謝志勤 謝芝勛 鄧顯文 謝麗基 范晴 羅思思 黃莉 黃嬌玲 張艷芳 王盛 劉加波 龐耀珊 梁亮 馮務玲
摘要:【目的】建立一次性可同時擴增鑒別雞新城疫病毒(NDV)和禽肺炎病毒(APV)的二重RT-PCR,為有效防控雞新城疫和禽肺炎病毒病提供技術支持?!痉椒ā扛鶕礼enBank已發表NDV的F基因序列(GenBank登錄號JX840454)和APV的F基因序列(GeneBank登錄號AF187154)分別設計2對特異性引物,應用這2對引物建立可同時檢測鑒別NDV和APV的二重RT-PCR,對擴增條件進行優化,并通過特異性試驗、敏感性試驗和臨床樣品檢測等驗證其實用性?!窘Y果】優化后的二重RT-PCR可特異性擴增出參試NDV毒株(LaSota株、F48E9株、I株)及APV/MN-10毒株的目的條帶,其大小分別為247和424 bp,而其他對照參試毒株在247和424 bp處均無特異條帶出現。二重RT-PCR針對NDV和APV的最低檢出限均為10 pg的RNA。應用建立的二重RT-PCR對132份從廣西采集的病雞樣品進行檢測,結果得到NDV陽性樣品26份、APV陽性樣品2份,與血清學方法的鑒定結果一致。隨機選取的2份NDV陽性PCR產物與NDV(GenBank登錄號JX840454)的F基因序列一致,同源性達100%;2份APV陽性PCR產物與APV(GenBank登錄號AF187154)的F基因序列也完全一致,同源性達100%。【結論】針對NDV和APV建立的二重RT-PCR具有特異性好、靈敏度高、簡便快速的特點,可用于臨床快速鑒別診斷,為有效防控雞新城疫和禽肺炎病毒病提供了技術支持。
關鍵詞: 雞新城疫病毒(NDV);禽肺炎病毒(APV);二重RT-PCR;檢測
中圖分類號: S858.31 文獻標志碼:A 文章編號:2095-1191(2017)03-0546-06
0 引言
【研究意義】雞新城疫病毒(Newcaslte disease virus,NDV)和禽肺炎病毒(Avian pneumovirus,APV)是危害養雞業的兩種主要病毒,二者均為副粘病毒科(Paramyxoviridae)成員,其中,NDV隸屬于副粘病毒屬(Paramyxovirus),而APV隸屬于禽偏肺炎病毒屬(Avian pneumovira)(Pringle,1998)。NDV全基因長15198 bp,基因組為不分節段的單股負鏈RNA,共編碼6個基因蛋白,依次為核衣殼蛋白(N)、磷蛋白(P)、基質蛋白(M)、融合蛋白(F)、血凝素—神經氨酸酶(HN)和大蛋白(L)(Huang et al.,2004)。APV全基因長約14000 bp,為負鏈RNA,基因中有8種編碼蛋白,依次為核蛋白(N)、磷蛋白(P)、基質蛋白(M)、融合蛋白(F)、第二基質蛋白(M2)、小疏水蛋白(SH)、糖蛋白(G)和聚合酶蛋白(L)(Naylor et al.,2004;胡海霞等,2012)。這兩種病毒引起的臨床癥狀很相似,均可引起禽類上呼吸道的癥狀,因此根據臨床癥狀很難對二者進行鑒別,需通過實驗室檢測手段進行確診。【前人研究進展】我國對NDV的研究非常重視,建立了很多檢測診斷方法,如傳統的病毒分離鑒定(陳安莉等,2012)和血清學方法等,近年又出現了高通量GeXP檢測方法(羅思思等,2013)。這些方法為準確檢測診斷NDV提供了技術保障,是有效防控雞新城疫發生的前提。針對APV的診斷國外已開展了相關研究,我國起步相對較晚,其診斷方法主要有病毒分離鑒定(Goyal et al.,2000;Cook and Cavanagh,2002)、ELISA(Gulati et al.,2000;Goyal et al.,2003)、RT-PCR(Shin et al.,2000;陳琳等,2012)、Taqman探針熒光定量PCR(謝志勤等,2014a)等。