樊 溢,劉 明,王景雪
(山西大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,山西 太原 030006)
MYB蛋白是植物最大的轉(zhuǎn)錄因子家族之一[1]。目前MYB轉(zhuǎn)錄因子已經(jīng)從許多植物中克隆和鑒定出來,其中在擬南芥中已經(jīng)發(fā)現(xiàn)有超過196個(gè)MYB基因,玉米有超過157個(gè)MYB基因[2-3]。MYB蛋白含有1~3個(gè)串聯(lián)的、不完全重復(fù)的MYB結(jié)構(gòu)域(R1,R2和R3)。每個(gè)結(jié)構(gòu)域由51~52個(gè)氨基酸序列組成。根據(jù)MYB結(jié)構(gòu)域數(shù)目的不同,將MYB轉(zhuǎn)錄因子分為3類,分別為:R1-MYB,R2R3-MYB和R1R2R3-MYB[4]。其中,R2R3-MYB類轉(zhuǎn)錄因子是目前研究最為廣泛的一類MYB轉(zhuǎn)錄因子,其含有R2和R3等2個(gè)保守結(jié)構(gòu)域,每個(gè)結(jié)構(gòu)域含有3個(gè)保守的色氨酸殘基起著疏水核心的作用,主要參與調(diào)控植物發(fā)育、代謝和對生物與非生物脅迫的反應(yīng)等多種生理過程[5-7]。以往的研究表明,MYB蛋白在植物對逆境脅迫的響應(yīng)上有著重要作用[8]。
甘藍(lán)型油菜(Brassica napus L.)是我國乃至全世界重要的油料作物。菜籽油不僅是優(yōu)質(zhì)的食用油,也是重要的工業(yè)原料和生物能源,大力發(fā)展油菜產(chǎn)業(yè)有助于保障我國的糧油安全,促進(jìn)農(nóng)民增收,還能為我國能源安全戰(zhàn)略作出重要貢獻(xiàn)。然而,由于全世界范圍內(nèi)土地干旱和土壤鹽漬化的趨勢愈加嚴(yán)重,油菜生產(chǎn)也面臨著日益嚴(yán)重的干旱威脅。干旱、土壤鹽漬化會引起油菜形態(tài)、生理生化及分子水平等一系列的變化,導(dǎo)致產(chǎn)量下降[9-10];賀亞軍等[11]通過對甘藍(lán)型油菜耐鹽相關(guān)性狀進(jìn)行全基因組關(guān)聯(lián)分析,發(fā)現(xiàn)MYB轉(zhuǎn)錄因子與油菜的耐鹽性相關(guān)。
本研究以甘藍(lán)型油菜晉油4號為試驗(yàn)材料,并從其葉片組織中克隆到了編碼BnMYB1轉(zhuǎn)錄因子的基因,檢測其在不同組織部位的表達(dá)量,并測定其在應(yīng)對不同非生物脅迫下的表達(dá)情況,為進(jìn)一步研究BnMYB1基因的功能和利用BnMYB1基因選育油菜新品種奠定了基礎(chǔ)。
本試驗(yàn)以甘藍(lán)型油菜晉油4號為試驗(yàn)材料。晉油4號種子由山西省農(nóng)業(yè)科學(xué)院棉花研究所油菜育種研究室提供。
1.2.1 油菜基因組DNA提取及PCR擴(kuò)增Bn-MYB1基因 本研究利用NCBI已發(fā)表的BoMYB1基因(GenBank登錄號:GU219985.1),根據(jù)其序列使用Primer 5.0軟件設(shè)計(jì)ORF保守區(qū)上下游引物BoMYB1-F:5′-CGGGATCCATGGAGGATTCGT-3′和 BoMYB1-R:5′-AACTGCAGCTAATCAAGTTCTA CAG-3′,利用CTAB法提取晉油4號葉片組織基因組,運(yùn)用聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(PCR)進(jìn)行體外擴(kuò)增。PCR反應(yīng)條件:94℃預(yù)變性5 min;94℃變性30 s,57℃退火 30 s,72℃延伸 60 s,72℃終延伸 10 min,共30個(gè)循環(huán);4℃下保存。
