甜高粱WRKY轉錄因子基因的克隆與表達分析

徐 磊，胡小文，姚艷麗，邢淑蓮，劉 洋

(中國熱帶農業科學院湛江實驗站 廣東省旱作節水農業工程技術研究中心，廣東 湛江 524013)

甜高粱WRKY轉錄因子基因的克隆與表達分析

徐 磊，胡小文，姚艷麗，邢淑蓮，劉 洋*

(中國熱帶農業科學院湛江實驗站 廣東省旱作節水農業工程技術研究中心，廣東 湛江 524013)

【目的】克隆甜高粱WRKY基因，分析其序列特征和表達譜，為甜高粱抗旱育種提供基因來源。【方法】以甜高粱品種M81-E幼苗總RNA為模板，利用RT-PCR技術克隆甜高粱WRKY基因，通過生物信息學軟件分析其序列特征，采用實時熒光定量PCR檢測基因表達情況，獲得2條WRKY基因，命名為SbWRKY1(Genebank 登錄號：KY231904)和SbWRKY2(Genebank 登錄號：KY231905)。【結果】SbWRKY1 cDNA序列全長1086 bp，包括1個1059 bp的開放閱讀框，編碼352個氨基酸。SbWRKY2 cDNA序列全長750 bp，包括1個717 bp的開放閱讀框，編碼238個氨基酸。2個基因編碼的蛋白均具有WRKY核心序列“WRKYGQK”和“C-X4-5-C-X22-23 -H-X1-H”鋅指結構模型。SbWRKY1蛋白分子式為C1628H2619N509O504S16，預測蛋白質分子量為37.89 kDa，等電點(PI)為9.78。SbWRKY2蛋白分子式為C1131H1752N326O344S21，預測蛋白質分子量為26.09 kDa，等電點(PI)為8.43。系統進化樹分析表明，SbWRKY1蛋白與高粱、玉米和谷子WRKY蛋白親緣關系較近，SbWRKY2蛋白與高粱、芒草和玉米WRKY蛋白親緣關系較近。熒光定量PCR分析表明，隨著干旱脅迫時間延長，SbWRKY1和SbWRKY2呈上調表達趨勢。【結論】SbWRKY1和SbWRKY2基因可能在甜高粱應對干旱脅迫中發揮一定作用。

甜高粱；轉錄因子；WRKY；RT-PCR

【研究意義】轉錄因子(transcription factor)又稱反式作用因子，它能激活或抑制相關基因表達，通過這一轉錄調控過程，植物可以應對各種生物及非生物脅迫[1]。根據轉錄因子DNA保守結構域的特點，可以將其分成若干個家族，如AP2/EREBP、MADS、bZIP和MYB等[2]。WRKY家族轉錄因子是植物中一類較大的基因家族，所有WRKY蛋白都包含1～2個保守WRKY結構域，該結構域含有約60個氨基酸序列，N端主要由“WRKYGQK”核心序列組成，C端序列為“C-X4-5-C-X22-23-H-X1-H或C-X7-C-X23-H-X1-C”類型的鋅指結構[3-4]。根據WRKY基因分類標準，該類轉錄因子可分為是I型、II型和III型。I型有個2個WRKY結構域，分別位于N端和C端，其鋅指結構類型為C2H2；II型和III型各含有1個保守的WRKY結構域，II型鋅指類型為C2H2，III型鋅指結構類型則為C2HC[5]。【前人研究進展】在植物中，自1994年從甘薯中克隆第一個WRKY基因以來[6]，針對WRKY轉錄因子已有較多研究報道，在WRKY全基因組鑒定[7]、生物[8]及非生物脅迫[9]表達特征分析和轉基因功能驗證[10]等方面開展研究。擬南芥中有68 %的AtWRKYs響應SA處理或丁香假單胞菌侵染[11]。棉花GhWRKY3不僅在ABA、SA、MeJA、GAs和ET多種激素處理后上調表達，而且在立枯絲核菌、棉花炭疽病菌和棉花枯萎病菌侵染后增強表達，同時該基因能夠被干旱、高鹽和冷害脅迫誘導表達[12]。WRKY轉錄因子具有多種生物學功能，在植物發生長發育、抗病反應、激素誘導和環境脅迫等進程中發揮作用[13]。甜高粱起源于非洲，是粒用高粱的一個變種，生物量大、含糖量高，是優質的飼料作物和能源作物。它具有耐旱、耐鹽堿和耐貧瘠等多種特性[14]。而高粱基因組小(750 Mbp)，是禾本科作物中抗旱性研究的優良模式植物[15]。【本研究切入點】高粱基因組測序已于2009年完成，但有關高粱WRKY基因的研究鮮有報道，本研究以甜高粱品種M81-E為試材，通過同源克隆獲得甜高粱的WRKY基因，并研究基因在干旱脅迫處理條件下的表達模式。【擬解決的關鍵問題】為甜高粱WRKY基因的功能研究提供參考。

