韓峰,顏楠,李俠,費舟
[空軍軍醫大學附屬醫院(西京醫院) 1.神經外科,2.檢驗科, 陜西 西安 710032]
創傷性腦損傷(traumatic brain injury,TBI)具有發生率高、致殘率高、死亡率高、治愈率低的特點[1-3]。TBI嚴重威脅人類健康,是影響人類幸福生活的重要原因。如今,藥物治療TBI一直是國內外學者研究的熱點[4-6]。三七是我國傳統的中藥,始載于《本草綱目》,因“其葉左三右四,故名三七”而得名[7-8]。三七的主要的活性成份是三七總皂苷(panax notoginseng saponins,PNS)。研究表明,PNS對神經元細胞損傷具有保護作用[9],但其具體作用機制還不是很清楚。本研究利用過氧化氫H2O2刺激HT22細胞,建立體外神經細胞抗氧化刺激模型,研究PNS對HT22細胞的保護作用,闡明其抗氧化損傷的作用機制,為臨床應用提供實驗依據。
1.1.1試劑PNS(成都華高藥業有限公司),海馬神經元HT22細胞株(空軍軍醫大學附屬醫院全軍神經外科研究所)。胎牛血清、1640培養基、0.25%胰蛋白酶購自美國Gibco公司,CCK-8試劑盒(批號:CK04-1000T)(日本 Dojindo公司),青霉素、鏈霉素購自美國Sigma公司,乳酸脫氫酶(lactate dehydrogenase,LDH)(南京建成生物工程研究所)。
1.1.2儀器微孔酶聯檢測儀(美國伯樂公司),Leica倒置熒光顯微鏡(德國萊卡相機股份有限公司)。
1.2.1HT22細胞培養HT22細胞在含10%胎牛血清、1640培養基中,置于37℃、5%二氧化碳CO2孵箱中培養,取對數生長期細胞,0.25%胰蛋白酶消化傳代培養,進行后續實驗研究。
1.2.2H2O2模型的建立取培養對數期HT22細胞,胰酶消化,制備單細胞懸液,計數并接種細胞1×105個/ml于96孔板,細胞貼壁后,分別加入0、50、100、200、400和800μmol/L H2O2溶液刺激24 h,加入CCK-8 10μL/孔,37℃培養箱孵育1~4 h。在酶聯檢測儀450 nm處讀取光密度值(optical density,OD),實驗重復3次。細胞活性(%)=[OD加藥-OD空白]/[OD0加藥-OD空白]×100%。
1.2.3PNS對HT22的保護接種細胞于96孔板,每組設6個復孔,貼壁后加入0.00、0.01、0.10、1.00、10.00、100.00 mg/L PNS作用24 h后進行CCK-8法檢測,實驗重復3次。
1.2.4PNS對氧化應激HT22細胞活性的影響取培養對數期細胞,調整細胞密度至1×105個/ml,接種于96孔板。分別設空白對照組、對照組(正常細胞培養HT22),模型組(H2O2500μmol/L),同時模型組在分別加入不同濃度(0.00、0.01、0.10、1.00、10.00和100.00 mg/L)PNS作用2 h后,再換500μmol/LH2O2作用24 h,進行CCK-8法檢測,在450 nm處讀取OD值,實驗重復3次。
1.2.5細胞形態學觀察取對數生長期HT22細胞進行計數后接種于6孔板,當細胞密度匯合至75%時,加入10 mg/L PNS作用2 h,加入500μmol/L H2O2損傷細胞,用相差顯微鏡觀察并拍攝細胞形態。
1.2.6LDH的釋放收集細胞上清液,按LDH說明書進行操作,檢測細胞損傷過程中細胞的凋亡和LDH的釋放,而活細胞沒有該功能。細胞LDH釋放率(%)=細胞培養基中測定的酶活性單位/(細胞裂解液測定的酶活性單位+細胞培養基測定的酶活性單位)×100%。數值越大,表明細胞活性越差,細胞損傷程度越高。
1.2.7流式細胞術分別設對照組、模型組(H2O2處理組)和PNS+H2O2組,收集各組細胞懸液,調整細胞密度至1×106個/ml,磷酸鹽緩沖溶液清洗2次。按照Annexin V FITC試劑盒說明書進行操作,分別加入10μl Annexin V–FITC和5μl PI輕柔振蕩混勻,4℃避光反應30 min,用流式細胞儀定量分析細胞凋亡水平。
數據分析采用SPSS 12.0統計軟件,計量資料以均數±標準差(±s)表示,多組比較用方差分析,方差齊則兩兩比較用Dunnett-t檢驗,P<0.05為差異有統計學意義。
各組HT22細胞生長活性比較,經方差分析,差異有統計學意義(F=108.257,P=0.0378),不同濃度的H2O2對HT22細胞增殖的影響不同。進一步兩兩比較經Dunnett-t檢驗,50和100μmol/L H2O2對HT22細胞無明顯抑制效應(P>0.05);200、400和800μmol/L H2O2對HT22細胞誘導24 h后,損傷明顯,抑制率分別達(16.277±3.315)%、(35.043±4.342)%和(73.583±3.403)%,差異有統計學意義(P<0.05)。見圖1。
各組HT22細胞生長活性比較,經方差分析,差異有統計學意義(F=18.422,P=0.025),不同濃度PNS對HT22細胞均有保護作用,且伴隨PNS濃度增加,HT22細胞無明顯依賴性。在0.01~1.00 mg/L PNS作用下,HT22細胞增殖不明顯(P>0.05),而PNS在10.00 mg/L濃度時,能促進HT22細胞生長活性(P<0.05)。當100.00 mg/L PNS作用HT22細胞時,具有抑制細胞增殖活性效應(P<0.05)。見圖2。
HT22細胞經500μmol/L H2O2作用后,細胞生長受抑制。各組HT22細胞生長活性比較,經方差分析,差異有統計學意義(F=31.970,P=0.003)。當PNS對HT22預保護2 h后,發現0.10~10.00 mg/L PNS對H2O2損傷均具有保護作用,且濃度不同,保護程度不同,其中10.00 mg/L PNS的保護效果最顯著(P<0.05)。而PNS在100 mg/L時,對細胞無保護作用,反而經H2O2誘導后會加重細胞損傷,降低細胞活性。見圖3。
H2O2損傷HT22細胞后,出現大量的細胞裂解,細胞活性降低,導致LDH含量升高。不同濃度PNS對HT22細胞進行預保護后,各組LDH含量比較,經方差分析,差異有統計學意義(F=167.536,P=0.008),LDH 的釋放均降低。 與 PNS+H2O2組(0.01~10.00 mg/L PNS)比較,隨著PNS濃度增加,LDH含量逐漸降低。LDH檢測結果顯示,對照組LDH含量較少,模型組細胞中LDH含量是對照組的7~8倍(P<0.05)。實驗結果證實,PNS能提高H2O2誘導下的HT22細胞存活率,對HT22細胞具有保護作用。見圖4。

