鄧嵐,張翔宇,曾秀麗,張珊珊,王文華,趙凡,劉光立*
(1.西藏自治區農牧科學院蔬菜研究所,西藏拉薩850032;2.四川農業大學風景園林學院,成都溫江611130)
黃牡丹種子浸提液對白菜種子萌發及幼苗抗氧化酶活性的影響
鄧嵐1,張翔宇2,曾秀麗1,張珊珊1,王文華1,趙凡1,劉光立2*
(1.西藏自治區農牧科學院蔬菜研究所,西藏拉薩850032;2.四川農業大學風景園林學院,成都溫江611130)
研究黃牡丹種子浸提液對白菜(Brassica pekinensis)種子萌發、幼苗生長及幾種主要抗氧化酶活性的影響,初步探討黃牡丹種子休眠的原因。以野生黃牡丹(Paeonia delavay Franch.var.lutea)種子為實驗材料,提取種皮、胚乳水浸提物。黃牡丹種皮、胚乳中均含有抑制白菜種子萌發及幼苗生長的物質,且對白菜種子萌發及幼苗生長的抑制作用隨著該物質濃度的增加而更為顯著;相比種皮浸提液,相同濃度條件下的胚乳浸提液對白菜種子萌發及幼苗生長的抑制作用更加明顯。幾種主要抗氧化酶中,胚乳浸提液能夠直接抑制白菜幼苗POD和CAT酶活性,間接影響SOD酶活性。黃牡丹種子浸提物可能通過影響白菜種子抗氧化酶活性從而影響其幼苗的正常生長,黃牡丹種子內存在抑制物質,從而影響黃牡丹種子的休眠。
黃牡丹;白菜;抗氧化酶;休眠;抑制作用
黃牡丹(Paeonia delavay Franch.var.lutea)為芍藥科(Paeoniaceae)芍藥屬(Paeonia)的亞灌木,是我國西南地區特有的野生牡丹,也是國家三級保護植物,屬于瀕危種[1]。該種的分布區域狹窄,主要分布于云南中部、西南部海拔為2500~3500 m的山地林緣,以及西藏東南部和四川西南部[2]。特有的黃色系花為豐富牡丹的花色提供了難得的基因資源,同時也是芍藥屬中珍貴的育種材料。通過實驗,證明黃牡丹種子休眠的原因是否是因為存在內源物,為進一步研究黃牡丹休眠與萌發特性的研究提供依據,進而為黃牡丹的引種馴化提供基本理論依據。黃牡丹以多種形式的營養繁殖為主,種子繁殖為輔,即為兼性營養繁殖[3]。黃牡丹種群的個體數量小,局限性較大,一般只有幾十株至上百株。現今,因為半隱蔽性環境遭受嚴重破壞,黃牡丹的生態位變窄甚至消失,使其瀕危[4]。此外,成熟黃牡丹種子的蟲食率高達80%以上,受蟲害非常嚴重[5]。關于黃牡丹的研究,目前主要集中在系統分類、染色體、孢粉學等有限的鄰域,對黃牡丹種子生理學的研究罕見。關于黃牡丹種子休眠與萌發的研究,均是研究黃牡丹生境情況,缺乏對其休眠或萌發的原因做進一步的研究。種皮障礙、種胚發育狀況和內源萌發抑制物為植物種子休眠的3種主要原因[6]。在紫斑牡丹(P.rockii)的研究實驗中發現,其種子所含有的特殊化學物質影響種子的后熟和發芽,抑制胚根和子葉的生長[7]。根據白菜發芽率是否受到抑制,白菜幼苗抗逆性的強弱,證明大花黃牡丹是否存在內源抑制物,判斷內源抑制物主要存在的位置,以期為進一步研究黃牡丹休眠與萌發特性提供依據。
1.1 材料
供試黃牡丹種子采摘自西藏東南部林芝地區,于2015年9月初,果實黃熟時期晴天采集,采后陰干脫粒,種子去除雜質后在低溫避光儲存備用。市售的白菜(Brassica pekinensis)種子作為生物活性測定的材料。
1.2 種子浸提液的制備
選取外形飽滿有光澤的黃牡丹種子,人工剝離種皮和胚乳,在40℃條件下烘干至恒重。粉碎后各稱取10.0 g的種皮和胚乳分別放入100 mL三角瓶中,加入約80 mL去離子水,將3層保鮮薄膜封口的混合液置于20℃無光培養箱內浸提24 h,收集的浸提液在4000 r·min-1離心10 min,過濾得到上清液,將上清液定容至100 mL,即為0.1 g·mL-1的粗提液,置于4℃條件下保存備用。