1 材料與方法

1.1 供試材料

甜高粱品種：M81-E，由本實驗室保存。試劑：Trans2K Plus DNA Marker、Easy Pure Plant RNA kit、TransScript First-Strand cDNA Synthesis SuperMix、2x EasyTaqPCR SuperMix、pEASY-T1 Cloning Kit、Trans1-T1感受態細胞和TransStart Green qPCR Super Mix均購自北京全式金生物技術有限公司。

1.2 高粱苗期脅迫處理

M81-E種子用5 % NaClO溶液消毒，無菌水沖洗3次，種植于溫室，以0.5×Hoagland營養液水培，每3 d更換1次營養液，待生長至3葉1心時，用含20 % PEG6000的營養液進行干旱脅迫處理，分別于0、1和24 h收集全株植物，用錫箔紙包裹后放入液氮冷凍處理20 min，然后迅速放入-80 ℃冰箱保存。

1.3 基因克隆策略

分別以玉米ZmWRKY21蛋白氨基酸序列(NP_001147091.1)和谷子SiWRKY64蛋白氨基酸序列(XP_004978524.1)在Phytozome V11.0網站通過Blast獲得高粱基因的cDNA序列和編碼蛋白序列。進一步通過SMART(http://smart.embl-heidelberg. de/)在線預測蛋白是否包含WRKY結構域。

1.4 總RNA提取及cDNA合成

按照RNA提取試劑盒的操作步驟進行總RNA提取，提取的總RNA經1.5 %瓊脂糖凝膠電泳檢測，以檢測合格的總RNA為模板，按照cDNA第1鏈反轉錄試劑盒操作步驟反轉錄成cDNA第1鏈，用于基因克隆試驗和qRT-PCR試驗。

1.5 引物設計和RT-PCR克隆

為克隆全長cDNA序列，使用Primer 3引物設計工具(http://primer3.ut.ee)在基因的完整閱讀框兩側設計巢式引物(表1)。實驗步驟、PCR反應體系和PCR反應程序參考徐磊的方法[16]并稍作修改，具體如下：引物C1用于第1輪PCR擴增反應，引物C2用于第2輪PCR反應。以cDNA為模板擴增基因的ORF(Open reading frame，ORF)；反應體系(10 μl)：cDNA 1 μl，上游引物、下游引物各0.5 μl，2× EasyTaqPCR Super Mix 5 μl，補ddH2O至10 μl；PCR反應程序：94 ℃ 5 min；94 ℃ 30 s，50 ℃ 45 s，72 ℃ 2 min，共34個循環；72 ℃ 10 min，4 ℃保存。PCR產物用1.5 %瓊脂糖凝膠電泳檢測，目標PCR條帶經膠回收、純化后與PEASY-T1載體連接，然后熱擊Trans1-T1感受態細胞，恢復培養后涂氨芐平板于37 ℃過夜培養，挑取陽性單克隆搖菌后送上海美吉生物公司測序。

1.6 序列的生物信息學分析

ORF和氨基酸序列分析利用NCBI ORF Finder程序；采用Protparam在線軟件分析蛋白理化性質；三級結構預測使用在線SWISS-MODEL數據庫；利用NCBI Conserved Domains數據庫進行保守結構域分析；多序列比對使用Clustal X 2.1軟件[17]，然后用MEGA 4.1軟件[18-19]采用鄰接法構建系統發育樹。