雖然目前實驗室診斷NDV和APV的方法都已成熟,但缺少針對兩種病混合感染的快速鑒別診斷,不利于養雞業的健康發展。二重(或多重)PCR是利用兩對(或多對)引物同時擴增兩個(或多個)模板,能有效彌補常規PCR的不足(范志宇等,2015;秦毅斌等,2016),在禽類疫病鑒別診斷中得到廣泛應用,如吳萍萍等(2010)建立了雞傳染性貧血病毒和禽網狀內皮增生癥病毒二重PCR檢測方法,謝麗基等(2012)建立了鴨I型肝炎病毒、鴨圓環病毒和番鴨細小病毒三重RT-PCR檢測方法,謝志勤等(2016)建立了H9亞型禽流感病毒和APV二重RT-PCR檢測方法,奉彬等(2016)建立了雞細小病毒和禽呼腸病毒二重PCR檢測方法?!颈狙芯壳腥朦c】根據現代養雞業快速發展及防病的需求,尤其針對臨床癥狀相似且難以進行診斷的雞病,應建立快速鑒別的診斷方法,但至今尚無針對NDV和APV二重RT-PCR檢測方法的研究報道?!緮M解決的關鍵問題】通過在NDV和APV兩種病毒各自F基因保守區域設計2對特異引物,建立一次性可同時擴增鑒別二者的二重RT-PCR,為有效防控雞新城疫和禽肺炎病毒病提供技術支持。
1 材料與方法
1. 1 試驗材料
NDV標準毒株(LaSota株、F48E9株、I株)、禽呼腸孤病毒(Reo S1133)和禽大腸桿菌(E. coli O2)購自中國獸醫藥品監察所,NDV分離株(GX/2010和GX/2013)由廣西動物疫病病原生物學與診斷重點實驗室分離鑒定并保存提供,APV(MN-10毒株)由美國濱夕法尼亞大學Lu教授惠贈,雞馬立克氏病毒(MDV)疫苗毒購自南京梅里亞動物保健品公司,禽流感病毒H9(AIV H9)、雞傳染性支氣管炎病毒(IBV Mass 41)、雞傳染性喉氣管炎病毒(北京株,ILTV)、禽腦脊髓炎病毒(AEV Van)和雞毒霉形體(MG S6)均由廣西動物疫病病原生物學與診斷重點實驗室保存提供。SPF雞胚(7~10日齡)是從北京梅里亞種禽有限公司購進SPF種蛋自行孵化獲得。反轉錄酶AMV、RNA抑制劑、dNTPs、隨機引物和2×Premix TaqTM Mix等購自寶生物工程(大連)有限公司,小量質粒提取試劑盒和膠回收純化試劑盒購自美國Omega公司,其他試劑為進口或國產分析純。
1. 2 引物設計與合成
根據GenBank已發表NDV的F基因序列(GenBank登錄號JX840454)和APV的F基因序列(GenBank登錄號AF187154),通過DNASTAR MegAlign對其序列進行比對分析,找出各自F基因的保守序列區間,應用PrimerSelect設計2對特異性引物(表1)。引物序列由寶生物工程(大連)有限公司合成。
1. 3 病毒增殖及處理
1. 3. 1 NDV增殖及處理 NDV標準毒株(LaSota株、F48E9株、I株)用滅菌PBS按1∶1000進行稀釋,然后經雞胚尿囊腔分別接種10日齡SPF雞胚,每胚0.2 mL,收集24~120 h死亡雞胚尿囊液。雞胚尿囊液經8000 r/min離心5 min,收集上清液用于RNA提取或-70 ℃保存備用。
1. 3. 2 APV增殖及處理 參照謝志勤等(2014b)的增殖方法進行操作。
1. 4 樣品處理及RNA提取
取病雞的肺臟、氣管和脾臟等組織,按1∶5加入滅菌PBS進行研磨,研磨后的懸液分裝于1.5 mL離心管中,-70 ℃下反復凍融3次(4 h內),8000 r/min離心5 min,收集上清液用于病毒增殖。病毒增殖后按Xie等(2005)的方法進行總RNA提取,提取的總RNA直接用于反轉錄(RT)或-20 ℃保存備用。
1. 5 RT-PCR擴增條件優化
