戴 丹 胡東輝 張建軍
(湖北省中山醫院肝病科,湖北 武漢 430033)
在我國,由于乙型肝炎病毒(HBV)高發病率,肝癌是第二大最常見的惡性腫瘤〔1,2〕。目前對晚期肝癌的治療選擇有限,研發有效的肝癌治療方法是非常有必要的。以樹突細胞(DC)為基礎免疫治療肝癌患者的研究表明DC接種和免疫治療可能是一個安全有效的肝癌治療方案〔3〕。已知每個T細胞亞群的分化和功能由特定的轉錄因子(TF)調控,如Runx1和Runx3,這些TF在Th1與Th2激活或沉默細胞因子轉錄基因、γ干擾素(IFN-γ)和白細胞介素(IL)-4的過程中,Th直接與表達于T細胞的T-box(T-bet 和GATA3)相互作用〔4〕。與之相應的特異性TF分別為T-bet和GATA-3。研究表明Th1/Th2細胞平衡或失衡在一些生理病理過程中起重要作用〔1,2,5〕,檢測這些細胞相對應的TF比值,即T-bet/GATA-3,會更客觀反映Th1/Th2細胞分化〔3,6〕。因此,研究Th1/Th2細胞在其TF水平的平衡結果將更為顯著。本研究中,我們采用熒光實時定量PCR(RT-qPCR)法檢測肝癌患者和健康對照者外周血單個核細胞(PBMC)的Th1-、Th2-特異性TF(分別為T-bet,GATA-3)mRNA表達水平,以闡明Th1/Th2細胞失衡與肝癌間的關系。
1.1一般資料 湖北省中山醫院2014年1月至2015年1月初次診斷為肝癌并需外科手術治療的患者23例為肝癌組,體檢中心健康者21例為對照組,均無自身免疫性疾病(如糖尿病,甲狀腺功能亢進等)和免疫治療等病史。肝癌組中有乙型肝炎病史者19例。與對照組相比,肝癌組谷丙轉氨酶(ALT)、谷草轉氨酶(AST)、谷氨酰轉肽酶(GGT)、總膽固醇(TC)均顯著升高(P<0.05)。兩組年齡、性別、漢族比例、體重指數(BMI)、堿性磷酸酶(ALP)等無差異(P>0.05)。見表1。

表1 兩組研究對象一般臨床特點
1.2方法 采集所有受試者的空腹外周靜脈血標本,收集于真空血液收集管中,以乙二胺四乙酸(EDTA)為抗凝血劑,并于采樣后4 h內完成樣本處理。
1.3主要儀器和試劑 ABI 7500自動熒光定量PCR儀,ABI 9700 PCR儀和ABI 3900高通量DNA合成儀均購自Applied Biosystems Inc.(美國)。ELITE 200電泳設備和Dolphin-DO凝膠成像系統購自WEALTEC(美國)。RCO3000T-5-VBC CO2細胞培養孵化器購自KENDRO(美國)。CK40-32PH倒置顯微鏡購自奧林巴斯(東京,日本)。Trizol法RNA提取試劑盒購自TaKaRa(日本)。反轉錄緩沖液(5×),PCR緩沖液,Taq酶購自達納基因(中國廣州)。人體淋巴細胞分離管購自達科為生物技術公司(中國深圳)。 RPMI1640細胞培養基購自Gibco(美國)。
1.4PCR引物的設計和合成 在GenBank搜索靶基因(T-bet,GATA-3)的mRNA序列,采用Primer Express2.0軟件進行基因引物設計。引物序列:T-bet上游引物:5'-CGGCTGCATATCGTTGAGGT-3',下游引物:5'-GTCCCCATTGGCATTCCTC-3',擴增片段:107 bp;GATA-3上游引物:5'-TCATTA AGCCCAAGCGAAGG-3',下游引物:5'-GTCCCCATTGGCATTCCTC-3',擴增片段:107 bp;β-actin上游引物:5'-GCATGGGTCAGAAGGATTCCT-3',下游引物:5'-TCGTCCCAGTTGGTGACG AT-3',擴增片段:106 bp。