表1 基因克隆與表達分析所用引物

1.7 甜高粱WRKY基因的熒光定量表達分析

根據克隆的2條基因cDNA序列設計qPCR引物qSbWRKY1和qSbWRKY2(表1)。內參選擇高粱GAPDH基因(XM_002452356)。利用SYBR Green法進行熒光定量表達分析，在ABI 7500實時熒光定量PCR儀上分析[20]。PCR反應體系和PCR擴增程序參考徐磊的方法[16]并稍作修改，具體如下：PCR反應體系(20 μl)：cDNA 1 μl，2×TransStart Green qPCR Super Mix 10 μl，上游引物、下游引物各0.5 μl，補ddH2O至20 μl；PCR擴增程序：95 ℃ 2 min；95 ℃ 10 s，60 ℃ 30 s，共35個循環。按照2-ΔΔCT法[21]計算基因在對照組和處理組之間的相對表達值。

2 結果與分析

2.1 甜高粱WRKY基因的克隆與測序

通過Blast比對檢索到2個同源性高的高粱基因(Sb01g014180和Sb04g033240 )。Sb01g01418 0CDS全長1059 bp，在CDS兩側設計巢式引物，經RT-PCR擴增、測序(圖1)，獲得1條完整的cDNA序列，該基因cDNA序列全長1086 bp，包含1個1059 bp的開放閱讀框，編碼352個氨基酸。與高粱

M: Trans2K plus DNA marker; 1: SbWRKY1全長cDNA擴增產物; 2: SbWRKY2全長cDNA擴增產物M: Trans2K plus DNA marker; 1: Full-length cDNA product of SbWRKY1; 2: Full-length cDNA product of SbWRKY2圖1 甜高粱SbWRKY1和SbWRKY2基因的PCR擴增產物Fig.1 PCR products of SbWRKY1 and SbWRKY2 genes from sweet sorghum

方框中ATG為起始密碼子，*為終止密碼子TAG；“WRKYGQK”為WRKY核心序列，“C-X4-5-C-X22-23-H-X1-H”為鋅指結構ATG in the box means the initiator codon, * means termination codon TAG; ‘WRKYGQK’ is the core sequence of WRKY, ‘ C-X4-5-C-X22-23-H-X1-H’ is zinc finger structure model圖2 甜高粱SbWRKY1cDNA序列及推導的氨基酸序列Fig.2 SbWRKY1 cDNA sequences and deduced amino acid sequences from sweet sorghum

Sb01g014180基因相比，編碼區有6個核苷酸突變(269 A-G; 424 T-C; 428 C-T; 458 G-A; 828 T-C; 938 T-C)，5個氨基酸發生突變(90 Q-R; 122 S-P; 123 A-V; 153 R-Q; 313 V-A)，命名為SbWRKY1(圖2)。

Sb04g033240 CDS全長717 bp，經RT-PCR擴增、測序(圖1)，該基因cDNA全長750 bp，包含1個717 bp的開放閱讀框，編碼238個氨基酸(圖3)。與高粱Sb04g033240基因相比，3個核苷酸發生突變(476 A-T; 486 C-T; 592 T-C)，2個氨基酸發生突變(159 Y-F; 198 S-P)，命名為SbWRKY2。2個基因編碼的蛋白序列均具有典型的WRKY核心序列“WRKYGQK” 和“C-X4-5-C-X22-23-H-X1-H”鋅指結構模型。表明克隆的2條基因為WRKY基因(圖3)。

2.2 SbWRKY1和SbWRKY2蛋白理化性質和蛋白三級結構預測

蛋白理化性質分析表明：SbWRKY1蛋白分子式為C1628H2619N509O504S16，預測蛋白質分子量為37.89 kDa，等電點(PI)為9.78；包含20種常見氨基酸，含量最高的氨基酸為Ser(12.2 %)，最低的是Trp(0.3 %)；不穩定指數為49.15，為不穩定蛋白；疏水性 GRAVY值為-0.580，為親水性蛋白。SbWRKY2蛋白分子式為C1131H1752N326O344S21，預測蛋白質分子量為26.09 kDa，等電點(PI)為8.43；包含20種常見氨基酸，含量最高的為Ser(8.8 %)和Gly(8.8 %)，最低的是Ile(0.8 %)；不穩定指數為53.87，為不穩定蛋白；疏水性 GRAVY值為-0.455，為親水性蛋白。預測的蛋白三級結構表明(圖4)，SbWRKY1基因編碼蛋白與數據庫2ayd.1.A蛋白匹配，兩者序列相似性為57.97 %，GMQE值為0.12，QMEAN4值為-1.86。SbWRKY2基因編碼蛋白也與2ayd.1.A蛋白匹配，兩者序列相似性為50.67 %，GMQE值為0.19，QMEAN4值為-1.79。

