(1 青島大學(xué)公共衛(wèi)生學(xué)院,山東 青島 266021; 2 青島市標(biāo)準(zhǔn)化研究院)
銅是一種非常重要的微量元素。它不僅參與蛋白質(zhì)、核酸、脂肪、碳水化合物、維生素等營養(yǎng)物質(zhì)的代謝,而且在人體骨骼發(fā)育、生殖、凝血等生理功能中起著重要的作用。然而,環(huán)境重金屬污染已成為全球問題,環(huán)境銅污染也日趨嚴(yán)重。銅是工業(yè)中常用的重金屬,一項(xiàng)對(duì)電子垃圾拆除中心周圍居住人群的血清銅和尿銅的研究檢測結(jié)果顯示,暴露組人群和對(duì)照組人群的血清銅和尿銅水平均有顯著差異[1]。同時(shí),銅具有的促生長和殺菌作用,使得人們在畜牧業(yè)和農(nóng)業(yè)上大量使用銅相關(guān)制劑[2-4]。銅蓄積或代謝異常可以導(dǎo)致WILSON病[5]和MENKE病[6],銅過載與神經(jīng)性疾病如阿爾茨海默病(AD)等疾病的發(fā)生也有關(guān)系[7-8]。近年來,隨著腫瘤研究的深入,銅與腫瘤的關(guān)系也逐漸成為人們關(guān)注的焦點(diǎn),銅可能是影響人類腫瘤生長的重要因素。臨床流行病學(xué)調(diào)查顯示,部分癌癥病人血清銅含量明顯高于健康人群,與腫瘤的發(fā)生間存在著相關(guān)性,如口腔癌、乳腺癌、宮頸癌、肝癌、肺癌和腦瘤等[9-14],并且適量的銅缺乏是能夠抑制腫瘤發(fā)生的[15-16]。本實(shí)驗(yàn)在前期細(xì)胞實(shí)驗(yàn)研究的基礎(chǔ)上,通過建立H22荷瘤小鼠的模型,選擇適量的銅濃度給小鼠灌胃,觀察銅對(duì)H22荷瘤小鼠腫瘤生長及肝功能和免疫功能的影響。
SPF級(jí)昆明小鼠80只,體質(zhì)量18~22 g,購于山東魯抗藥業(yè)公司(許可證號(hào)scxk(魯)20140007)。適應(yīng)性喂養(yǎng)1周后,按照體質(zhì)量隨機(jī)分為灌胃給水組(A組),灌胃給水+四硫鉬酸銨鹽(TM)組(B組),分別灌胃給予0.06、0.3、1.5 mg/kg硫酸銅組(C、D、E組),分別灌胃給予0.06、0.3、1.5 mg/kg硫酸銅+1 mg/kg TM組(F、G、H組),每組10只小鼠,小鼠每日自由進(jìn)水、進(jìn)食。
根據(jù)上述的分組,用不同濃度的硫酸銅溶液給小鼠灌胃4周,使小鼠體內(nèi)獲得一定量的銅蓄積。隨后,將H22腹水瘤細(xì)胞接種于小鼠右腿部,建立H22肝癌小鼠移植瘤模型(抽取H22腹水瘤小鼠的腹水,在顯微鏡下通過錐蟲藍(lán)染色計(jì)數(shù)(>95%),通過PBS將細(xì)胞數(shù)調(diào)至1×109/L。隨后,以每只5×109個(gè)細(xì)胞/L接種在小鼠的右后腿)。然后,根據(jù)相應(yīng)的分組及硫酸銅繼續(xù)持續(xù)灌胃4周。9周后,將全部小鼠處死,眼球取血。取出移植瘤及肝、脾、胸腺等臟器并稱量。
1.3.1腫瘤發(fā)生情況及體積變化 在接種腫瘤后,每3 d測量一次腫瘤的長和寬并記錄,根據(jù)公式計(jì)算瘤體積(V),公式如下:V=長×寬×寬/2。
1.3.2肝功能及脾臟和胸腺指數(shù)計(jì)算 實(shí)驗(yàn)結(jié)束后,小鼠禁食12 h。眼球取血后,取小鼠的胸腺和脾臟并稱量,通過公式計(jì)算出小鼠的胸腺和脾臟指數(shù)。公式如下:胸腺指數(shù)=胸腺質(zhì)量/(小鼠體質(zhì)量×10),脾臟指數(shù)=脾臟質(zhì)量/(小鼠體質(zhì)量×10)
1.3.3ICP-MS檢測血清銅的含量 取血清0.2~0.5 g。將試樣置于聚四氟乙烯消解罐中,然后加入6 mL硝酸,再加入1 mL過氧化氫,蓋上密封蓋,放入微波消解儀中消解,程序?yàn)樯郎刂?00 ℃,后加熱時(shí)間10 min,控制溫度200 ℃,持續(xù)時(shí)間20 min,冷卻時(shí)間30 min。隨后按照儀器操作規(guī)程,調(diào)整儀器至最佳狀態(tài)。待儀器穩(wěn)定后,按順序依次對(duì)標(biāo)準(zhǔn)溶液、空白溶液和試樣進(jìn)行測定。所得結(jié)果按照以下公式進(jìn)行計(jì)算:X=c×10/m×1000 (X:銅含量,c:當(dāng)前試樣銅濃度,m: 試樣質(zhì)量)。