圖1 不同濃度H2O2對HT22細胞增殖活性的影響

圖2 PNS對HT22細胞的保護效應

圖3 PNS對H2O2損傷后HT22細胞活性的影響

圖4 PNS對H2O2損傷后HT22細胞LDH含量的影響
通過倒置熒光顯微鏡觀察HT22細胞形態變化,發現對照組細胞形態完整,多呈多邊形,折光性好。經500μmol/L H2O2作用24 h后,細胞形態發生明顯改變,細胞密度降低,細胞核皺縮。10.00 mg/L PNS預處理2 h后,加入500μmol/L H2O2作用24 h后發現,與對照組相比細胞密度減少,但細胞形態有伸展的梭形。見圖5。
流式細胞術檢測發現,對照組HT22細胞幾乎沒有凋亡,而500μmol/L H2O2作用24 h后細胞凋亡率升高,早晚期占(36.313±3.623)%,壞死率為(4.043±1.261)%,10.00 mg/L PNS預處理2 h后,加入500μmol/L H2O2作用24 h,細胞凋亡率遞減,早晚期占(15.732±2.284)%,壞死率為(2.042±0.546)%,表明PNS對HT22細胞具有保護作用,能減輕H2O2對HT22細胞的損傷程度。見圖6。

圖5 PNS對H2O2損傷后HT22細胞形態變化的影響

圖6 HT22細胞凋亡情況
TBI包括創傷部位的直接損傷和創傷后缺血缺氧、鈣通道異常,以及過氧化病理過程所介導的繼發性損傷[10]。TBI治療手段包括手術、亞低溫和藥物治療等。目前,中草藥輔助治療腦損傷已成為國內外研究的熱點[11],但仍需要研究者不斷研究與探討,使腦損傷患者能獲得更佳的治療效果。
PNS具有多方面的藥理功效,不僅具有抗血小板凝聚、溶栓及提高纖溶酶原激活作用,還能促進造血功能、抑制心肌收縮、擴張腦血管、耐缺氧和抗休克[12-13]。如今,三七在鎮痛、抗炎、抗腫瘤、抗衰老、提高免疫調節功能方面研究得越來越多[14-15]。本研究以H2O2對HT22細胞造成損傷,成功建立缺血性損傷離體模型,以PNS作用H2O2損傷后的HT22細胞,結果證實H2O2對HT22細胞的損傷,以及PNS對HT22細胞的保護。PNS降低H2O2對HT22細胞的損傷,以此保護神經元細胞。
常用的細胞氧化損傷模型有2種:H2O2損傷模型和過氧化脂損傷模型,其中H2O2的應用最為廣泛[16]。同時H2O2和細胞的氧化應激(oxidative stress,OS)密切相關[17]。OS是機體遭受外界刺激后,體內的氧化和抗氧化作用失衡,導致體內高活性分子產生逐漸增多,引起組織細胞損傷,自由基在體內產生負面作用,被認為是導致衰老和疾病的一個重要因素[18]。腦外傷后,損傷部位的腦組織會產生大量的自由基,引起神經元水腫和壞死,造成神經元氧化應激損傷,是導致繼發性腦損傷的重要原因。
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