孫怡 李惠 吳頤 李健 申龍樹 王耀輝 王劍蓉 章宜芬
南京中醫藥大學附屬江蘇省中醫院1病理科/國家中醫藥管理局分子生物學三級實驗室,2神經外科(南京 210029)
膠質瘤是最常見的顱內惡性腫瘤,其發病率約占原發性腦腫瘤的40%~50%左右,而且呈逐年上升趨勢[1-2]。近年來,分子標記物檢測作為補充診斷依據、預測預后疾病的手段,極大推進了原有的單純組織學分類。異檸檬酸脫氫酶1(isocitrate dehydrogenase 1,IDH1)、異檸檬酸脫氫酶 2(isocitrate dehydrogenase 2,IDH2)基因是膠質瘤研究的熱點,已有大量研究表明,該基因突變是膠質瘤的一個獨特類型。國外研究報道IDH1突變好發于年輕膠質瘤患者,早于p53基因突變的發生,是膠質瘤發生發展中的早期分子事件,IDH1突變的患者預后相對較好;國內研究報道IDH在少突膠質細胞腫瘤和混合性膠質瘤中突變較高,這均表明IDH基因可能成為新的治療靶點。傳統病理分型中的該基因型特征研究較少,本研究通過研究傳統病理分型中該基因的特征及分布規律,為膠質瘤分子病理學分類提供新的依據,也為臨床治療和新藥開發提供新的靶點。
1.1 一般資料 收集2013年1月至2016年12月我院手術切除、臨床資料完整腦膠質瘤樣本46例。其中男25例,女21例,年齡12~73歲,中位年齡50.0歲。根據2007年WHO中樞神經系統腫瘤分級標準進行組織學分類分級,兩位高年資病理醫師復診,共有Ⅰ級1例,Ⅱ級10例,Ⅲ級12例,Ⅳ級23例。以5例同期手術的腦膜瘤樣本作為陰性對照。
1.2 方法
1.2.1 IDH1、IDH2基因,p53基因突變檢測 根據HE染色切片確認膠質瘤腫瘤區域并刮取相應白片腫瘤組織,按操作手冊(Qiagen GeneRead DNA FFPE kit,德國)提取DNA。PCR擴增后凝膠電泳觀察產物是否為目的條帶,利用Bigdye Terminator(v3.1)進行測序反應,產物上ABI 3500型基因分析儀(ABI公司,美國)正反向測序,測序結果用Seqscape軟件與標準序列進行比對,檢測分析IDH1基因R132位點、IDH2基因R172位點以及p53基因第5~8外顯子突變狀態,具體引物序列如下:IDH1上游:5′-TGTGGAAATCACCAAATGGCAC-3′;IDH1 下 游 :5′-ACATACAAGTTGGAAATTTCTGGGC-3′;IDH2 上游:5′-TCCCAATGGAACTATCCGGAAC-3′;IDH2 下 游 :5′-GACAAGAGGATGGCTAGGCG-3′;p53-exon5-6上游:5′-TACTCCCCTGCCCTCAACAAGA-3′;p53-exon5-6下游:5′-CAAATAAGCAGCAGGAGAAAGC-3′;p53-exon7上游:5′-TTGCCACAGGTCTCCCCAAG-3′;p53-exon7 下游:5′-GTCCCAAAGCCAGAGAAAAG-3′;p53-exon8上游:5′-AGGACAAGGGTGGTTGGGAG-3′;p53-exon8 下 游 :5′-TGGGCAGTGCTAGGAAAGAG-3′。
1.2.2 Ki-67蛋白表達檢測 鼠抗人Ki-67蛋白一抗、試劑盒及顯色液購自福州邁新生物技術開發有限公司,免疫組化染色采用SP法。樣本常規福爾馬林固定、石蠟包埋,切3 μm薄片,脫蠟水化,在微波爐中用檸檬酸鈉抗原修復液中100℃抗原修復15 min,PBS沖洗后用雙氧水阻斷15 min,沖洗后用羊血清室溫下阻斷40 min,加入一抗,4℃冰箱過夜,PBS沖洗后,加入二抗,37℃,40 min,PBS沖洗后,DAB顯色。結果判讀:由我院病理科醫師對免疫組織化學染色進行評價,參照《邁新免疫和分子病理學產品目錄》抗體表達特定,以細胞核中出現淺黃色至棕褐色信號為陽性細胞,選取腫瘤細胞豐富、陽性細胞較多的熱點區域,計數5個高倍鏡視野,計算視野內腫瘤細胞中陽性細胞平均占比(%),參考文獻[3]報道以≤30%判為低表達,>30%判為高表達。