1.3 種子內源抑制物質活性測定

圖1 黃牡丹種子浸提液對白菜種子發芽率的影響Fig.1 Effects of crude extracts of Paeonia decomposita seeds on germination rate of Brassica pekinensis
將上述粗提液用去離子水配制成濃度依次為0、0.025、0.050、0.075和0.100 g·mL-1的培養液。將不同濃度的培養液各吸取7 mL,分別加入9 cm培養皿內,每個培養皿均鋪有2層濾紙。每皿放置50粒白菜種子,每個濃度設5組平行實驗,置25℃光照培養箱內,以胚根突破種皮為發芽標志,觀察白菜種子萌發及幼根生長情況[8]。分別于24 h統計發芽率,48 h測定胚根長度,72 h測定下胚軸長度。
1.4 白菜幼苗保護酶活性的測定
用去離子水將胚乳粗提液配制成濃度依次為0、0.01、0.02、0.04和0.08 g·mL-1的培養液。按1.3中的方法將白菜種子在不同濃度的培養液中培養,分別在24、48和72 h參照參考文獻[9]方法分別測定白菜幼苗的超氧化物歧化酶(SOD)、過氧化物酶(POD)和過氧化氫酶(CAT)活性。
數據的統計分析采用Excel軟件和SPSS 13數據處理系統。
2.1 黃牡丹種子浸提液對白菜種子萌發和幼苗生長的影響
添加種皮浸提液后,各處理的白菜種子發芽率均略微降低,但差異不顯著;添加胚乳浸提液后,白菜種子的發芽率均顯著降低,并且隨著胚乳浸提液濃度的增加,白菜種子發芽率受抑制效果更加明顯。相同濃度條件下,胚乳浸提液對白菜種子萌發的抑制作用高于種皮浸提液(圖1)。
隨著黃牡丹種皮和胚乳浸提物濃度的增加,白菜幼苗胚根長度均呈下降趨勢;相同濃度條件下的胚乳浸提液對白菜幼苗胚根伸長的抑制作用顯著高于種皮浸提液(圖2)。
添加黃牡丹種皮浸提液后,白菜幼苗的下胚軸長度隨浸提物濃度的升高總體呈下降趨勢;添加胚乳浸提液后,白菜幼苗的下胚軸長度隨浸提物濃度的升高而降低;在相同濃度條件下,種皮提取物對白菜幼苗生長的影響顯著低于胚乳浸提物。當胚乳浸提物濃度為0.075和0.100 g·mL-1時,部分白菜幼苗根部褐化,不能正常生長(圖3)。

圖2 黃牡丹種子浸提液對白菜幼苗胚根生長的影響Fig.2 Effectsof crudeextractsof Paeonia decomposita seedson radicle of Brassica pekinensis

圖3 黃牡丹種子浸提液對白菜幼苗下胚軸生長的影響Fig.3 Effects of crude extracts of Paeonia decomposita seeds on hypocotyls of Brassica pekinensis
2.2 黃牡丹胚乳浸提液對白菜幼苗幾種抗氧化酶活性的影響
如圖4所示,添加黃牡丹胚乳浸提液的白菜幼苗SOD活性與對照相比,除濃度0.01 g·mL-1處理外,隨著時間的延長,呈現出先升高后降低的趨勢。同時隨著浸提物濃度的升高,SOD活性也呈現出先升高后降低的趨勢,在浸提物濃度0.04 g·mL-1時達到最高,而在0.08 g·mL-1時又有所下降。
白菜幼苗POD、CAT活性表現出與SOD活性不同的變化趨勢(圖5~6)。在不同的測定時間內,隨著浸提物濃度的升高,CAT活性與POD活性均顯著降低,并在0.08 g·mL-1時酶活性降至最低。盡管不同測定時間CAT、POD活性也有變化,但1、2和3 d測定的2種酶變化趨勢基本是一致的。