1.2.2 BnMYB1基因擴(kuò)增產(chǎn)物的克隆與測序PCR產(chǎn)物進(jìn)行1.0%瓊脂糖凝膠電泳,將產(chǎn)物條帶從膠上切下,按照SanPre柱式DNA膠回收試劑盒(上海生工生物工程公司)的步驟進(jìn)行回收。將回收的PCR產(chǎn)物克隆到pMD19-T(TakaRa)載體上。將10 μL重組質(zhì)粒加到100 μL大腸桿菌DH5α感受態(tài)細(xì)胞中輕搖勻,冰上放置30 min后42℃水浴熱激90 s,加入1 mL不含抗生素的LB液體培養(yǎng)基于37℃,180 r/min復(fù)蘇2 h,然后將菌液涂布到含有氨芐青霉素的固體LB培養(yǎng)基上37℃過夜倒置培養(yǎng),次日挑選單菌落進(jìn)行陽性克隆鑒定。按照SanPre柱式質(zhì)粒DNA小量抽提試劑盒(上海生工生物工程公司)步驟進(jìn)行質(zhì)粒抽提,進(jìn)行PCR鑒定,確定為陽性后,將抽提的質(zhì)粒使用M13通用引物送至上海生工生物工程公司進(jìn)行測序??寺〉玫降幕蛎麨?BnMYB1(KP296768)。
1.2.3 BnMYB1轉(zhuǎn)錄因子基因序列生物信息學(xué)分析 將測序結(jié)果進(jìn)行一系列生物信息學(xué)分析,使用NCBI上的ORF finder程序推導(dǎo)目的基因的氨基酸序列;通過 ProtParam(http://web.expasy.org/protparam/)分析相對分子量、等電點(diǎn)及疏水性等理化性質(zhì);采用SignalP4.1 Server(http://www.cbs.dtu.dk/services/SignalP/)進(jìn)行信號肽預(yù)測和蛋白亞細(xì)胞定位;利用SOPMA(https://npsa-prabi.ibcp.fr/cgi-bin/secpr ed_sopma.pl)進(jìn)行二級結(jié)構(gòu)預(yù)測;利用ProtFun(https://www.cbs.dtu.dk/services/ProtFun/)進(jìn)行蛋白功能預(yù)測;利用 Motif Scan(http://myhits.isb-sib.ch/cgi-bin/motif_scan#GRAPHIC)進(jìn)行蛋白功能結(jié)構(gòu)域的分析;利用clustal 1.81軟件進(jìn)行多序列比對,結(jié)合MEGA7軟件構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹。
1.2.4 BnMYB1轉(zhuǎn)錄因子在油菜幼苗不同組織部位中的表達(dá)分析 在人工氣候室內(nèi)種植油菜,生長28 d后,分別取幼苗的根、莖、葉組織,使用Trizol(TaKaRa)提取總 RNA,使用 PrimeScript RT gDNA Eraser試劑盒(TaKaRa)將提取的總RNA反轉(zhuǎn)錄成cDNA,使用 SYBR Premix Ex TaqTM(TaKaRa)試劑進(jìn)行qRT-PCR試驗(yàn),將油菜Actin基因的相對擴(kuò)增作為內(nèi)部對照。利用Primer 5.0軟件分別設(shè)計(jì)Bn-MYB1和Actin基因的上下游引物。BnMYB1:F5′-AGGATTCGTCCAAAGGGTT-3′;R5′-AGCTGGGCT TAATAGGTGTAGG-3′。Actin:F5′-CCCTGGAATT GCTGACCGTA-3′;R5′-TGGAAAGTGCTGAGGGAT GC-3′。qRT-PCR 反應(yīng)條件為:95℃,15min;94℃,10 s,57 ℃,15 s,72 ℃,20 s,共 40 個(gè)循環(huán)。
1.2.5 油菜幼苗非生物脅迫種類及處理方法 在油菜幼苗期,本研究選取了鹽脅迫、干旱脅迫、低溫脅迫和水楊酸處理等4種非生物脅迫,分別對油菜幼苗進(jìn)行不同處理,不同處理時(shí)間下采葉片提取總RNA,反轉(zhuǎn)錄成cDNA。用1.2.4的所列引物,進(jìn)行qRT-PCR擴(kuò)增,檢測BnMYB1基因在各種脅迫下的表達(dá)量。