1.3 統計學方法 所有計數資料表示為多個樣本率(構成比),應用SPSS 24.0軟件,采用χ2或Fisher精確概率法檢驗IDH1突變與臨床特征(性別、年齡、腫瘤位置、腫瘤最大徑、WHO分級等)以及分子標志物Ki-67表達的差異性分析,以P<0.05為差異具有統計學意義。
2.1 膠質瘤樣本WHO分類分級 包括胚胎發育不良性神經上皮腫瘤(WHOⅠ級)1例,星形細胞瘤(WHOⅡ級)5例,少突膠質細胞瘤(WHOⅡ級)4例,少突星形細胞瘤(WHOⅡ級)1例,間變型星形細胞瘤(WHOⅢ級)7例,間變型少突膠質細胞瘤(WHOⅢ級)3例,間變型少突星形細胞瘤(WHOⅢ級)2例,膠質母細胞瘤(WHOⅣ級)23例(其中3例為繼發)。發生部位:額葉19例,其他部位27例。見圖1。
2.2 IDH1、IDH2突變檢測結果 檢測發現32.6%(15/46)的樣本發生IDH1基因突變,均位于第132位密碼子(c.G395A,p.R132H),見圖2,未發現IDH1基因其他突變類型和IDH2基因突變。IDH1基因突變與各項臨床病理特征間的關系見表1。統計顯示,較低年齡(P=0.028)、腫瘤位置發生于額葉(P=0.002)、WHOⅡ-Ⅳ級組織學分級(P=0.047)、Ki-67蛋白低表達(r=-0.313,P=0.034)均與IDH1基因突變顯著相關。而患者性別、腫瘤最大徑與IDH1基因是否突變無顯著性相關。突變型樣本中男10例,女5例,年齡12~62歲,中位年齡47.0歲;31例野生型樣本中男15例,女16例,年齡14~73歲,中位年齡53.0歲。不同WHO級別膠質瘤之間IDH1基因突變陽性率分別為:Ⅱ級 60%(6/10),Ⅲ級 41.7%(5/12),Ⅳ級17.4%(4/23,其中3例為繼發),突變率從低級別膠質瘤到高級別膠質瘤呈下降趨勢,差異有統計學意義(P<0.05)。73.3%(11/15)突變位于額葉。
2.3 p53基因突變檢測結果 檢測第5、6、7、8外顯子突變情況,發現4例標本發生突變,突變位點主要位于第7、8外顯子,均診斷為膠質母細胞瘤(WHOⅣ級,25%),并伴IDH1野生型。見圖3。
2.4 Ki-67陽性表達情況 Ki-67陽性染色定位于細胞核,呈棕黃色顆粒狀。在46例膠質瘤組織中,均有發現腫瘤細胞陽性表達,其中低表達65.2%(30/46),高表達34.8%(16/46)。不同級別膠質瘤中Ki-67表達見表2,WHOⅡ~Ⅳ級膠質瘤表達明顯升高,Ki-67表達與WHO分級成顯著線性正相關(r=0.700,P< 0.001)。

圖1 不同級別膠質瘤HE染色圖(×100)Fig.1 HE staining of different levels of gliomas(×100)

圖2 IDH1基因395位堿基G/A雜合突變Fig.2 Heterozygous 395G/A IDH1 mutation

表1 納入本研究患者臨床病理特征以及IDH1-R132H突變分布情況Tab.1 The relationship between IDH1-R132H mutation and clinical pathology
神經膠質瘤在神經上皮性腫瘤中占60%,是顱內最常見的腫瘤。不同級別膠質瘤有不同發生機制,預后差別大。尋找相關的分子生物學標記有重要意義。2006年美國癌癥基因組圖譜計劃對206例膠質母細胞瘤行高通量基因組學分析,發現IDH1或IDH2突變腫瘤生存期更長[4-5]。2008年PARSONS等[6]發現 12%的樣本發生 IDH1基因R132H突變;另有研究[7]發現IDH2同工酶基因R172位點也是膠質瘤突變熱點。

圖3 p53基因突變圖Fig.3 Mutations in p53 gene