對RT-PCR反應體系所用的Buffer、dNTPs、Mg2+、Random 9-mer(自由引物)、反轉錄酶AMV、RNA 抑制劑、RNA模板濃度、Taq DNA聚合酶及擴增程序的退火溫度等進行優化,篩選出最佳的反應濃度及擴增條件。
1. 6 特異性及敏感性試驗
以NDV標準毒株(LaSota株、F48E9株、I株)、APV/ MN-10毒株及AIV H9毒株、IBV Mass 41毒株、ILTV(Beijing)毒株、AEV Van毒株、MG S6毒株、Reo S1133毒株、E. coli O2菌株和MDV毒株的RNA或DNA為模板,進行RT-PCR或PCR擴增,檢測二重RT-PCR的特異性。同時,測定NDV LaSota毒株和APV/MN-10毒株的RNA濃度,然后進行10倍梯度稀釋,取100 ng~100 fg共7個稀釋度的RNA(2.0 μL)為模板進行敏感性檢測試驗。
1. 7 臨床樣品檢測
提取132份來自廣西不同地區養雞場病雞肺臟、氣管和脾臟樣品的RNA,應用建立的二重RT-PCR對提取的樣品RNA進行檢測。同時,取相同樣品研磨后以0.2 μm濾膜無菌過濾進行病毒分離,經卵黃囊接種7日齡SPF雞胚或經尿囊腔接種10日齡SPF雞胚,以評價二重RT-PCR對臨床樣品檢測的實用性。
1. 8 序列分析比對驗證
隨機選取NDV和APV各2份PCR檢測陽性樣品產物進行序列測定比對,將回收純化的PCR陽性產物與pMD18-T進行連接,然后轉染大腸桿菌DH5α(TaKaRa公司)。提取轉染質粒的DNA,經雙酶切和PCR鑒定,陽性克隆送至寶生物工程(大連)有限公司測序,并采用DNASTAR對測序結果進行比對分析。
2 結果與分析
2. 1 二重RT-PCR產物檢測結果
將12.0 μL二重RT-PCR產物(含2.0 μL加樣緩沖液)加入預先用TBE(Tris 5.40 g,硼酸2.75 g,0.5 mol/L EDTA 2.0 mL)制備的1.5%瓊脂糖凝膠孔中,以80 V/cm電壓進行凝膠電泳,經Gelred染色后在紫外線下觀察拍照,結果(圖1)顯示,NDV毒株樣品約在240 bp處出現明亮條帶,APV毒株樣品約在420 bp處出現明亮條帶,與預期結果一致。
2. 2 二重RT-PCR擴增條件優化
對二重RT-PCR反應體系各成分配比進行優化篩選,獲得最佳的配比條件為:(1)反轉錄(RT)體系10.0 μL,即5×RT Buffer(含10 μmol/L dNTPs、Mg2+)2.0 μL,50 μmol/L Random 9-mer(自由引物)0.5 μL,反轉錄酶AMV 0.5 μL,RNA抑制劑0.5 μL,NDV LaSota毒株和APV/MN-10毒株的RNA模板各2.0 μL,滅菌的無RNA水2.5 μL。(2)PCR反應體系25.00 μL,即2×Premix TaqTM Mix12.50 μL(含10 μmol/L dNTPs、Mg2+、5 U Ex Taq DNA酶),RT產物2.00 μL,50 pmol/μL的APVF/APVR各0.25 μL,50 pmol/μL的NDVF/NDVR各0.25 μL,滅菌超純水9.50 μL。同時,對不同退火溫度(51、53、55、57、59和61 ℃)進行優化,確定最佳反轉錄程序:42 ℃ 60 min,95 ℃ 5 min;最佳PCR擴增程序:94 ℃預變性5 min;94 ℃ 1 min,55 ℃ 1 min,72 ℃1 min,進行35個循環;72 ℃延伸10 min,4 ℃結束反應。
2. 3 特異性及敏感性試驗結果