1.2.5.1 鹽脅迫試驗(yàn) 油菜種子在室內(nèi)23℃條件下發(fā)芽,待油菜生長28 d后進(jìn)行鹽脅迫。具體方法:對油菜幼苗停止正常澆水,使用200 mmol/L NaCl溶液,對幼苗進(jìn)行高鹽處理,用等量蒸餾水處理作為對照。在 0.5,1,4,8,16,24,48,72 h 后分別取葉片進(jìn)行后續(xù)試驗(yàn)。
1.2.5.2 干旱脅迫試驗(yàn) 油菜種子在室內(nèi)23℃條件下發(fā)芽,待油菜生長28 d后進(jìn)行干旱脅迫。具體方法:對幼苗停止正常澆水,代之澆含有200 g/L PEG-6000的水溶液,進(jìn)行模擬干旱試驗(yàn),用等量蒸餾水處理作為對照。在 0.5,1,4,8,16,24,48,72 h后分別取葉片進(jìn)行后續(xù)試驗(yàn)。
1.2.5.3 冷脅迫試驗(yàn) 油菜種子在室內(nèi)23℃條件下發(fā)芽,待油菜生長28 d后進(jìn)行冷脅迫處理。具體方法為:將幼苗置于4℃恒溫培養(yǎng)箱中進(jìn)行冷脅迫處理,在 0.5,1,4,8,16,24,48,72 h 后分別取葉片進(jìn)行后續(xù)試驗(yàn)。
1.2.5.4 水楊酸處理 油菜種子在室內(nèi)23℃條件下發(fā)芽,待油菜生長28 d后進(jìn)行水楊酸處理。具體方法:對油菜幼苗停止正常澆水,葉面噴施5 mmol/L水楊酸,以噴施等量蒸餾水作為對照,噴施后0.5,1,4,8,16,24,48,72 h 分別采取葉片進(jìn)行后續(xù)試驗(yàn)。
用設(shè)計(jì)的基因全長引物進(jìn)行PCR擴(kuò)增,PCR產(chǎn)物經(jīng)過1%瓊脂糖凝膠電泳檢測,擴(kuò)增出大小約1 300 bp的目的條帶(圖1),與預(yù)測結(jié)果大小一致。把回收的目的條帶構(gòu)建入pMD19-T載體,經(jīng)過轉(zhuǎn)化、鑒定后,提取質(zhì)粒送上海生工生物工程公司進(jìn)行測序。

序列測定結(jié)果分析表明,BnMYB1基因全長為1 393 bp,經(jīng)NCBI中ORF finder推導(dǎo)出目的基因的氨基酸編碼序列為1個(gè)753 bp的開放閱讀框,編碼250個(gè)氨基酸。經(jīng)過比對分析,BnMYB1屬于典型的R2R3-MYB亞家族,其N端含有R2,R3等2個(gè)保守的MYB結(jié)構(gòu)域,R2和R3分別由51,50個(gè)氨基酸組成,R2結(jié)構(gòu)域含有3個(gè)色氨酸(W),色氨酸之間有18~19個(gè)氨基酸間隔(圖2),R3含有2個(gè)色氨酸,第1個(gè)色氨酸被亮氨酸(L)所取代。ProtParam預(yù)測結(jié)果表明,BnMYB1蛋白分子量為21.4 ku,等電點(diǎn)為9.13,平均親水性系數(shù)(GRAVY)為-0.426,親水氨基酸數(shù)占總氨基酸數(shù)的83.2%,故可推測BnMYB1蛋白為小分子親水性蛋白;根據(jù)SignalP4.1 Server信號肽預(yù)測結(jié)果表明,BnMYB1所編碼的蛋白不存在信號肽,亞細(xì)胞定位預(yù)測顯示該蛋白定位于細(xì)胞核中;BnMYB1蛋白二級結(jié)構(gòu)預(yù)測顯示,其蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)由62個(gè)α-螺旋(24.8%),31個(gè)延伸鏈(12.4%),150個(gè)無規(guī)則卷曲(60.16%)組成。生物學(xué)功能預(yù)測顯示,BnMYB1蛋白具有合成輔酶因子、嘌呤、嘧啶和能量代謝、脂肪酸代謝等方面的功能(表1)。Motif Scan軟件分析序列含有一個(gè)核定位序列(NLS),其作用與入核載體相互作用使BnMYB1蛋白被運(yùn)進(jìn)細(xì)胞核內(nèi)發(fā)揮作用。


表1 BnMYB1編碼蛋白功能預(yù)測