1.5細胞總RNA提取和實時PCR(RT-PCR) 用含有淋巴細胞分離液的淋巴細胞分離管分離外周靜脈血淋巴細胞。調節淋巴細胞至(1~5)×106/ml,并在37℃、5%CO2培養箱中溫育培養4~8 h,使細胞附著管壁。分離淋巴細胞,于離心機在12 000 r/min離心15 min,收集懸浮淋巴細胞。用Trizol試劑溶解沉淀細胞。根據試劑盒說明書從淋巴細胞中分離總RNA。4 μl模板RNA用于逆轉錄反應,在ABI 9700進行,條件:37℃保溫1 h,95℃ 3 min。5 μl反轉錄cDNA模板用于PCR反應,采用ABI 7500自動熒光定量PCR儀。用無菌雙蒸水用作陰性對照。PCR條件:93℃變性3 min,然后93℃ 30 s、55℃ 45 s和72℃ 45 s反應40個循環。PCR完成后,由計算機軟件進行自動分析數據,計算靶基因和內參基因拷貝數。
1.6統計學方法 采用SPSS19.0軟件進行t檢驗。
肝癌組PBMC T-bet mRNA水平顯著低于對照組(P<0.01),GATA-3 mRNA水平顯著高于對照組(P=0.024),T-bet mRNA/GATA-3 mRNA明顯低于對照組(P=0.031),見表1。

表1 兩組T-bet、GATA-3 mRNA表達水平比較
目前對晚期肝癌的治療選擇有限,研發有效的肝癌治療方法是非常有必要的。既往研究表明,Th1/Th2比例失衡可能導致一些疾病的發生,如癌癥、自身免疫性疾病、過敏性疾病、內分泌疾病、感染性疾病和器官移植排斥反應〔7,8〕。正常情況下,Th1細胞,Th2細胞與Th17細胞結合,最終形成CD4+T效應細胞調節網〔9〕。當幼稚CD4+T細胞受外部抗原的刺激,其根據不同細胞因子的作用而增殖和分化成多種CD4+T效應細胞。IL-12和IFN-γ誘導幼稚CD4+T細胞向Th1細胞分化。IL-12是決定CD4+T分化成Th1細胞的一個關鍵細胞因子,與其受體IL-12R的結合可誘導和激活信號轉導因子和轉錄蛋白(STAT)4的活化,這可上調IFN-γ,并可激活STAT1和Th1細胞分化的特異TF-T-bet〔10〕。Th1細胞產生的IFN-γ可調節細胞免疫和抗移植物反應,并起到抗感染和抗腫瘤的重要作用。而IL-4可誘導活化的CD4+T細胞分化成Th2細胞。IL-4與其受體IL-4R結合,激活STAT6,也激活Th2細胞特異性的TF GATA-3〔11,12〕。Th2細胞分泌IL-4,IL-5和IL-13,這可調節體液免疫和過敏反應,并參與系統性自身免疫性疾病的發生。
Th2型細胞因子在惡性皮膚癌患者表達顯著,而Th1型細胞因子則主要表達于良性皮膚癌患者〔13〕。此后,在許多惡性腫瘤中觀察到Th2型細胞因子,包括非小細胞肺癌、絨毛膜癌和神經膠質瘤〔14,15〕。研究發現在肝癌外周血Th1/Th2細胞比例失衡,顯示Th2型細胞因子優勢表達,并有隨臨床分期及疾病惡化程度增加而增加的趨勢,表明Th2型細胞因子的表達與原發性肝癌的進展有關〔16〕。 TF GATA-3的優勢表達也發生于乳腺癌和胰腺癌〔17,18〕。本研究表明,肝癌患者PMBC T-bet的表達降低而GATA-3的表達增加,T-bet/GATA-3比值顯著降低,且GATA-3表達顯著,顯示在轉錄水平存在Th2細胞漂移。Th2細胞漂移是癌細胞免疫逃逸的常見機制之一,且與癌癥發生、發展、轉移和再發生有關。因此,糾正Th1/Th2細胞失衡可能是癌癥免疫療法的一個重要途徑。
1Bosch FX,Ribes J,Díaz M,etal.Primary liver cancer:worldwide incidence and trends〔J〕.Gastroenterology,2004;127(5 Suppl 1):S5-S16.