參試的NDV LaSota毒株、F48E9毒株和I毒株均擴增出247 bp的特異性條帶,APV/MN-10毒株擴增出424 bp的特異性條帶,而AIV H9毒株、IBV Mass 41毒株、ILTV毒株、AEV Van毒株、MG S6毒株、Reo S1133毒株、E. coli O2菌株和MDV毒株在247和424 bp處均無特異條帶出現(圖1)。以10倍梯度稀釋NDV LaSota毒株和APV/MN-10毒株的RNA為模板進行敏感性試驗,結果發現二重RT-PCR最低能檢測到10 pg的對應RNA模板(圖2)。
2. 4 臨床樣品檢測結果
對132份病雞樣品的RNA進行二重RT-PCR檢測,結果顯示有26份樣品呈NDV陽性,2份樣品呈APV陽性(圖3),其中1份樣品為NDV和APV混合感染,其余的104份樣品均未檢測出NDV或APV的特異條帶。樣品病毒分離后經血清學方法鑒定,發現有NDV陽性26份、APV陽性2份,與二重RT-PCR檢測結果一致。
2. 5 序列分析結果
隨機選取NDV和APV各2份PCR檢測陽性產物進行序列測定,利用DNASTAR進行比對分析,結果表明,2份NDV陽性PCR產物與NDV(GenBank登錄號JX840454)的F基因序列一致,同源性達100%;2份APV陽性PCR產物與APV(GenBank登錄號AF187154)的F基因序列也完全一致,同源性達100%。
3 討論
疫病防控一直是現代養雞業的首要任務。除禽流感外,雞新城疫也是一種必須防控的傳染病,雖然我國對雞新城疫已采取各種預防措施,但每年因該病引起的損失仍然十分巨大。相對于禽流感、雞新城疫病等重大疫病,APV引起的疾病尚未引起人們足夠重視。APV的最早報道是引起火雞呼吸道疾病,隨后在歐洲流行,死亡率高達25%~40%(Cook et al.,2000)。我國最早報道該病是在1998年(沈瑞忠等,1999),郭龍宗和曲立新(2009)進行血清學調查,發現我國雞群中APV感染很普遍,感染率高的地區可達100%。APV和NDV引起的臨床癥狀很相似,主要表現為上呼吸道癥狀,尤以噴嚏、眼結膜潮紅、淚腺腫、產蛋下降、孵化率低及神經癥狀為主。因此,根據臨床癥狀很難對二者進行鑒別,需通過實驗室檢測手段進行確診,但目前尚無可同時檢測鑒別APV和NDV的方法。
NDV和APV的融合蛋白(F)是非常重要的結構蛋白,其功能是參與細胞的吸附過程。雖然二者的融合蛋白(F)功能相同,但其蛋白序列結構并不一致,具有種屬特異性,因此該蛋白常被用于檢測鑒別病毒特征。本研究利用各自融合蛋白(F)的種屬特異性,在其基因保守序列區域分別設計擴增NDV和APV的2對特異性引物,建立了一次擴增鑒別二者的二重RT-PCR檢測方法。特異性試驗結果表明,參試的NDV LaSota毒株、F48E9毒株和I毒株均能擴增出247 bp的特異性條帶,APV/MN-10毒株擴增出424 bp的特異性條帶,而對照的AIV H9毒株、IBV Mass 41毒株、ILTV毒株、AEV Van毒株、MG S6毒株、Reo S1133毒株、E. coli O2菌株和MDV毒株在247和424 bp處均無特異條帶出現,說明本研究建立的NDV和APV二重RT-PCR具有特異性,其最低檢出限均為10 pg的RNA,表明其具有良好的敏感性。
為進一步驗證本研究建立的二重RT-PCR,采用該方法對臨床樣品進行檢測,結果發現有NDV陽性26份,陽性檢測率19.69%(26/132),APV陽性2份,陽性檢測率1.51%(2/132)。此外,通過對2份NDV陽性樣品和2份APV陽性樣品進行序列測定比對,證實所擴增的各自F基因序列片段正確,說明建立的二重RT-PCR具有很高的實用性,可用于臨床檢測,為快速鑒別檢測NDV、APV及有效防控雞新城疫和禽肺炎病毒病提供技術支持。
4 結論