表2 Ki-67在WHOⅡ~Ⅳ級別膠質瘤中的表達Tab.2 Ki-67 expression in WHOⅡ~Ⅳgliomas 例(%)
IDHl基因突變只在膠質瘤的某些特定亞型中發生,其陽性突變患者年齡更低,主要發生在彌漫性星形細胞瘤、少膠質細胞瘤等(WHOⅡ級)和繼發性膠質母細胞瘤(WHOⅣ級)[7-8],提示這幾種腫瘤可能具有相同的起源途徑,有助于膠質瘤的診斷分型和鑒別診斷。在各級別膠質瘤中,相對于IDH野生型,IDH基因突變的患者預后較好[9],IDH突變狀態可以輔助診斷腦膠質瘤。本研究檢出32.6%的樣本發生IDH1-R132H突變,發生于WHOⅡ~Ⅲ級的膠質瘤,3例繼發性膠質母細胞瘤均發生突變,原發性膠質母細胞瘤無一檢出。較低年齡、腫瘤位置發生于額葉、WHOⅡ~Ⅳ級組織學分級、Ki-67蛋白低表達均與IDH1基因突變顯著相關。IDH1突變陽性率從低級別(WHOⅡ級)到高級別(WHOⅣ級)顯著下降,提示膠質瘤患者的預后與IDH1基因突變存在密切聯系。IDH1突變與膠質瘤病理分級、惡性程度及預后密切相關,在疾病發生初始階段檢測IDH1基因突變狀態,輔助病理醫師診斷分級,協助臨床醫師制定合理治療方案,從而提高膠質瘤治愈率。
WHO(2016)中樞神經系統腫瘤分類首次將分子檢測納入腦腫瘤診斷標準,所有組織學級別均應首先檢測IDH突變狀態,以及1p/19q、ATPX、p53等基因變異情況。p53基因是一種抑癌基因[10],80%~90%的腫瘤p53基因突變發生在中間區域(95-288密碼子)[11]。原發性膠質母細胞瘤p53陽性率高于其他類型膠質瘤,并與IDH1突變無相關性。本研究發現4例樣本p53基因突變,突變位點位于第7、8外顯子,均為膠質母細胞瘤樣本伴IDH1野生型,或與腫瘤高度惡性相關,根據其分子分型(IDH1/2野生型,p53突變型)預后最差[9]。目前p53基因突變主要檢測方法是用突變型p53抗體免疫組化檢測,但p53免疫組化陽性與p53基因突變二者之間的關系尚存爭議[11],不能完全用p53突變型免疫組化抗體陽性取代p53基因突變檢測。與國外報道相比[12],本研究突變率偏低,或與中國人p53突變熱點差異性和入組樣本病理學分級有關。
Ki-67與細胞周期密切相關,能直接反映細胞增殖情況,與腫瘤進展、轉移密切相關。Ki-67在正常腦組織中不表達,在膠質瘤細胞中異常高表達,Ki-67陽性標記指數越高,則惡性程度(分級)越高,預后越差[13]。本研究結果顯示Ki-67蛋白表達水平隨膠質瘤病理分級的增高而顯著增高,高級別膠質瘤表達水平明顯高于低級別膠質瘤,Ki-67表達與WHO分級成顯著線性正相關,提示Ki-67過表達可能是膠質瘤形成過程中的晚期事件,隨腫瘤惡性程度升高而表達增高,反映較差預后。而本研究顯示Ki-67蛋白低表達與IDH1基因突變顯著相關,與文獻[14]報道相似,均可作為膠質瘤預后評估的指標[15]。
綜上,本研究通過檢測膠質瘤IDH1、IDH2基因、p53基因突變狀態,檢測Ki-67表達水平,發現在各種類型中,中高級別(WHOⅡ/Ⅲ級)膠質瘤IDH1基因突變比率最高,提示該類型有特殊性,臨床需要高度關注,應盡量對該類型進行基因檢測;p53基因突變主要發生于膠質母細胞瘤中。IDH1基因突變、Ki-67表達水平與膠質瘤額惡性程度密切相關,IDH1、p53、Ki-67聯合檢測有利于膠質瘤的診斷分級和預后評估,具有一定的臨床價值。IDH1基因突變與Ki-67表達在膠質瘤的發展中是否存在內在聯系以及相關臨床意義,尚需進一步研究。
參考文獻
[1]LOUIS D N,PERRY A,REIFENBERGER G,et al.The 2016 World Health Organization classification of tumors of the central nervous system:a summary[J].Acta Neuropathol,2016,131(6):803-820.