利用Trizol提取腫瘤組織中的mRNA,用痕量核酸儀檢測mRNA的濃度和純度。隨后用逆轉(zhuǎn)錄試劑盒將mRNA逆轉(zhuǎn)錄成cDNA,然后用PCR儀檢測VEGF和bFGF的表達(dá)。檢測條件如下:95℃預(yù)變性5 min;然后95℃變性10 s,60 ℃退火30 s,共進(jìn)行50個(gè)循環(huán)。引物序列:bFGF F:5′-ACGG-CTGCTGGCTTCTAAGT-3′,R:5′-CAGTGCCA-CATACCAACTGGA-3′;VEGF F:5′-CACCAAA-GCCAGCACATAGG-3′,R:5′-ACCCTTTCCCTT-TCCTCGAA-3′。
實(shí)驗(yàn)結(jié)束后,A、B、C組和F組各有1只小鼠死亡,D組中有2只小鼠死亡,E組和H組中有3只小鼠死亡,G組中有4只小鼠死亡。實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,與A、F、G、H組相比,D、E組腫瘤均有不同程度的增長,差異具有顯著意義(F=9.034,P<0.05)。見表1。
各組小鼠AST、ALT、ALB及胸腺指數(shù)、脾臟指數(shù)比較,差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。見表2。
A~E組血清銅水平分別為(1.43±0.20)、(1.39±0.17)、(1.55±0.22)、(1.64±0.48)、(1.92±0.27)、(1.51±0.35)、(1.23±0.15)、(1.51±0.35)mg/kg,E組血清銅水平與A組相比顯著增高,差異有顯著性(F=3.803,P<0.05)。
隨機(jī)抽取32例血清樣本,檢測結(jié)果顯示,血清銅的水平平均為(1.51±0.35)mg/kg,腫瘤質(zhì)量平均為(3.84±1.11)g,血清銅水平與腫瘤質(zhì)量具有相關(guān)性(r=0.316,P<0.05)。
A~E組腫瘤組織中VEGF mRNA的相對(duì)表達(dá)水平分別為0.29±0.004、0.02±0.001、0.26±0.011、0.34±0.012、0.39±0.016、0.06±0.046、0.01±0.001、0.01±0.001;A~E組小鼠腫瘤組織中bFGFmRNA表達(dá)水平分別為0.28±0.016、0.02±0.001、0.15±0.007、0.25±0.051、0.92±0.27、0.02±0.014、0.04±0.003、0.01±0.001。C、D、E組與A組相比,腫瘤組織中VEGF和bFGF mRNA表達(dá)水平升高,差異有顯著性(F=40.118、197.090,P<0.05)。

表1 各組H22荷瘤小鼠體質(zhì)量及瘤質(zhì)量的變化

表2 各組小鼠肝功能指標(biāo)及胸腺、脾臟指數(shù)比較
肝癌是世界上最常見的惡性腫瘤之一。根據(jù)全國第3次死因回顧性調(diào)查發(fā)現(xiàn),惡性腫瘤中,原發(fā)性肝癌引起的死亡人數(shù)已從第3位升高到第2位[17],嚴(yán)重危害著我國居民的健康,給人類造成了巨大的疾病負(fù)擔(dān)。
肝癌的發(fā)生是多因素、多途徑、多步驟長期作用的結(jié)果,但病因機(jī)制尚未完全闡明,肝癌的預(yù)防仍然是臨床上的難題。肝臟作為銅蓄積的主要器官,當(dāng)銅的蓄積超過肝臟代謝的閾值時(shí),會(huì)損害肝細(xì)胞,引起多種疾病,如WILSON病[5]和MENKE病[6]。銅過量可引起細(xì)胞發(fā)生氧化應(yīng)激,從而產(chǎn)生活性氧(ROS),ROS可以造成脂質(zhì)、蛋白質(zhì)和DNA損傷。ROS同時(shí)也是導(dǎo)致腫瘤發(fā)生和發(fā)展的重要因素[18]。