隋博文李明虎翟平平李明爽王 浩王 達李 成
(1.黑龍江中醫藥大學附屬第一醫院,黑龍江 哈爾濱 150040;2.黑龍江中醫藥大學,黑龍江哈爾濱 150040;3.黑龍江省中醫研究院,黑龍江 哈爾濱 150040)
·研究報告·
射干麻黃湯對哮喘小鼠模型氣道炎癥及血清IL-6、IL-10水平的影響*
隋博文1李明虎2翟平平2李明爽2王 浩2王 達2李 成3
(1.黑龍江中醫藥大學附屬第一醫院,黑龍江 哈爾濱 150040;2.黑龍江中醫藥大學,黑龍江哈爾濱 150040;3.黑龍江省中醫研究院,黑龍江 哈爾濱 150040)
目的 觀察射干麻黃湯對哮喘小鼠模型氣道炎癥及血清白細胞介素6(IL-6)、白細胞介素10(IL-10)水平的影響。方法 健康雄性SD小鼠60只,隨機分為6組:空白對照組、哮喘模型組、地塞米松組、射干麻黃湯高、中、低劑量組,每組10只。采用卵清白蛋白(OVA)腹腔注射致敏及氣道霧化激發構建小鼠哮喘模型,每組給予相對應的處置。末次干預24 h后,采集腹主動脈血、支氣管肺泡灌洗液(BALF)、右肺下葉組織標本,分別運用ELISA法測定血清IL-6、IL-10的含量;光鏡觀察肺組織病理變化;HE染色對BALF中的細胞分類和計數。結果 1)射干麻黃湯高、中、低劑量組與哮喘模型組相比:IL-10水平升高(P<0.05)、IL-6水平下降(P<0.05)。與地塞米松組變化趨勢相近。2)射干麻黃湯能明顯減輕BALF中的嗜酸性粒細胞、中性粒細胞、淋巴細胞含量,減輕程度與地塞米松組相似。3)肺組織病理學變化哮喘模型組較空白對照組顯著改變,治療組較空白對照組呈不同程度改變、與哮喘模型組相比有一定差異。結論 射干麻黃湯對哮喘小鼠的氣道炎癥具有一定的拮抗作用,其機制可能與降低血清IL-6、升高IL-10水平相關。
支氣管哮喘 射干麻黃湯 氣道炎癥 IL-6 IL-10
支氣管哮喘是多種細胞和細胞因子共同參與調節支氣管黏膜的慢性呼吸道疾病,以氣道炎性改變為本質[1],其發病機制十分復雜。炎癥細胞及其炎性因子相互構成的網絡性改變是哮喘研究的重要領域。相關研究表明,白細胞介素6(IL-6)及白細胞介素10(IL-10)與支氣管哮喘的發生密切相關[2]。射干麻黃湯是中醫學治療支氣管哮喘(寒哮證)的代表方劑之一,能有效緩解患者的臨床癥狀[3]。本實驗旨在通過觀察射干麻黃湯對哮喘模型小鼠肺組織的病理學改變、支氣管肺泡灌洗液(BALF)中炎性細胞的分類及計數水平變化、IL-6及IL-10的含量變化,初步探討其炎癥細胞及炎性因子的網絡性改變,揭示射干麻黃湯治療哮喘的作用機制。現報告如下。
1.1 實驗動物 健康SD小鼠60只,雄性,體質量20~24 g,合格證號SCXK(黑)2013-005,購自于黑龍江中醫藥大學實驗動物中心。飼養環境SPF級,室溫20.3~22.5℃,濕度40%~50%,飼喂鼠糧,自由飲用清潔自來水。
1.2 試藥與儀器 卵清白蛋白 (OVA)(美國Sigma公司生產)、地塞米松注射液(1 mL∶5 mg,國藥準字H20133353,天津天藥藥業股份有限公司生產)、射干麻黃湯藥物 (黑龍江中醫藥大學附屬第一醫院天江藥局)。小鼠IL-6 ELISA試劑盒、IL-10 ELISA試劑盒(上海喬羽生物有限公司);BSW-2A型超聲霧化吸入器(鞍山貝爾思科技科技有限公司);H-2050R型超速冷凍離心機 (湖南湘儀實驗室儀器開發有限公司);光學顯微鏡(OLYMPUS U-LBD-2,日本制造)。中藥制備:射干麻黃湯藥物組成為射干6 g,麻黃9 g,款冬花6 g,細辛3 g,紫菀6 g,五味子3 g,半夏9 g,生姜9 g,大棗3枚,使用中藥配方顆粒(江陰天江藥業),然后根據體表等效計量換算法進行換算[4],將天江制劑溶解于蒸餾水,配置成18.720 g/mL、7.488 g/mL、3.744 g/mL的混懸液,即射干麻黃湯高、中、低劑量溶液,存儲于4℃條件下,備用。