2.3 SbWRKY1和SbWRKY2蛋白保守結構域預測

對2條基因編碼蛋白進行蛋白保守結構域預測分析，2個蛋白都包含1個典型的WRKY結構域(圖5)。

2.4 SbWRKY1和SbWRKY2基因的表達特征分析

以高粱GAPDH基因作內參，采用熒光定量PCR分析干旱脅迫條件下2條WRKY基因的表達，與 0 h表達量相比，干旱處理1、24 h均上調表達，隨著干旱脅迫時間延長，基因相對表達量持續增加(圖6)。SbWRKY1和SbWRKY2表達趨勢一致。

方框中ATG為起始密碼子，*為終止密碼子TGA；“WRKYGQK”為WRKY核心序列，C-X4-5-C-X22-23-H-X1-H為鋅指結構ATG in the box means the initiator codon, * means termination codon TGA; ‘WRKYGQK’ is the core sequence of WRKY, ‘C-X4-5-C-X22-23-H-X1-H’ is zinc finger structure model圖3 甜高粱SbWRKY2cDNA序列及推導的氨基酸序列Fig.3 SbWRKY2 cDNA sequences and deduced amino acid sequences from sweet sorghum

2.5 WRKY蛋白進化樹分析

通過NCBI Blast P工具比對分析，下載與SbWRKY1和SbWRKY2蛋白序列相似性高的蛋白序列，SbWRKY1蛋白與高粱(Sorghumbicolor)、玉米(Zeamays)、谷子(Setariaitalica)、節節麥(Aegilopstauschii)、短柄草(Brachypodiumdistachyon)、大麥(Hordeumvulgaresubsp.Vulgare)和小麥(Triticumaestivum)蛋白相似性分別為99 %、90 %、90 %、81 %。83 %、80 %和80 %。SbWRKY2蛋白與高粱、芒草(Miscanthuslutarioriparius)、谷子、玉米、短柄草、短花藥野生稻(Oryzabrachyantha)和小麥蛋白相似性分別為99 %、86 %、84 %、82 %、69 %、68

圖7 SbWRKY1蛋白與其他WRKY蛋白系統發生樹Fig.7 Phylogenetic tree of SbWRKY1 protein and other WRKY proteins

圖8 SbWRKY2蛋白與其他WRKY蛋白系統發生樹Fig.8 Phylogenetic tree of SbWRKY2 protein and other WRKY proteins

和60 %。利用Mega 4.1軟件，采用鄰接法構建分子進化樹(Bootstrap值設為1000次)，由圖7可知，甜高粱SbWRKY1蛋白與高粱、玉米和谷子WRKY蛋白聚為一類。 甜高粱SbWRKY2蛋白與高粱、芒草和玉米WRKY蛋白聚為一類。SbWRKY1蛋白和SbWRKY2蛋白均與高粱WRKY蛋白親緣關系最近(圖8)。

3 討論與結論

本研究基于已知玉米和谷子WRKY蛋白氨基酸序列，通過Blast比對分析，以高粱基因cDNA序列為模板，設計跨編碼區的巢式引物，通過RT-PCR驗證，在甜高粱中成功克隆到2個WRKY基因。SbWRKY1 cDNA全長1059 bp，編碼352個氨基酸。SbWRKY2 cDNA全長750 bp，編碼238個氨基酸。蛋白保守結構域預測表明，預測的SbWRKY1和SbWRKY2蛋白均具有WRKY保守結構域。

隨著基因組測序與注釋工作不斷完善，有利于在參考基因組物種中克隆目標基因，目前，高粱基因組注釋版本已更新至V3.1。為成功克隆目標基因，本研究設計了特異性較強的巢式引物進行PCR擴增，成功獲得2條目標基因。盡管WRKY結構域的核心序列“WRKYGQK”是高度保守的，但水稻有19個WRKY基因編碼的核心序列發生變異，類型為：WRKYGEK、WRKYGKK、WRICGQK、WRMCGQK、WKKYGQK、WIKYGQK、WKRYGQK、WSKYEQK和WRKYSEK[22]。本研究克隆的2條WRKY基因均具有保守的“WRKYGQK”7肽序列，沒有發生序列變異。前人研究標明，WRKY基因參與干旱、高鹽和高溫等非生物脅迫調控進程。水稻OsWRKY11基因受干旱和高溫脅迫誘導表達，過表達試驗證明該基因能夠提高轉基因植株的耐旱和耐高溫抗性[23]。在馬鈴薯中過表達辣椒CaWRKY1基因，可增強轉基因馬鈴薯植株的耐旱性[24]。羊草LcWRKY5基因受干旱脅迫和鹽脅迫誘導表達，進一步通過擬南芥轉基因試驗證明該基因能夠增強植株耐失水脅迫壓力[25]。本研究克隆的SbWRKY1和SbWRKY2基因在干旱脅迫條件下呈上調表達特征，這與OsWRKY11和LcWRKY5的表達模式類似，推測這2條基因在應對干旱脅迫中可能發揮一定作用。