針對NDV和APV建立的二重RT-PCR具有特異性好、靈敏度高、簡便快速的特點,可用于臨床快速鑒別診斷,為有效防控雞新城疫和禽肺炎病毒病提供了技術支持。
參考文獻:
陳安莉,謝芝勛,劉加波,龐耀珊,鄧顯文,謝志勤,謝麗基,范晴. 2012. 白鷺源新城疫病毒的分離與鑒定[J]. 動物醫學進展,33(7):119-121.
Chen A L,Xie Z X,Liu J B,Pang Y S,Deng X W,Xie Z Q,Xie L J,Fan Q. 2012. Isolation and identification of newcastle disease virus from egret[J]. Progress in Veterinary Medicine,33(7):119-121.
陳琳,刁有祥,鄒金峰. 2012. 禽偏肺病毒RT-PCR檢測方法的建立及應用[J]. 中國獸醫學報,32(7):971-974.
Chen L,Diao Y X,Zou J F. 2012. Establishment and application of a RT-PCR method for detection of avian metapneumovirus[J]. Chinese Journal of Veterinary Science,32(7):971-974.
范志宇,魏后軍,胡波,宋艷華,王芳,薛家賓,徐為中,蘇國清. 2015. 兔多殺性巴氏桿菌和支氣管敗血波氏桿菌復合PCR方法的建立及臨床應用[J]. 江蘇農業學報,31(2):376-381.
Fan Z Y,Wei H J,Hu B,Song Y H,Wang F,Xue J B,Xu W Z,Su G Q. 2015. Development and clinical application of multiple PCR assay for detection of Pasteurella multocida and Bordetella bronchiseptica infections in rabbits[J]. Jiangsu Journal of Agricultural Sciences,31(2):376-381.
奉彬,謝芝勛,鄧顯文,張艷芳,黃嬌玲,王盛,范晴,謝志勤,黃莉,謝麗基,曾婷婷,羅思思,劉加波. 2016. 雞細小病毒與禽呼腸病毒二重PCR檢測方法的建立[J]. 動物醫學進展,37(11):14-18.
Feng B,Xie Z X,Deng X W,Zhang Y F,Huang J L,Wang S,Fan Q,Xie Z Q,Huang L,Xie L J,Zeng T T,Luo S S,Liu J B. 2016. Development of a duplex PCR assay for detection of chicken parvovirus and avian reovirus[J]. Progress in Veterinary Medicine,37(11):14-18.
郭龍宗,曲立新. 2009. 種雞禽肺病毒感染的血清學調查[J]. 中國畜牧獸醫,36(4):149-150.
Guo L Z,Qu L X. 2009. Serological investigation of avian pneumovirus in breeding chicken[J]. China Animal Husbandry & Veterinary Medicine,36(4):149-150.
胡海霞,趙偉,于慶忠. 2012. 禽偏肺病毒分子生物學及基因工程疫苗研究進展[J]. 中國家禽,34(12):1-5.