1.3 分組與造模 60只SD小鼠適應性喂養7 d后,按數字表隨機分為6組:空白對照組、哮喘模型組、地塞米松組、射干麻黃湯高、中、低劑量組,每組10只。采用OVA腹腔注射致敏和霧化吸入激發構造哮喘模型。除空白對照組外,其余各組小鼠均在第1、8日對小鼠行2 mL的OVA懸液 (包含100.00 mg的卵蛋白、100.00 mg的氫氧化鋁充分溶解)腹腔注射而使小鼠致敏。從第15日開始,采用超聲霧化器霧化1%OVA懸液對小鼠進行激發,每天霧化1次,每次0.5 h,直到小鼠出現神態異常、呼吸頻率加快、腹肌抽搐、以足擾鼻等動作,連續霧化21 d。空白對照組:按哮喘模型組方法及步驟,使用等量的生理鹽水代替OVA懸液行小鼠腹腔注射和霧化吸入。地塞米松組:于第15日霧化激發小鼠前30 min,開始每日灌服地塞米松,劑量為1 mg/kg。各射干麻黃湯組,于第15日霧化激發小鼠前30 min,開始給予灌服射干麻黃湯,高劑量組藥物劑量為18.720 mg/kg、中劑量組藥物劑量為7.488 mg/kg、低劑量組藥物劑量為3.744 mg/kg。空白對照組和哮喘模型組從第15日霧化激發小鼠前30 min,用等體積的生理鹽水灌服。所有小鼠每日灌服2次,連續給藥21 d。
1.4 標本采集與檢測 各組小鼠在最后1次灌胃給藥24 h后,在小鼠腹腔內注射10%水合氯醛(0.35 mL/kg)進行麻醉,行無菌開胸手術,術中盡可能避開小鼠主要血管及內臟組織。用22 G靜脈穿刺針的套針部分行小鼠氣管插管,醫用絲線結扎小鼠右肺門根部,緩慢注射3 mL生理鹽水進入肺腔,輕力按摩胸部1 min,以充分灌洗,緩慢回抽,收集BALF,放置于離心管中備用,如此反復操作5次。采取右肺下葉組織,并且選用4%多聚甲醛溶液進行組織固定。用注射器從腹主動脈血管內采集3 mL血液,并收集新鮮血液于離心管中,同時加入肝素鈉抗血液凝集,靜置2 h后,3500 r/min,離心5 min,提取血清保存在-80℃條件的冰箱中。1)肺組織病理學觀察:4%多聚甲醛溶液固定肺組織24 h后,梯度脫水,石蠟包埋48 h,5 μm厚度切片,HE染色,光鏡下觀察肺組織的病理改變。2)BALF中炎癥細胞分類及計數測定:將少量的充分搖勻的BALF滴在細胞計數板上,光學顯微鏡下統計細胞總含量,統計后將BALF進行離心操作,2500 r/min離心15 min,并將沉渣制備成細胞涂片,采用HE染色法染色,鏡下統計200個細胞并分類計數。3)血清IL-6和IL-10含量水平測定:采用ELISA法測定其含量水平。具體操作方法及步驟嚴格按照試劑盒說明書進行。
1.5 統計學處理 應用SPSS17.0統計軟件分析。計量資料以(±s)表示。采用單因素方差分析,組間兩兩比較方差齊者用LSD法,方差不齊者用Dunnett T3法進行分析。P<0.05為差異有統計學意義。
2.1 小鼠行為學改變及死亡情況 各組小鼠激發前精神狀況良好,無異常行為學表現。給藥并激發后,空白對造組小鼠較給藥激發前無明顯變化。哮喘模型組精神亢奮、呼吸深快、腹肌抽搐、以足擾鼻等異常動作。與哮喘模型組相比,治療組小鼠哮喘行為呈現不同程度減輕,以地塞米松組與空白對照組行為表現差異最小,哮喘模型組與空白對照組行為表現差距最大。本次實驗過程中哮喘組模型組小鼠死亡2只,射干麻黃湯低劑量組小鼠死亡1只,地塞米松組小鼠死亡1只,其余存活。