圖4 黃牡丹種子浸提液對白菜幼苗中SOD活性的影響Fig.4 Effects of crude extracts of Paeonia decomposita seeds on activities of superoxide dismutaseof Brassica pekinensis

圖5 黃牡丹種子浸提液對白菜幼苗中POD活性的影響Fig.5 Effects of crude extracts of Paeonia decomposita seeds on activities of peroxidase of Brassica pekinensis
逆境因子造成植物體內活性氧代謝失調,進而傷害植物。高等作物化感作用的實驗表明[10],多酚類化合物通過抑制受體植物SOD和CAT酶活性,使受體植物體內活性氧增多,進而使其膜脂過氧化,破壞膜的結構。在連續種植4年的栽培牡丹鳳丹(P.ostii T.)的根際中,發現以阿魏酸、肉桂酸、香草醛、香豆素和丹皮酚為主的酚酸類物質[11-12]。因此,與宋會興等關于四川牡丹種子的研究結果[13]類似,可以推測,影響受體白菜幼苗中抗氧化酶中SOD、POD、CAT活性的是黃牡丹種子胚乳浸提液中含有多酚類化合物。
本實驗中,隨胚乳浸提物濃度的增加,白菜幼苗的POD活性和CAT活性降低,且不同時間測定的2種酶變化趨勢基本一致。表明胚乳浸提物能夠直接抑制白菜幼苗CAT和POD酶活性,使植物的抗逆性,尤其是防止植物細胞衰老的能力降低,這與Roshchina等[10]的研究結果是一致的。隨胚乳浸提物濃度的增加,SOD活性總體表現為先升高后降低的趨勢,表明胚乳浸提物間接抑制白菜幼苗SOD酶活性,這與宋會興等[13]的研究結果是一致的,測SOD酶活性的時間不同,使得SOD酶活性的轉折點不同,但整體趨勢一致。可能由于胚乳浸提物抑制了白菜幼苗中CAT和POD酶活性,導致受體植物體內活性氧增多,植物的應激機制使得SOD酶活性增加[14]。但隨著受體植物的受害逐漸加重,SOD酶活性又降低[15-17]。

圖6 黃牡丹種子浸提液對白菜幼苗中CAT活性的影響Fig.6 Effects of crude extracts of Paeonia decomposita seeds on activities of catelaseof Brassica pekinensis
長期的系統演化過程,牡丹組植物種子大多具有的休眠萌發特性包括上胚軸及下胚軸休眠,且上胚軸休眠更為突出[18-19]。本研究結果表明,黃牡丹種子內存在的抑制種子萌發及幼苗生長的物質可以影響幼苗CAT、POD、SOD酶活性的物質,即內源抑制物。且這種物質主要存在于種子胚乳中。這可能也是黃牡丹種子休眠的重要原因。但未對于物質的性質及黃牡丹種子萌發的抑制詳細機理進一步研究。
[1]王蓮英,袁濤.牡丹花[J].北京:中國建筑工業出版社,2002.
[2]李嘉玨.中國牡丹與芍藥[M].北京:中國林業出版社,1999.
[3]成仿云,李嘉玨,陳德忠.中國野生牡丹自然繁衍特性研究[J].園藝學報,1997,24(2):180-184.
[4]王志芳,王雁,岳樺.珍稀資源-黃牡丹[J].中國城市林業,2007,5(2):59-60.
[5]Hong D Y,Pan K Y,Yu H.Taxonomy of the Paeonia delavayi complex(Paeoniaceae)[J].Ann Missouri Bot Gard,1998,85:554-564.
[6]卡恩.種子休眠和萌發的生理生化[M].北京:北京農業出版社,1989:37-40.
[7]周仁超,姚崇懷,潘俊,等.紫斑牡丹種子休眠和萌發特性初步研究[J].湖北農業科學,2002(1):59-60.