Hu H X,Zhao W,Yu Q Z. 2012. Advances in molecular biology and genetic engineering vaccine against avian metapneumovirus[J]. China Poultry,34(12):1-5.
羅思思,謝芝勛,劉加波,龐耀珊,鄧顯文,謝志勤,謝麗基,范晴. 2013. 九種雞呼吸道病病原體GeXP檢測方法的建立[J]. 中國獸醫科學,43(10):1040-1046.
Luo S S,Xie Z X,Liu J B,Pang Y S,Deng X W,Xie Z Q,Xie L J,Fan Q. 2013. Establishment of a GeXP assay for the differentiation of nine chicken respiratory pathogens[J]. Chinese Veterinary Science,43(10):1040-1046.
秦毅斌,盧冰霞,段群棚,何穎,李斌,梁家幸,蘇乾蓮,周英寧,蔣冬福,盧敬專,趙武. 2016. 豬流行性腹瀉病毒變異毒株、經典毒株及弱毒疫苗株多重RT-PCR鑒別檢測方法的建立及應用[J]. 西南農業學報,29(11):2746-2751.
Qin Y B,Lu B X,Duan Q P,He Y,Li B,Liang J X,Su Q L,Zhou Y N,Jiang D F,Lu J Z,Zhao W. 2016. Development and application of multiplex RT-PCR method for differentia-
tion of variant,classical and attenuated vaccine strains of porcine epidemic diarrhea viruses[J]. Southwest China Journal of Agricultural Sciences,29(11):2746-2751.
沈瑞忠,曲立新,于康震,李建偉,張建林,谷守林,徐宜為,唐桂運,Al Saint-Gerant. 1999. 禽肺病毒的分離鑒定[J]. 中國預防獸醫學報,21(1):76-77.
Shen R Z,Qu L X,Yu K Z,Li J W,Zhang J L,Gu S L,Xu Y W,Tang G Y,Al Saint-Gerant. 1999. Isolation and characterization of an avian pneumovirus from chickens in China[J]. Chinese Journal of Preventive Veterinary Medicine,21(1):76-77.
吳萍萍,張小飛,潘玲,胡來根,尹秀鳳,毛火云. 2010. 雞傳染性貧血病毒與禽網狀內皮增生癥病毒二重PCR檢測方法的建立[J]. 中國畜牧獸醫,37(4):182-184.
Wu P P,Zhang X F,Pan L,Hu L G,Yin X F,Mao H Y. 2010. Establishment of a double PCR assay for detection of chi-
cken anaemia virus and reticuloendotheliosis virus[J]. China Animal Husbandry & Veterinary Medicine,37(4):182-184.
謝麗基,謝芝勛,劉加波,龐耀珊,鄧顯文,謝志勤,范晴. 2012. 鴨I型肝炎病毒、鴨圓環病毒和番鴨細小病毒三重RT-PCR檢測方法的建立[J]. 西北農業學報,21(11):29-33.
Xie L J,Xie Z X,Liu J B,Pang Y S,Deng X W,Xie Z Q,Fan Q. 2012. Development of a multiplex RT-PCR assay for detection of duck hepatitis virus type I,duck circovirus and muscovy duck parvovirus[J]. Acta Agriculturae Boreali-Occidentalis Sinica,21(11):29-33.
謝志勤,謝芝勛,范晴,鄧顯文,謝麗基,羅思思,黃莉,黃嬌玲,張艷芳,王盛,張民秀,奉彬,劉加波,龐耀珊. 2016. H9亞型禽流感病毒和禽肺病毒二重RT-PCR檢測方法的建立[J]. 動物醫學進展,37(12):7-12.
Xie Z Q,Xie Z X,Fan Q,Deng X W,Xie L J,Luo S S,Huang L,Huang J L,Zhang Y F,Wang S,Zhang M X,Feng B,Liu J B,Pang Y S. 2016. Development of a duplex RT-PCR for detecting avian influenza H9 subtype and avian pneumovirus[J]. Progress in Veterinary Medicine,37(12):7-12.