2.2 小鼠肺組織病理學的影響 見圖1。空白對照組鏡下顯示氣道結構完整,纖毛分布均勻,黏膜及平滑肌未見炎性細胞浸潤,肺泡結構正常,肺泡腔無滲出物,肺組織未見病理性改變。哮喘模型組氣道壁出現褶皺,管腔變窄,杯狀細胞增多,黏液增加,纖毛部分脫落,黏膜下出現大量炎性細胞,毛細血管擴張、充血,周圍組織水腫,肺泡內出現炎性滲出物。治療組較哮喘模型組肺組織病理改變呈現出不同程度減輕,其中射干麻黃湯低劑量組肺組織破壞重,地塞米松組最輕。

圖1 各組小鼠肺組織比較 (HE染色,400倍)
2.3 各組BALF中炎性細胞計數及分類 見表1。哮喘模型組BALF中細胞總數、嗜酸性粒細胞、中性粒細胞、淋巴細胞含量水平明顯較空白對照組高(P<0.05),以嗜酸性粒細胞組最為顯著。射干麻黃湯高、中、低劑量組和地塞米松組中細胞總數及各類炎癥細胞數量水平較哮喘模型組顯著減少 (P<0.05),4組治療組間數據兩兩對比,結果顯示差異無統計學意義(P>0.05)。
表1 各組BALF中炎性細胞計數比較(×109/L,±s)

表1 各組BALF中炎性細胞計數比較(×109/L,±s)
與空白對照組比較,*P<0.05;與哮喘模型組比較,△P<0.05。下同。
組別 n空白對照組 10哮喘模型組 8射干麻黃湯高劑量組 10細胞總數 嗜酸性粒細胞 中性粒細胞 淋巴細胞11.80±2.14 1.90±0.73 5.00±1.24 2.60±1.07 29.50±5.87*4.87±1.24*15.50±4.14*9.12±2.29*20.0±3.26△3.20±1.13△9.20±2.54 5.20±1.68△射干麻黃湯中劑量組 10 20.50±3.83△3.40±1.26△9.30±2.54△5.70±1.70△射干麻黃湯低劑量組 9 20.66±4.12△3.44±1.01△9.33±1.73△6.00±1.41△地塞米松組 9 17.44±3.04△2.55±1.33△7.33±1.00△4.44±1.13△
2.4 各組血清IL-6、IL-10和IL-6/IL-10水平比較見表2。哮喘模型組與空白對照組相比較,哮喘模型組小鼠血清IL-6含量上升 (P<0.05),IL-10含量下降(P<0.05),IL-6/IL-10比值升高(P<0.05),其中以IL-6含量上升趨勢最明顯。地塞米松組和射干麻黃湯高、中、低劑量組與哮喘模型組相比較,IL-6水平降低(P<0.05),IL-10水平升高(P<0.05),IL-6/IL-10比值下降。治療組組間相互比較,結果顯示差異無統計學意義(P>0.05)。
表2 各組小鼠血清IL-6、IL-10水平和IL-6/IL-10比較(pg/mL,±s)

表2 各組小鼠血清IL-6、IL-10水平和IL-6/IL-10比較(pg/mL,±s)
組別 n空白對照組 10哮喘模型組 8射干麻黃湯高劑量組 10 IL-6 IL-10 IL-6/IL-10 8.59±2.25*11.44±1.62*0.76±0.24*13.59±2.25△8.40±1.83△1.70±0.56△10.59±2.25△11.36±1.66△0.95±0.25△射干麻黃湯中劑量組 10 11.09±1.80△10.82±2.20△1.08±0.35△射干麻黃湯低劑量組 9 11.59±1.61△10.62±1.99△1.12±0.27△地塞米松組 9 9.99±2.24△11.96±2.36△0.86±0.25△
