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摘要:以粉葛為原料,采用單因子及正交試驗的方法,研究制備粉葛多糖的主要工藝條件(復合酶的量,pH值,溫度,時間)。結果表明,粉葛多糖制的工藝條件為:復合酶的量為016%,溫度30℃,時間100min,pH值為60,這4個因素對于粉葛多糖作用的大小依次為:復合酶量>溫度>時間>pH值。水解溶液中粉葛多糖含量為894mg/100ml。
關鍵詞:粉葛;多糖;復合酶
中圖分類號:TS244文獻標識碼:A文章編號:1004-3020(2017)06-0038-03StudyonthePreparationofKudzuPolysaccharideHeMeijunChenMoWangHuaMuSenGuoKunyuanHuangDonghaiZhangYu
(InstituteoftraditionalChinesemedicine,HubeiAcademyofAgriculturalSciencesEnshi445000)
Abstract:Takingkudzuasrawmaterial,usingthemethodofsinglefactorandorthogonaltest,themainprocessconditionsofpreparationofkudzupolysaccharide(enzymeamount,pHvalue,temperature,time).Theresultsshowthattheprocessconditionsofkudzupolysaccharideswereasfollows:compositeenzymeamountwas0.16%,temperature30,time100min,pHvalueis6,thesizeofthe4factorsfortheeffectofPuerariapolysaccharidewere:compositeenzymedosage>temperature>time>pH.Thecontentofpolysaccharideinhydrolyzedsolutionwas894mg/100ml.
Keywords:PuerariathomsoniiBenth;polysaccharide;compositeenzyme
粉葛是豆科植物葛的變種甘葛藤(PuerariathomsoniiBenth)的干燥根[1],是藥食同源植物,因其含有較高含量的葛根淀粉及葛根黃酮類化合物[2-6],如今已經廣泛的用作糧食、蔬菜、功能食品等原料[7-8]。粉葛的綜合加工研究較多[9-10],如粉葛淀粉、葛根素、葛根總黃酮等的提取。而粉葛多糖的提取分離研究報道較少。本研究的粉葛多糖是由多個單糖分子縮合、失水而成,是一類分子結構復雜且龐大的糖類物質,局部分子結構上連結有少數黃酮母環結構,從分子結構來看,在粉葛的化學成分中,粉葛多糖為一大類功能化合物質,有較好的應有前景,本研究旨在提高粉葛的經濟性狀和加工利用率,為進一步開發粉葛功能產品奠定基礎。
1材料與方法
1.1材料
1.1.1材料與試劑
試驗用粉葛于2016年10月采自恩施市三岔粉葛基地。試劑:苯酚(分析純),葡萄糖(食用級),純凈水,濃硫酸(分析純),氫氧化鈉(分析純),三氯乙酸(分析純),鹽酸(分析純)。
1.1.2儀器
紫外可見分光光度計(UV-1800型,上海儀田精密儀器有限公司);旋轉蒸發儀(RE-201型,上海一科儀器有限公司);真空干燥箱(DZF型,北京永光明醫療儀器廠);粉碎機(自貢市機械廠)。
1.2方法
采用單因子及正交試驗的方法,研究制備粉葛多糖的主要工藝條件(復合酶的量,水解pH值,溫度,時間)。取新鮮粉葛根,除雜洗凈,瀝干,切碎,打漿,放入高壓滅菌鍋中,加入葛根重量8倍的去離子水,加壓至6MPa進行高壓處理100min,卸壓,冷卻至室溫,再向漿液中加入原葛根重量4倍的去離子無菌水制備粉葛多糖,通過控制不同的因素(復合酶的量,水解PH值,溫度,時間),研究適宜多糖制備的最佳工藝。每組處理勻采用了3次重復,求3次平均值。
1.2.1單因子實驗
(1)復合酶的量。加入原葛根重量010%,012%,014%,016%,018%,020%,022%的復合酶(纖維素酶、半纖維素酶、β-葡聚糖酶、木聚糖酶、甘露聚糖酶和果膠酶的混合物),考察復合酶加入量對水解液中多糖含量的影響。
(2)溫度。分別選取溫度分別為20,25,30,35,40,45℃進行試驗。考察不同水解時間對水解液中多糖的含量的影響。
(3)時間。水解在60,70,80,90,100,110,120min進行試驗。考察不同PH值對水解液中多糖的含量的影響。
(4)pH的確定。調節pH為20,30,40,50,60,70??疾觳煌琍H值對水解液中多糖的含量的影響。
湖北林業科技第46卷第6期何美軍,等:粉葛多糖制備工藝研究1.2.2正交試驗
分別以復合酶占原粉葛質量的百分數、水解溫度、水解時間、水解的pH值為4因素,粉葛總多糖的含量為指標設計L9(34)四因素三水平正交試驗(因素與水平見表1),進一步優化粉葛多糖提取的最優工藝參數。
1.2.3檢測方法