研究顯示,肝對(duì)銅負(fù)載會(huì)啟動(dòng)自身的保護(hù)機(jī)制,即使沒有發(fā)生臨床、生化和形態(tài)上的變化,肝細(xì)胞中HGFb和NF-κB的表達(dá)也會(huì)增加,進(jìn)而增加肝損傷的風(fēng)險(xiǎn)[19]。以往有關(guān)銅的研究多是選擇超過機(jī)體可承受范圍多倍的銅濃度,用以觀察高銅對(duì)動(dòng)物的毒性作用;而有關(guān)機(jī)體可承受的銅濃度對(duì)機(jī)體的作用主要集中在體外細(xì)胞系的研究。但是,人類在現(xiàn)實(shí)生活中接觸高濃度銅的機(jī)會(huì)卻很少。所以本實(shí)驗(yàn)研究所采用的銅和TM的劑量,是根據(jù)中國營養(yǎng)學(xué)會(huì)(CNS)建議的成人銅的適宜攝入量(AI)為2 mg/d,最高可耐受攝入量(UL)為8 mg/d計(jì)算出來的。當(dāng)成人每日攝入0.8~7.5 mg銅時(shí),機(jī)體中的血漿銅濃度、紅細(xì)胞超氧化物歧化酶、血漿銅藍(lán)蛋白和尿銅無明顯變化[20];當(dāng)機(jī)體攝入1 mL的TM時(shí),可以降低人體20%的血銅,既有效地抑制促血管發(fā)生因子的釋放,又不會(huì)對(duì)機(jī)體產(chǎn)生副作用,機(jī)體也能長期耐受[21]。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,各組小鼠肝功能血清理化指標(biāo)間比較差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,說明本實(shí)驗(yàn)所選用的銅和TM的濃度在實(shí)驗(yàn)周期內(nèi)未對(duì)小鼠的肝臟和免疫系統(tǒng)造成損傷。
多數(shù)腫瘤的生長需要銅離子的參與[22],長期飲用高銅濃度(公眾供水系統(tǒng)中規(guī)定的最高含量)的水能加速癌細(xì)胞的生長[23]。這些研究提示,銅可能是影響腫瘤生長的重要因素。腫瘤細(xì)胞的高增殖速率相比于正常形態(tài)功能的細(xì)胞來說,需要更多的銅離子來滿足其對(duì)生長、增殖所需的環(huán)境條件要求。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,隨著銅濃度的升高,H22荷瘤小鼠的腫瘤的大小和體積也隨之增加,呈劑量反應(yīng)關(guān)系;血清銅水平也隨銅濃度的增加而升高,并與腫瘤質(zhì)量具有相關(guān)性,這與銅和乳腺癌關(guān)系的研究結(jié)果相一致[24]。
腫瘤生長需要許多因素的參與,腫瘤中血管的生成也是腫瘤生長的眾多重要因素之一。腫瘤細(xì)胞不僅能夠分泌血管生長因子,而且能夠促進(jìn)腫瘤血管內(nèi)皮細(xì)胞的增殖。腫瘤血管是由血管生成因子的釋放所介導(dǎo)的,血管生成因子主要包括VEGF、bFGF和TGF等,其中,VEGF是被認(rèn)為最重要的血管生成因子[25],VEGF信號(hào)通路在血管生成的全過程中發(fā)揮不可替代的作用。已有的研究表明,在血管生成的過程中,VEGF通過多種途徑參與腫瘤的生長、轉(zhuǎn)移等[26-27]。bFGF是最強(qiáng)的腫瘤血管生長因子,其異常表達(dá)可促進(jìn)細(xì)胞增殖、惡性轉(zhuǎn)化以及腫瘤形成[28]。為了深入探討銅和TM對(duì)H22移植瘤中VEGF和bFGF的影響,本實(shí)驗(yàn)采用RT-PCR方法檢測了腫瘤組織中VEGF和bFGF mRNA的表達(dá)水平,結(jié)果顯示,隨著銅濃度的增加,腫瘤組織中VEGF和bFGF mRNA表達(dá)有了明顯的上調(diào),而加入TM組腫瘤組織中VEGF和bFGF mRNA的表達(dá)逐漸降低。這一結(jié)果與RIGIRACCIOLO等[22]的研究一致。
綜上所述,本實(shí)驗(yàn)通過建立H22荷瘤小鼠模型,在銅和TM的作用下觀察腫瘤的生長情況。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,銅能夠促進(jìn)腫瘤的生長,其機(jī)制可能是通過上調(diào)腫瘤組織中VEGF和bFGF mRNA的表達(dá),從而達(dá)到促進(jìn)腫瘤細(xì)胞增殖的作用,但仍需要進(jìn)一步的深入研究。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果為肝癌的預(yù)防提供了參考,同時(shí)也為防治銅污染提供了證據(jù)。