支氣管哮喘是一種以慢性氣道炎性病理改變為特征的多發性呼吸系統疾病。其慢性氣道炎性病理改變與多種免疫細胞異常分化、激活以及細胞因子水平紊亂有關[5]。相關研究表明,除外輔助性T細胞2(Th2)細胞異常活化導致的Th1/Th2免疫失衡是支氣管哮喘發生的機制之一,最新發現的調節性T細胞(Treg)/輔助性T細胞17(Th17)亦是哮喘的重要免疫學基礎[6-7]。
Th17細胞是通過特異性轉錄調控因子ROR-yt調控以高水平分泌IL-17的一類不同于Th1、Th2的CD4+輔助性細胞亞群[8]。IL-6是Th17細胞通過分泌IL-17炎癥介質來誘導產生的重要炎性細胞因子[9]。相關研究表明:在炎性反應及免疫應答過程中,IL-6作為重要炎癥介質,對急性蛋白及IgE生成有促進作用[10]。T細胞是通過Marker Foxp3調控的一類功能性淋巴細胞群,是細胞維持穩態的關鍵因素,可防止自身免疫性疾病[8]。IL-10是Treg細胞分泌的特異性細胞因子。相關研究表明:在哮喘反應中,IL-10對炎性反應和自身免疫應答起抑制作用[10-11]。
支氣管哮喘屬于中醫學“哮病”的范疇。中醫學認為“哮病”的產生機制是內有痰飲伏肺、外有邪氣入侵導致痰氣交阻,以致肺氣機紊亂,失于宣降而出現發作性痰鳴氣喘癥狀,臨床上尤以冷哮證居多。其以反復發作性喘息、呼吸困難、胸悶,伴咳嗽及痰鳴為主要臨床表現。射干麻黃湯是中醫學臨床上治療冷哮證的名方之一,通過外散表寒、內化痰飲而發揮平喘作用。方中射干開結消痰,配伍麻黃,能宣肺利咽、降逆平喘;紫菀、款冬花、半夏溫肺化痰、降逆化飲;細辛溫逐飲邪,配伍生姜,辛溫發散,又加五味子固斂上逆之氣,鎮咳平喘;大棗益脾養胃。諸藥相配,具溫肺、利氣、開痰的作用,共奏溫肺散寒、化痰平喘之功。相關資料表明[11-12]:射干麻黃湯能有效減輕哮喘的氣道炎性病理改變。西醫藥理學研究證實,其主要是通過降低炎癥細胞數目[13-14]、加速氣管內纖毛運動、降低痰液黏稠度來發揮祛痰、平喘、抗炎的功效[15-16],進而減輕哮喘患者上述臨床癥狀,改善肺功能。
通過本實驗觀察發現,哮喘模型組BLAF中嗜酸性粒細胞、中性粒細胞含量明顯上升,同時鏡下肺組織黏膜及平滑肌出現大量炎性細胞浸潤,給予射干麻黃湯與地塞米松干預后,無論BLAF及肺組織中炎性細胞均出現明顯減少,且與射干麻黃湯的劑量呈正相關,表明射干麻黃湯能有效減輕氣道炎性細胞浸潤組織。對腹主動脈血中IL-6、IL-10的含量測定、比較中發現藥物干預哮喘小鼠后,IL-10水平上升(P<0.05)、IL-6水平下降(P<0.05)、IL-6/IL-10比值減少。表明射干麻黃湯能抑制Th17細胞生成,促進Treg細胞產生,導致Treg/Th17的平衡受到破壞。
本實驗觀察到射干麻黃湯對哮喘小鼠氣道炎癥及IL-6、IL-10的水平影響,表明射干麻黃湯可能是通過抑制IL-6表達、加強IL-10表達,進一步調節Treg/ Th17的失衡,來減輕哮喘小鼠氣道慢性炎癥,但其復雜的炎癥細胞與炎性因子構成的網絡性改變,有待進一步的研究。
[1] 張業清,蘇克雷,龐中化,等.宣肺平喘方對哮喘小鼠氣道炎癥及Th17/Treg平衡的影響[J].中國實驗方劑學雜志,2016,22(6):119-123.
[2] 黃東暉,王慧賢,吳少麗,等.喘可治注射液對小鼠氣道炎癥Th17與Treg的影響[J].北京中醫藥大學學報,2014,37(5):333-336.
[3] 王芳,王敏.射干麻黃湯治療哮喘的療效及機制研究進展[J].醫學研究生學報,2013,26(7):754-756.
[4] 熊遠珍.實驗動物與人用藥量的新換算[J].南昌大學學報:醫學版,1997,37(4):41.