將來自不同物種的、與非生物逆境脅迫響應(yīng)相關(guān)的MYB轉(zhuǎn)錄因子序列(包括:AtMYB30(822525),AtMYB96 (836367),AtMYB60(837403),OsMYB4(LOC4336407),TaMYB33(LOC100859950),GmMY-B92(DQ822903.1),ZmMYBZ2(DQ902861),PeMYB2(HM747940.1),ShMYB18 (ACT98139.1),CmMYB2(JF795918))與克隆得到的BnMYB1基因利用clustal 1.81軟件進(jìn)行多序列比對后,結(jié)合MEGA7軟件構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹。結(jié)果表明,BnMYB1和其他作物逆境相關(guān)的R2R3-MYB蛋白表現(xiàn)出不同程度的相似性(圖 3)。在擬南芥中,AtMYB60[12]和 At-MYB96[13]參與干旱脅迫,能調(diào)控氣孔運(yùn)動(dòng)并影響根的生長;小麥中TaMYB33的過表達(dá)可以促進(jìn)滲透壓調(diào)節(jié)物質(zhì)脯氨酸的合成,從而提高小麥的耐鹽和耐旱性[14]。TaMYB32同樣受鹽脅迫誘導(dǎo)表達(dá),在擬南芥中超表達(dá)TaMYB32,TaMYB33基因,均可使植株的耐鹽能力有所增強(qiáng)[15]。BnMYB1與大豆Gm-MYB92處于同一分支,且轉(zhuǎn)GmMYB92基因的擬南芥中,植株表現(xiàn)出更好的耐鹽耐凍性[16]。因此,推測BnMYB1同樣具有參與響應(yīng)高鹽、干旱脅迫的功能。
晉油4號幼苗期分別取其根、莖、葉組織,提取其總RNA進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄,利用設(shè)計(jì)的qRT-PCR引物,對BnMYB1在甘藍(lán)型油菜幼苗根、莖、葉中的相對表達(dá)量進(jìn)行分析。從圖4可以看出,BnMYB1在油菜根、莖、葉中均有表達(dá),其中在葉片中表達(dá)最高,是根中表達(dá)量的15倍以上,而在根中的表達(dá)量最低。因此,推測BnMYB1對水分脅迫的響應(yīng)主要是減少葉片對水分的蒸騰。



取生長28 d的甘藍(lán)型油菜幼苗,分別進(jìn)行脅 迫處理,對照組用等量蒸餾水進(jìn)行處理,分別提取不同處理的葉片總RNA,用qRT-PCR法分析其相對表達(dá)量。結(jié)果表明,在4種脅迫處理下,BnMYB1基因的表達(dá)量由于受外界瞬時(shí)刺激,在0.5 h時(shí)均處于較低狀態(tài)。在高鹽脅迫處理16 h內(nèi)其表達(dá)量呈上升趨勢,在處理16 h時(shí)BnMYB1基因表達(dá)明顯上調(diào),表達(dá)量最大,是對照的2.4倍,24 h后基因的表達(dá)低于對照,說明高鹽脅迫誘導(dǎo)了BnMYB1轉(zhuǎn)錄因子基因的大量表達(dá)(圖5-A)。
在PEG-6000模擬干旱脅迫下,BnMYB1基因在4 h內(nèi)表達(dá)量迅速升高,4 h的表達(dá)量最高,為對照的3.7倍,之后隨處理時(shí)間的增加,相對表達(dá)量逐漸減小,處理16~24 h其表達(dá)量接近對照且無顯著差異(圖5-B)。說明BnMYB1基因受干旱脅迫誘導(dǎo),參與了油菜對水分脅迫的應(yīng)答。
在4℃冷脅迫處理1~8 h內(nèi),BnMYB1基因表達(dá)量有升高趨勢,在處理16 h時(shí)表達(dá)量水平最高,為對照的2.5倍;24 h后BnMYB1基因表達(dá)量均低于對照(圖5-C)。水楊酸處理后,BnMYB1基因的表達(dá)量在1 h時(shí)略有升高,為對照的1.2倍,之后隨處理時(shí)間增加,BnMYB1基因的表達(dá)量逐漸降低(圖5-D)。