[2]張偉曉,許小飛,盛丹丹,等.(99m)Tc-MIBI腦腫瘤陽性顯像聯合MRI成像對膠質瘤術后殘留復發的診斷價值[J].實用醫學雜志,2015,31(18):2997-3000.
[3]SKJULSVIK A J,M?RK J N,TORP M O,et al.Ki-67/MIB-1 immunostaining in a cohort of human gliomas[J].Int J Clin Exp Pathol,2014,7(12):8905-8910.
[4]Cancer Genome Atlas Research Network.Comprehensive genomic characterization defines human glioblastoma genes and core pathways[J].Nature,2008,455(7216):1061-1068.
[5]GRAMATZKI D,KICKINGEREDER P,HENTSCHEL B,et al.Limited role for extended maintenance temozolomide for newly diagnosed glioblastoma[J].Neurology,2017,88(15):1422-1430.
[6]PARSONS D W,JONES S,ZHANG X,et al.An integrated genomic analysis of human glioblastoma multiforme[J].Science,2008,321(5897):1807-1812.
[7]YAN H,PARSONS D W,JIN G,et al.IDH1 and IDH2 mutations in gliomas[J].N Engl J Med,2009,360(8):765-773.
[8]WANG H Y,TANG K,LIANG T Y,et al.The comparison of clinical and biological characteristics between IDH1 and IDH2 mutations in gliomas[J].J Exp Clin Cancer Res,2016,35:86.
[9]BAUMERT B G,HEGI M E,VAN DEN BENT M J,et al.Temozolomide chemotherapy versus radiotherapy in high-risk lowgrade glioma(EORTC 22033-26033):a randomised,open-label,phase 3 intergroup study[J].Lancet Oncol,2016,17(11):1521-1532.
[10]UNRUH D,SCHWARZE S R,KHOURY L,et al.Mutant IDH1 and thrombosis in gliomas[J].Acta Neuropathol,2016,132(6):917-930.
[11]TAKAMI H,YOSHIDA A,FUKUSHIMA S,et al.Revisiting TP53 mutations and immunohistochemistry--a comparative study in 157 diffuse gliomas[J].Brain Pathol,2015,25(3):256-265.
[12]BRENNAN C W,VERHAAK R G,MCKENNA A,et al.The somatic genomic landscape of glioblastoma[J].Cell,2013,155(2):462-477.
[13]BAI Y,LIN Y,ZHANG W,et al.Noninvasive amide proton transfer magnetic resonance imaging in evaluating the grading and cellularity of gliomas[J].Oncotarget,2017,8(4):5834-5842.
[14]WANG P F,LIU N,SONG H W,et al.IDH-1R132H mutation status in diffuse glioma patients:implications for classification[J].Oncotarget,2016,7(21):31393-31400.
[15]CAHILL D P,SLOAN A E,NAHED B V,et al.The role of neuropathology in the management of patients with diffuse low grade glioma:A systematic review and evidence-based clinical practice guideline[J].J Neurooncol,2015,125(3):531-549.