[5] 何飛,徐儉樸,楊明華,等.芍藥甘草湯對哮喘大鼠Treg/ Th17比例失衡的影響[J].中華中醫藥雜志,2016,31(11):19-21.
[6] 趙紅,王長海,魏亞強.射干麻黃湯對哮喘小鼠氣道炎癥及外周血Th1/Th2平衡的影響[J].中國中醫急癥,2010,19(3):466-468.
[7] 喬靖,侯少貞,余翔,等.蘇子降氣湯對豚鼠哮喘模型Th17/ Treg平衡的影響[J].動物醫學進展,2013,34(11):89-91.
[8] 韓根成,沈倍奮.Th17細胞分化、調節及效應研究進展[J].生物化學與生物物理進展,2008,35(2):117-123.
[9] 劉光偉,趙勇.CD4+T細胞的新亞型:Th17細胞及其生物效應[J].生物化學與生物物理進展,2007,34(4):348-353.
[10]龍正寅,朱慧志,朱舜之,等.陽和平喘顆粒對哮喘小鼠血清TNF-α和IL-6水平的影響[J].遼寧中醫雜志,2016,43(7):1522-1524.
[11]王宏麗,郝小惠,王袁,等.白細胞介素-10和12在哮喘發病機制中的作用[J].廣東醫學,2015,36(12):1838-1841.
[12]祝丁,張超,賴天文,等.中藥對支氣管哮喘氣道重塑干預機制研究進展[J].中國實用內科雜志,2016,36(8):694-697.
[13]林永廉,林求誠.射干麻黃湯對實驗性哮喘豚鼠嗜酸性粒細胞凋亡的影響[J].實用中醫藥雜志,2007,23(1):3-5.
[14]王明明,項曉人,徐建亞.補肺益腎方對幼齡哮喘豚鼠肺內嗜酸粒細胞凋亡和IL-5受體表達的影響[J].醫學研究生學報,2010,23(7):697-699.
[15]吳娜娜,張禹,李梅霞.射干麻黃湯治療難治性哮喘患者的臨床療效研究[J].中國繼續醫學教育,2015,7(32):184-185.
[16]陳照南,陳昭玲.加減射干麻黃湯治療支氣管哮喘29例臨床研究[J].內蒙古中醫藥,2014,33(16):4.
Effect of Shegan Mahuang Decoction on Asthma Mouse Model of Airway Inflammation and Serum IL-6and IL-10 Levels
SUI Bowen,LI Minghu,ZHAI Pingping,et al. The First Affiliated Hospital of Heilongjiang University of TCM,Heilongjiang,Harbin 150040,China.
Objective:To observe the effect of Shegan Mahuang Decoction on asthma mouse model of airway inflammation and serum IL-6 and IL-10 levels.Methods:60 healthy male SD mice were randomly divided into 6 groups:control group,asthma model group,Shegan Mahuang Decoction high,medium and low dose group and dexamethasone group with10 mice in each group.Mice models of asthma were established by intraperitoneal injection of OVA and airway atomization.Each group was given corresponding treatment.In 24 h after the last intervention,abdominal aortic blood,bronchoalveolar lavage fluid(BALF),right lower lobe tissue specimens were collected;the serum levels of interleukin(IL-6)and interleukin(IL-10)were measured by ELISA method.The pathological changes of lung tissue were observed by light microscopy,and the HE staining was used to classify and count the cells in BALF.Results:1)Compared with asthma model group,IL-10 level increased(P<0.05),IL-6 decreased(P<0.05)in Shegan Mahuang Decoction high,medium and low dose group.The trend of change was similar to that of dexamethasone group.2)Shegan Mahuang Decoction could significantly reduce eosinophils,neutrophils,lymphocytes content in BALF,but not as effective as dexamethasone.3)The pathological changes of lung tissue in model group was significantly more obvious than that in normal group,and the treatment groups were significantly different than the normal group,and there was a certain difference compared with the model group.Conclusion:Shegan Mahuang Decoction has certain antagonism on airway inflammation in asthmatic mice. Its mechanism may be related to the decrease of serum IL-6 and increase IL-10 level.
Bronchial asthma;Shegan Mahuang Decoction;Airway inflammation;IL-6;IL-10
R285.5
A
1004-745X(2017)05-0783-04
10.3969/j.issn.1004-745X.2017.05.009
2017-02-06)
黑龍江省自然科學基金項目(H201317)