[8]吳嘯業.紅豆杉種子抑制物質的初步研究[J].植物生理學通訊(4),1985:23-26.
[9]熊慶娥.植物生理學實驗教程[M].成都:四川科學技術出版社:2003:68,31,55,127.
[10]Roshchina V V,Roshchina V D.The excretory function of higher plant[M].New York:Springerling,1993:213-215.
[11]覃逸明,聶劉旺,黃雨清,等.鳳丹自毒物質的檢測及其作用機制[J].生態學報,2009,29(3):1153-1161.
[12]楊勇,劉光立,宋會興,等.四川牡丹胚乳浸提液對油菜種子萌發與幼苗生長的影響[J].西南農業學報,2013,26(1):89-92.
[13]宋會興,劉光立,高素萍,等.四川牡丹種子浸提液內源抑制物活性初探[J].園藝學報,2012,39(2):376-380.
[14]Politycka B.Peroxidase activity and lipid peroxidation in roots of cucumber seedlings influenced by derivativesof cinnamic and benzoic acids[J].Acta Physiologiae Plantarum,1996,18:365-370.
[15]Shalata A,Tal M.The effects of salt stress on lipid peroxidation and antioxidants in the leaf of the cultivated tomato and itswild salttolerant relative Lycopersicon pennellii[J].Plant Physiology,1998,104:169-174.
[16]Deltoro V I,Gimeno C,CalatayudA,et al.Effects of SO2fumigations on photosynthetic CO2gas exchange,chlorophyll a fluorescence emission and antioxidant enzymes in lichens Evernia prunastri and Ramalina farinacea[J].Plant Physiology,1999,105:648-654.
[17]Scandalios L G.Oxygen stress and superoxide dismutase[J].Plant Physiology,1993,101:7-12.
[18]劉心民,程逸遠,張霧,等.牡丹種子萌發特性與播種繁殖技術研究進展[J].河南林業科技,2005,12(4):38-40.
[19]曾端香,尹偉倫,趙孝慶,等.牡丹繁殖技術[J].北京林業大學學報,2000,22(3):90-95.
(責任編輯 李山云)
Effects of Crude Extracts of Paeonia delavay Seeds on Germ ination and Activities of Antioxidant Enzyme of Brassica pekinensis
DENG Lan1,ZHANG Xiang-yu2,ZENG Xiu-li1,ZHANG Shan-shan1,WANGWen-hua1,ZHAO Fan1,LIU Guang-li2*
(1.Institute of Vegetables,Tibet Academy of Agricultural and Animal Husbandry Sciences,Tibet Lhasa 850032,China;2.School of Landscape Architecture,Sichuan Agricultural University,Sichuan Chengdu 611130,China)
To understand the cause of seed dormancy of Paeonia delavay Franch.var.lutea,the effectsofwater crude extractsof the seed coat and endosperm of P.delavay on the seed germination,seedling growth and antioxidant enzymes of Brassica pekinensis were examined in this paper.With wild P.delavay seed as the experimentalmaterial,the experiment extracted water crude extracts of the seed coat and endosperm.The results showed that the seed,especially the endosperm tissue of P.delavay contained substances that strongly suppressed seed germination.The crude extract of endosperm of P.delavay,which significantly reduced the activities of peroxidase and catalase,and indirectly affected the activity of superoxide dismutase,showed amore significant inhibition than that of seed coatat the same dose.Itwas concluded that the presence of inhibitory substances is one of important causes of seed dormancy in P.delavay.
Paeonia delavay;Franch.var.lutea;Brassica pekinensis;Antioxidant enzyme;Dormancy;Inhibiting effect
S685.11
A
1001-4829(2017)2-0305-04
10.16213/j.cnki.scjas.2017.2.011
2016-04-05
西藏自治區自然科學基金“西藏牡丹種子萌發最適條件的研究”(13-15)
鄧嵐(1973-),女,江西南昌人,主要從事牡丹、桃、藍莓育種工作,E-mail:denglan1110@163.com,Tel: 13549096082,*為通訊作者:劉光立,E-mail:liuguangli@sicau.edu.cn。