謝志勤,謝芝勛,劉加波,龐耀珊,鄧顯文,謝麗基,范晴,羅思思,曾婷婷,黃嬌玲. 2014a. Taqman探針熒光定量RT-PCR檢測禽肺炎病毒方法的建立[J]. 中國家禽,36(19):14-19.
Xie Z Q,Xie Z X,Liu J B,Pang Y S,Deng X W,Xie L J,Fan Q,Luo S S,Zeng T T,Huang J L. 2014a. Development of a real-time RT-PCR assay with probe labeled Taqman for the detection of avian pneumovirus in chickens[J]. China Poultry,36(19):14-19.
謝志勤,謝芝勛,劉加波,龐耀珊,鄧顯文,謝麗基,范晴,羅思思. 2014b. 禽肺炎病毒實時熒光定量RT-PCR檢測方法的建立[J]. 動物醫學進展,35(10):1-6.
Xie Z Q,Xie Z X,Liu J B,Pang Y S,Deng X W,Xie L J,Fan Q,Luo S S. 2014b. Development of a SYBR Green I real-time PCR assay for detection of avian pneumovirus in chickens[J]. Progress in Veterinary Medicine,35(10):1-6.
Cook J K,Cavanagh D. 2002. Detection and differentiation of avian pneumoviruses(metpneumovirus)[J]. Avian Pathology,31(2):117-132.
Cook J K,Chesher J,Orthel F,Woods M A,Orbell S J,Baxendale W,Huggins M B. 2000. Avian pneumovirus infection of laying hens:Experimental studies[J]. Avian Pathology,29(6):545-556.
Goyal S M,Chiang S J,Dar A M,Nagaraja K V,Shaw D P,Halvorson D A,Kapur V. 2000. Isolation of avian pneumovirus from an outbreak of respiratory illness in Minnesota turkeys[J]. Journal of Veterinary Diagnostic Investigation,12(2):166-168.
Goyal S M,Lauer D,Friendshuh K,Halvorson D A. 2003. Seroprevalence of avian pneumovirus in Minnesota turkeys[J].Avian Disease,47(3):700-706.
Gulati B R,Cameron K T,Seal B S,Goyal S M,Halvorson D A,Nienga M K. 2000. Development of a highly sensitive and specific enzyme-linked immunosorbent assay based on recombinant matrix protein for detection of avian pneumovirus antibodies[J]. Journalof Clinical Microbiology,38(11):4010-4014.
Huang Y,Wan H Q,Liu H Q,Wu Y T,Liu X F. 2004. Genomic sequence of an isolate of Newcastle disease virus isolated from an outbreak in geese:A novel six nucleotide insertion in the non-coding region of the nucleoprotein gene. Brief report[J]. Archives of Virology,149(7):1445-1457.
Naylor C J,Brown P A,Edworthy N,Ling R,Lones R C,Savage C E,Easton A J. 2004. Development of a reverse-genetics system for avian pneumovirus demonstrates that the small hydrophobic(SH) and attachment(G) genes are not essential for virusviability[J]. The Journalof General Virology,85(11):3219-3227.
Pringle C R. 1998. Virus taxomy-Sam Diego 1998[J]. Archives of Virology,143(7):1449-1459.
Shin H J,Rajashekara G,Jirjis F F,Shaw D P,Goyal S W,Halvorson D A,Nagaraja K V. 2000. Specific detection of avian pneumovirus(APV) US isolates by RT-PCR[J]. Archives of Virology,145(6):1239-1246.
Xie Z Q,Khan M I,Girshick T,Xie Z X. 2005. Reverse transcriptase-polymerase chain reaction to detect avian ence-
phalomyelitis virus[J]. Avian Diseases,49(2):227-230.
(責任編輯 蘭宗寶)