[1]Yang Z R, Wang X C, Li X M, et al. Advance on the study of transcription fators in higher plants[J]. Hereditas (Beijing), 2004, 26(3): 403-408.

[2]李 潔. 植物轉錄因子與基因調控[J]. 生物學通報, 2004, 39(3)：9-10.

[3]Eulgem T, Rushton P J, Robatzek S, et al. The WRKY superfamily of plant transcription factors[J]. Trends in Plant Science, 2000, 5(5): 199-206.

[4]Ulker B, Somssich I E. WRKY transcription factors: from DNA binding towards biological function[J]. Current Opinion in Plant Biology, 2004, 7(5): 491-498.

[5]Agarwal P, Reddy M P, Chikara J. WRKY: its structure, evolutionary relationship, DNA-binding selectivity, role in stress tolerance and development of plants[J]. Molecular Biology Reports, 2011, 38(6): 3883-3896.

[6]Ishiguro S, Nakamura K. Characterization of a cDNA encoding a novel DNA-binding protein, SPF1, that recognizes SP8 sequences in the 5’ upstream regions of genes coding for sporamin and β-amylase from sweet potato[J]. Molecular Genetics and Genomics, 1994, 244(6): 563-571.

[7]江 騰，林勇祥，劉 雪，等. 苜蓿全基因組WRKY轉錄因子基因的分析[J]. 草業學報, 2011, 20(3)： 211-218.

[8]Ryu H S, Han M H, Lee S K, et al. A comprehensive expression analysis of theWRKYgene superfamily in rice plants during defense response[J]. Plant Cell Reports, 2006, 25(8): 836-847.

[9]Ling J, Jiang W J, Zhang Y, et al. Genome-wide analysis ofWRKYgene family inCucumissativus[J]. BMC Genomics, 2011, 12(1): 1-20.

[10]Li J, Wang J, Wang N, et al.GhWRKY44, a WRKY transcription factor of cotton, mediates defense responses to pathogen infection in transgenicNicotianabenthamianas[J]. Plant Cell, Tissue Organ Culture, 2015, 121(1): 127-140.

[11]Dong J X, Chen C H, Chen Z X. Expression profiles of theArabidopsisWRKY gene superfamily during plant defense response[J]. Plant Molecular Biology, 2003, 51(1): 21-37.

[12]Guo R Y, Yu F F, Gao Z, et al.GhWRKY3, a novel cotton (GossypiumhirsutumL.) WRKY gene, is involved in diverse stress responses[J]. Molecular Biology Reports, 2011, 38(1): 49-58.

[13]張 娟. WRKY轉錄因子功能研究進展[J]. 西北植物學報，2009，29(10)：2137-2145.

[14]張蘇江，艾買爾江·吾斯曼，薛興中，等. 南疆玉米和不同糖分甜高粱的青貯品質分析[J]. 草業學報，2014，23(3)：232-240.

[15]段有厚，鄒劍秋，盧 峰. 高粱抗旱機理及保苗技術[J]. 雜糧作物，2009，29(1)：25-27.

[16]徐 磊，姚艷麗，胡小文，等. 甘蔗谷胱甘肽硫轉移酶基因SoGST-1a的克隆與表達分析[J]. 中國農學通報，2015，31(26)：71-77.

[17]Larkin M A, Blackshields G, Brown N P, et al. Clustal W and Clustal X version 2.0[J]. Bioinformatics, 2007, 23(21): 2947-2948.

[18]Tamura K, Dudley J, Nei M, et al. MEGA4: molecular evolutionary genetics analysis (MEGA) software version 4.0[J]. Molecular Biology and Evolution, 2007, 24(8): 1596-1599.