2Chen JG,Zhang SW.Liver cancer epidemic in China:past,present and future〔J〕.Semin Cancer Biol,2011;21(1):59-69.
3Lee WC,Wang HC,Hung CF,etal.Vaccination of advanced hepatocellular carcinoma patients with tumor lysate-pulsed dendritic cells:a clinical trial〔J〕.J Immunother,2005;28(5):496-504.
4Wong WF,Kohu K,Chiba T,etal.Interplay of transcription factors in T-cell differentiation and function:the role of Runx〔J〕.Immunology,2011;132(2):157-64.
5Saito S,Nakashima A,Shima T,etal.Th1/Th2/Th17 and regulatory T-cell paradigm in pregnancy〔J〕.Am J Reprod Immunol,2010;63(6):601-10.
6Chakir H,Wang H,Lefebvre DE,etal.T-bet/GATA-3 ratio as a measure of the Th1/Th2 cytokine profile in mixed cell populations:predominant role of GATA-3〔J〕.Immunol Methods,2003;278(1-2):157-69.
7Chapoval S,Dasgupta P,Dorsey NJ,etal.Regulation of the T helper cell type 2(Th2)/T regulatory cell(Treg)balance by IL-4 and STAT6〔J〕.J Leukoc Biol,2010;87(6):1011-8.
8Yagi R,Zhu J,Paul WE.An updated view on transcription factor GATA3-mediated regulation of Th1 and Th2 cell differentiation〔J〕.Int Immunol,2011;23(7):415-20.
9Li MO,Flavell RA.TGF-α:a master of all T cell trades〔J〕.Cell,2008;134(3):392-404.
10Monteleone G,Pallone F,MacDonald TT.Interleukin-21:a critical regulator of the balance between effector and regulatory T-cell responses〔J〕.Trends Immunol,2008;29(6):290-4.
11Cui G,Florholmen J.Polarization of cytokine profile from Th1 into Th2 along colorectal adenoma-carcinoma sequence:implications for the biotherapeutic target〔J〕.Inflamm Allerg Drug Targets,2008;7(2):94-7.
12De Mello LM,Bechara MI,Solé D,etal.TH1/TH2 balance in concomitant immediate and delayed-type hypersensitivity diseases〔J〕.Immunol Lett,2009;124(2):88-94.
13Yamamura M,Modlin RL,Ohmen JD.Local expression of anti-inflammatory cytokines in cancer〔J〕.Clin Invest,1993;91(3):1005-10.
14劉 杰,田志剛,孫 納,等.人腫瘤細胞中Th2類細胞因子的強勢表達〔J〕.中華腫瘤雜志,1998;20(2):105-7.
15Li G,Hu YS,Li XG,etal.Expression and switching of TH1/TH2 type cytokines gene in human gliomas〔J〕.Chin Med Sci J,2005;20(4):268-72.
16Budhu A,Wang XW.The role of cytokines in hepatocellular carcinoma〔J〕.J Leukoc Biol,2006;80(6):1197-213.
17Voduc D,Cheang M,Nielsen T.GATA-3 expression in breast cancer has a strong association with estrogen receptor but lacks independent prognostic value〔J〕.Cancer Epidemiol Biomarkers Prev,2008;17(2):365-73.
18Gulbinas A,Berberat PO,Dambrauskas Z,etal.Aberrant gata-3 expression in human pancreatic cancer〔J〕.J Histochem Cytochem,2006;54(2):161-9.