[參考文獻(xiàn)]
[1] 劉志輝,楊偉萍,韋長元,等. 微量元素鋅、銅、錳與硒在原發(fā)性肝癌組織和血清中的含量及相關(guān)性研究[J]. 廣西醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(bào), 2016,33(1):66-70.
[2] ARRUDA L F, ARRUDA S F, CAMPOS N A, et al. Dietary iron concentration may influence aging process by altering oxidative stress in tissues of adult rats[J]. Plos One, 2013,8(4):e61058.
[3] 韓盡斌,曲毅,徐新春,等.抗腫瘤銅配合物研究進(jìn)展[J]. 現(xiàn)代中西醫(yī)結(jié)合雜志2014 (18):2034-2037.
[4] HAIQUAN L, DEBANGSHU S, LISHA X, et al. Chemotherapy triggers HIF-1-dependent glutathione synthesis and copper chelation that induces the breast cancer stem cell phenotype[J]. P Natl Acad Sci USA, 2015,112(33):4600-4609.
[5] STOCKAK, REUNER U, GOHILK, et al. Effects of copper toxicity on response inhibition processes: a study in Wilson’s disease[J]. Arch Toxicol, 2016,90(7):1623-1630.
[6] YOGANATHANS, SUDHAKARSV, ARUNACHALG, et al. Menkes disease and response to copper histidine: An Indian case series[J]. Ann Indian Acad Neur, 2017,20(1):62-68.
[7] SQUITTI R, VENTRIGLIA M, GENNARELLI M. Non-Ceruloplasmin Copper Distincts Subtypes in Alzheimer’s Disease: a Genetic Study of ATP7B Frequency[J]. MolNeurobiol, 2016,54(1):671-681.
[8] AVAN A, HOOGENRAAD T U. Zinc and Copper in Alzheimer’s Disease[J]. J Alzeimers Dis, 2015,46(1):89.
[9] DENOYER D,PEARSON H B,CLATWORTHY S A, et al. Copper as a target for prostate cancer therapeutics: coppe-rionophore pharmacology and altering systemic copper distribution[J]. Oncotarget, 2016,7(24):37064-37080.
[10] SETHURAMAN R. P0007 Estimation of serum iron and se-rum copper in oral precancer, cancer and healthy individuals: A comparative study-European Journal of Cancer[J]. Eur J Can-cer, 2014,50(4):e11.