[19]王艷芳，趙彥宏，劉林德，等.玉米MIR166基因家族的進化與功能研究[J].南方農業學報,2015,46(8):1345-1349.

[20]王 盛，謝芝勛，謝麗基，等.轉基因煙草中外源基因實時熒光定量PCR檢測方法的建立[J].南方農業學報,2015,46(5):745-749.

[21]Livak K J, Schmittgen T D. Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2-ΔΔCtmethod[J]. Methods, 2001, 25(4): 402-408.

[22]Zhang Y J, Wang L J. The WRKY transcription factor superfamily: its origin in eukaryotes and expansion in plants[J]. BMC Evolutionary Biology, 2005, 5(1): 1-12.

[23]Wu X L, Shiroto Y, Kishitani S, et al. Enhanced heat and drought tolerance in transgenic rice seedlings overexpressingOsWRKY11 under the control ofHSP101 promoter[J]. Plant Cell Reports, 2009, 28(1): 21-30.

[24]Moon S J, Han S H, Kim D Y, et al. Ectopic expression ofCaWRKY1, a Pepper transcription factor, enhances drought tolerance in transgenic potato plants[J]. Journal of Plant Biology, 2014, 57(3): 198-207.

[25]Ma T, Li M L, Zhao A G, et al.LcWRKY5: an unknown function gene from sheepgrass improves drought tolerance in transgenicArabidopsis[J]. Plant Cell Reports, 2014, 33(9): 1507-1518.

(責任編輯 陳 虹)

CloningandExpressionAnalysisofWRKYTranscriptionFactorGeneinSweetSorghum

XU Lei, HU Xiao-wen, YAO Yan-li, XING Shu-lian, LIU Yang*

(Guangdong Engineering Technology Research Center for Dryland Water-saving Agriculture, Zhanjiang Experiment Station , Chinese Academy of Tropical Agricultural Sciences, Guangdong Zhanjiang 524013, China)

【Objective】The objective of this study was to cloneWRKYgenes from sweet sorghum and analyzed their sequence characteristics and expression patterns, which would provided the source of gene in sweet sorghum breeding for drought resistance.【Method】Taken seedlings RNA of sweet sorghum cultivar M81-E as tested materials,WRKYgenes from sweet sorghum by RT-PCR were cloned, their characteristics of sequences with bioinformatics softwares and their expression patterns by real-time PCR were analyzed, and twoWRKYgenes from sweet sorghum were cloned, which were namedSbWRKY1 (Genebank accession number: KY231904) andSbWRKY2 (Genebank accession number: KY231905). 【Result】The cDNA full length ofSbWRKY1 was 1086 bp with a 1059 bp open reading frame, which encoded 352 amino acids. The cDNA full length ofSbWRKY2 was 750 bp with a 717 bp open reading frame, which encoded 238 amino acids. The two genes encoding proteins had WRKY core sequence ‘WRKYGQK’ and zinc finger structure model ‘C-X4-5-C-X22-23 -H-X1-H’. The predicted protein molecular formula of SbWRKY1 was C1628H2619N509O504S16, the molecular mass was 37.89 kDa, and the PI was 9.78. The predicted protein molecular formula of SbWRKY2 was C1131H1752N326O344S21, the molecular mass was 26.09 kDa, and the PI was 8.43. Phylogenetic analysis indicated that SbWRKY1 protein was close to WRKY proteins ofSorghumbicolor,ZeamaysandSetariaitalica, and SbWRKY2 protein was close to WRKY proteins ofSorghumbicolor,MiscanthuslutarioripariusandZeamays. Real-time PCR results showed that theSbWRKY1 andSbWRKY2 gene were up-regulated expression with the time of drought stress. 【Conclusion】These results demonstrated thatSbWRKY1 andSbWRKY2 might play a role in response to drought stress in sweet sorghum.

Sweet sorghum; Transcription factor; WRKY; RT-PCR

S514.03；Q943

A

1001-4829(2017)11-2429-07

10.16213/j.cnki.scjas.2017.11.007

2016-11-15

中國熱帶農業科學院湛江實驗站科研啟動專項資金項目(zjky201504);中國熱帶農業科學院基本科研業務費專項資金項目(17CXTD-07)

徐 磊(1984-)，男，河南信陽人，碩士，主要從事作物品種改良，E-mail:xulei00100@163.com，Tel：0759-2161106，*為通訊作者：劉 洋，E-mail:lyfull@163.com。