粉葛中多糖的檢測,采用苯酚-硫酸法測定多糖的含量,以葡萄糖作為標準,于490nm測定標準物質量濃度與吸光度的對應關系,制備標準曲線。倒上清液于10mL離心管中,再加少許5%TCA溶液,倒上清液,重復3次。最后一次將殘渣一起到入離心管。離心轉速3000轉/min,共三次。第一次15min,取上清液。后兩次各5min取上清液到25mL錐形比色管中。最后濾液保持18mL左右。在向比色管中加入6mol/L鹽酸2mL之后搖勻,在90℃水浴鍋中水浴2h。水浴后,用流水冷卻后加入2毫升6mol/L氫氧化鈉搖勻。定容至25mL的容量瓶中。吸取02mL的樣品液,以蒸餾補至20mL,然后加入6%苯酚10mL及濃硫酸5.0mL,搖勻冷卻室溫放置20min以后于490nm測光密度。每次測定取雙樣對照。以標準曲線計算多糖含量。endprint
1.2.4數據處理
采用SPSS19.0數據處理軟件對正交試驗結果進行分析,并對正交試驗結果進行直觀分析。
2結果與分析
2.1單因素試驗結果
(1)復合酶的量。加入原葛根重量010%,012%,014%,016%,018%,020%,022%的復合酶(同上),水解溫度30℃,水解時間120min,調節pH為60時,考察復合酶加入量對水解液中多糖含量的影響(表2)。由表2可知,不同復合酶的量水解溶液中多糖的含量差異顯著,加入原葛根重量016%時,水解液中多糖的含量最高。
(2)溫度。不同水解溫度對多糖含量的影響(見表3)。加入原葛根重量016%的復合酶,水解時間120min,水解PH值為60時,由表3可知,水解溫度30℃時,水解溶液中的多糖含量最高。
(3)時間。不同水解時間對多糖含量的影響見表4。由表4可知,加入原葛根重量016%復合酶,水解溫度30℃,水解pH值為60,水解時間為100min時,水解溶液中的多糖含量最高。
(4)pH值。不同pH值對水解溶液中多糖含量的影響見表5。由表5可知,加入原葛根重量016%復合酶,水解溫度30℃,水解時間為100min,水解pH值為60時,水解溶液中的多糖含量最高。
2.2正交試驗結果
分別以加入復合酶的量,水解溫度、水解時間、水解pH值為4因素,溶液中多糖的含量為指標設計L9(34)四因素三水平正交試驗,進一步優化復合酶提取粉葛多糖的最優工藝參數。由表6可以看到,4個因素對粉葛多糖的含量影響均極為顯著,但其影響程度高的大小有較大差異,采用正交試驗對水解條件進行優化,結果表明,粉葛多糖含量高的工藝條件為A3B2C3D3,即為復合酶的量為016%,水解溫度30℃,水解時間100min,pH值為60。方差分析結果見表7,由表7可以看出,正交模型的方差分析顯著,模型R2=0991表明該正交模型能夠很好的模擬試驗。復合酶的量,水解溫度、水解時間、水解pH值對粉葛多糖的含量的影響均達到極顯著(P<001)。
3結論
本研究的粉葛多糖制備工藝參數是復合酶的量為016%,水解溫度30℃,水解時間100min,pH值為60。這4個因素對于粉葛多糖含量作用的大小依次為:A>B>C>D,即復合酶量>水解溫度>水解時間>pH值。該工藝簡單易操作,綠色無污染。在工業化生產中,會因為設備大小及性能變化而變化。粉葛多糖為一大類功能化合物質,有較好的應有前景,本研究旨在提高粉葛的經濟性狀和加工利用率,為進一步開發葛根功能產品奠定基礎。
參考文獻
[1]許國鈞.中草藥彩色圖譜[M].福州:福建科學技術出版社,1990.
[2]蔡寶昌,劉訓江.常用中藥材HPLC指紋圖譜測定技術[M].北京:化學工業出版社,2005.
[3]周國海,于華忠,李國章,等.葛根中總黃酮及葛根素的含量測定[J].湖南林業科技,2004,31(5):7172.
[4]JiangRW,LauKM,LamHM,etal.AcomparativestudyonaqueousrootextractsofPuerariathomsoniiandPuerarialobatabyantioxidantassayandHPLCfingerprintanalysis[J].JournalofEthnopharmacology,2005,96(1/2):133138.
[5]AraKirakosyan,PeterBK,SaraWarber,etal.QuantificationofmajorisoflavonoidsandLcanavanineinseveralorgansofkudzuvine(Puerariamontana)andinstarchSamplesderivedfromkudzuroots[J].PlantScience,2003,164:883888.
[6]AdamMatkowski.InvitroisoflavonoidproductionincallusfromdifferentorgansofPuerarialobata(Wild.)Ohwi[J].PlantPhysiol,2004,161(3):343346.
[7]秦丹,譚興和,林親錄.葛根采后生理研究[J].保鮮與加工,2005,5(1):2628.
[8]王美東,李常行,孫欽美.葛根提取工藝的正交設計試驗[J].齊魯事,2005,24(1):4546.
[9]李玉山.葛根的綜合開發與利用[J].林產化學與工業,2009,29(6):109115.
[10]施英英,薛培儉,夏黎明.酶法提取葛根渣中異黃酮的研究[J].林產化學與工業,2006,26(1):6264.
(責任編輯:夏劍萍)endprint