[11] SOHRABIM, GHOLAMIA, AZAR M, et al. Trace element and heavy metal levels in colorectal cancer: comparison between cancerous and non-cancerous tissues[J]. Biol Trace Elem Res, 2017(22):1-8.
[12] JAMLOSM, ISMAILA, JAMLOSM. Hybrid graphene-copper UWB array sensor for brain tumor detection via scattering parameters in microwave detection system[J]. Applied Physics A, 2017,123(1):112-123.
[13] SINGH B P, DWIVEDI S, DHAKAD U, et al. Status and interrelationship of zinc, copper, iron, calcium and selenium in prostate cancer[J]. Indian J of Clinical Bioc, 2016,31(1):50-56.
[14] SHEN F, CAI W S, LI J L, et al. The association between serum levels of selenium, copper, and magnesium with thyroid cancer: A meta-analysis[J]. Biol Trace Elem Res, 2015,167(2):225-235.
[15] KHOSHDEL Z, NAGHIBALHOSSAINI F, ABDOLLAHI K, et al. Serum copper and zinc levels among iranian colorectal cancer patients[J]. Biol Trace Elem Res, 2016,170(2):294-299.
[16] ANTONIADESV, SIOGA A, DIETRICHCE, et al. Is copper chelation an effective anti-angiogenic strategy for cancer treatment[J]? Med Hypotheses, 2013,81(6):1159-1163.
[17] 劉軍. 微量元素銅和鋅在實(shí)驗(yàn)性肝癌中的變化及意義[J]. 醫(yī)藥前沿, 2017,7(33):165-166.
[18] 熊珊珊,石英英,石漢平. 活性氧與腫瘤研究進(jìn)展[J]. 中華腫瘤防治雜志, 2014,21(13):1045-1048.
[19] ARAYA M, NUNEZ H, PAVEZ L, et al. Administration of high doses of copper to capuchin monkeys does not cause liver damage but induces transcriptional activation of hepatic proli-ferative responses[J]. J Nutr, 2012,142(2):233-237.
[20] 劉志輝,楊偉萍,韋長元,等. 微量元素鋅、銅、錳與硒在原發(fā)性肝癌組織和血清中的含量及相關(guān)性研究[J].
廣西醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(bào), 2016,33(1):66-70.
[21] FERNANDES A S, FLóRIDO A, SARAIVA N, et al. Role of the copper(Ⅱ) complex Cu [15] pyN5 in intracellular ROS and breast cancer cell motility and invasion[J]. Chem Biol Drug Des, 2015,86(4):578-588.
[22] RIGIRACCIOLO D C, SCARPELLI A, LAPPANO R, et al. Copper activates HIF-1α/GPER/VEGF signalling in cancer cells[J]. Oncotarget, 2015,6(33):34158-34177.
[23] ISHIDA S, ANDREUX P, POITRYYAMATE C, et al. Bioavailable copper modulates oxidative phosphorylation and growth of tumors[J]. P Natl Acad Sci USA, 2013,110(48):19507-19512.
[24] PAVELA M, UITTI J, PUKKALA E. Cancer incidence among copper smelting and nickel refining workers in Finland[J]. Am J Ind Med, 2017,60(1):87-95.
[25] WANG Z, HUANG P, JACOBSON O, et al. Biomineralization-Inspired Synthesis of Copper Sulfide-Ferritin Nanocages as Cancer Theranostics[J]. Acs Nano, 2016,10(3):3453-3460.
[26] LIU P, BROWN S, CHANNATHODIYIL P, et al. Reply: Cytotoxic effect of disulfiram/copper on human glioblastoma cell lines and ALDH-positive cancer-stem-like cells[J]. Brit J of Cancer, 2013,108(4):993-993.
[27] FERRARAN.Vascular Endothelial Growth Factor [J]. Eur J of Cancer, 2013,32(14):274-276.
[28] FARHAN M, KHAN H Y, OVES M, et al. Cancer therapy by catechins involves redox cycling of copper ions and generation of reactive oxygen species[J]. Toxins, 2016,8(2):37-39.