèi)自由基活性研究[J]. 中國食品學報,2015,12:173-179.
[17] PERTUZATTI B P, T BARCIA M, C JACQUES A, et al. Quantification of several bioactive compounds and antioxidant activities of six cultivars of Brazilian blueberry[J]. The Natural Products Journal, 2012, 2(3): 188-195.
[18] DASTMALCHI K, FLORES G, PETROVA V,et al. Edible neotropical blueberries: antioxidant and compositional fingerprint analysis[J]. Journal of Agricultural and food chemistry, 2011, 59(7): 3 020-3 026.
[19] BUCKOW R, KASTELL A, TEREFE N, et al. Pressure and temperature effects on degradation kinetics and storage stability of total anthocyanins in blueberry juice[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2010, 58(58): 10 076-10 084.
[20] 白鴿,郭玉蓉,陳磊,等. 蘋果著色與冷藏期間多酚及相關酶活性的關系[J].食品科學,2015,36(6):246-250.
[23] TODOROVIC V, REDOVNIKOVIC I R, TODOROVIC Z, et al. Polyphenols, methylxanthines, and antioxidant capacity of chocolates produced in Serbia[J]. Journal of Food Composition and Analysis, 2015,41: 137-143.
[24] TAUCHEN J, MARSIK P, KVASNICOVA M, et al. In vitro antioxidant activity and phenolic composition of Georgian, Central and West European wines[J]. Journal of Food Composition and Analysis, 2015,41:113-121.
[25] OLIVEIRA I, BAPTISTA P, MALHEIRO R, et al. Influence of strawberry tree (ArbutusunedoL.) fruit ripening stage on chemical composition and antioxidant activity[J]. Food Research International, 2011, 44(5): 1 401-1 407.
[26] SCHAICH K M, TIAN X, XIE J. Hurdles and pitfalls in measuring antioxidant efficacy: A critical evaluation of ABTS, DPPH, and ORAC assays[J]. Journal of Functional Foods, 2015, 14: 111-125.
Evaluation of bioactive compounds and antioxidant activity of major blueberry cultivars in Guizhou province
XIE Guo-fang*, WANG Xin-hua, WANG Rui, JIN Chuan-xu,ZHOU Xiao-li, LIU Zhi-gang, ZHENG Xiong
(Food and Pharmaceutical Engineering Institute, Guizhou Engineering Research Center for Fruit Processing,Guiyang University, Guiyang 550005, China)
To investigate the phenolics compounds and antioxidant activity of major blueberry cultivars in Guizhou province, the phenolics compounds, polyphenols, total flavonoids, anthocyanin, and in vitro antioxidant activity of four cultivars in Guizhou province were analyzed using Pearson's correlation analysis. The results indicated that the major phenolic compounds, including gallic acid, epcatechin, rutin,p-coumaric acid, quercetin, catechin, ellagic acid, chlorogenic acid and ferulic acid in the tested blueberry fruits were the highest. The contents of phenolic compounds were significantly different in the 4 cultivars (P<0.05), the gallic acid, ferulic acid and total flavonoids of Powderblue was the highest, the chlorogenic acid, ellagic acid and rutin of Gardenblue was the highest, the quercetin and anthocyanin of Baldwin were the highest, the catechin, epcatechin,p-coumaric acid and polyphenols of Bright Well was the highest. Antioxidant activities of four cultivars were significantly different (P<0.05), and the highest antioxidant activity of Bright Well was the highest. The difference of phenolic compounds on the antioxidant activity was significant (P<0.05). Chlorogenic acid has a strong contribution to FRAP value. The ferulic acid, total polyphenols and total flavonoids has a strong contribution to TRAP value; the gallic acid has a strong contribution to DPPH value, the anthocyanin has a strong contribution to ABTS value. The antioxidant potential composite index (ACI) showed a significant positive correlation with the content of epcatechin andp-coumaric acid (P<0.01).
blueberry; bioactive composition; antioxidant activity; correlation analysis
10.13995/j.cnki.11-1802/ts.201702030
碩士,副教授(本文通訊作者,E-mail:xieguofang616@sina.com)。
貴州省教育廳自然科學研究重點項目(黔教合KY字[2014]276);國家級大學生創(chuàng)新創(chuàng)業(yè)訓練計劃項目(201510976029);貴州省科技廳—貴陽市科技局—貴陽學院聯(lián)合基金(黔科合LH字[2014]7179號)
2016-06-09,改回日期:2016-07-04