已有研究表明,MYB作為植物體內(nèi)最大的一類轉(zhuǎn)錄因子,參與植物次生代謝、器官的形成,調(diào)節(jié)激素和環(huán)境因子的應(yīng)答、細(xì)胞分化、細(xì)胞周期[17],尤其是R2R3類MYB轉(zhuǎn)錄因子在植物響應(yīng)非生物脅迫方面發(fā)揮了關(guān)鍵的作用。油菜中關(guān)于MYB研究主要集中于花藥發(fā)育和花粉形成等方面[18],而關(guān)于MYB基因在油菜抗逆方面的研究較少。本研究從甘藍(lán)型油菜晉油4號中克隆得到BnMYB1基因,該基因編碼的蛋白質(zhì)屬于典型的R2R3-MYB類轉(zhuǎn)錄因子。已有研究證明,R2R3結(jié)構(gòu)域在植物抵御非生物逆境脅迫方面有重要作用。
利用qRT-PCR技術(shù)分析發(fā)現(xiàn),BnMYB1在油菜根、莖、葉中均有表達(dá),在葉中表達(dá)量較高。在高鹽、干旱、冷脅迫處理下,BnMYB1在葉中的表達(dá)量均有增高,表明油菜在應(yīng)對非生物脅迫過程中BnMYB1發(fā)揮重要的作用。水楊酸作為植物內(nèi)普遍存在的內(nèi)源信號分子,主要參與植物對病原的防御反應(yīng)。有研究表明,煙草的Myb1基因在受到外界水楊酸刺激后表達(dá)量增高,抗病蛋白隨之增高,表明煙草Myb1在植物的抗病反應(yīng)中起重要的調(diào)控作用[19]。本研究在對油菜外施水楊酸后,BnMYB1表達(dá)量升高,推測其可能也參與抗病蛋白基因的激活和植物抗病防衛(wèi)反應(yīng)。
植物對環(huán)境脅迫如干旱的抗性是受多基因調(diào)控的數(shù)量性狀。因此,單一基因的改變往往對這些性狀影響有限,而MYB轉(zhuǎn)錄因子可以通過調(diào)控其下游的一系列基因而共同作用,從而調(diào)節(jié)植物對環(huán)境脅迫的響應(yīng)[20]?;谇叭搜芯堪l(fā)現(xiàn),植物在逆境影響下,R2R3-MYB類轉(zhuǎn)錄因子的表達(dá)量會發(fā)生明顯變化,這一變化預(yù)示著這類轉(zhuǎn)錄因子將調(diào)控下游抗逆性基因的表達(dá)[21],SHAN等[22]從菊花中克隆得到R2R3-MYB類轉(zhuǎn)錄因子CmMYB2基因,可以調(diào)控逆境相關(guān)基因的表達(dá),在植株應(yīng)對干旱和高鹽脅迫過程中起到關(guān)鍵作用;肖冬長等[23]從毛竹中克隆得到R2R3-MYB類轉(zhuǎn)錄因子PeMYB2基因,其在擬南芥中的過表達(dá)可使植株對鹽脅迫有更高的耐性。本研究獲得的BnMYB1基因參與了逆境脅迫的響應(yīng),其作為轉(zhuǎn)錄因子如何調(diào)控下游基因表達(dá)需要進(jìn)一步研究。
[1] RIECHM ANN J L,HEARD J,MARTIN G,et al.More than 80 R2R3-MYBregulatory genes in the genome of Arabidopsis thaliana[J].Plant J,1998,14:273-284.
[2]LIANG Y K,DUBOS C,DODD I C,et al.AtMYB61,an R2R3-MYB transcription factor controlling stomatal aperture in Arabidopsis thaliana[J].Current Biology,2005(15):1201-1206.
[3]DU H,F(xiàn)ENG B R,YANG S S,et al.The R2R3-MYB transcription factor gene familyin maize[J].PloSONE,2012,7(6):e37463.
[4]喬孟,于延沖,向鳳寧.擬南芥R2R3-MYB類轉(zhuǎn)錄因子在環(huán)境脅迫中的作用[J].生命科學(xué),2009,27(1):145-150.
[5]劉蕾,杜海,唐曉鳳,等.MYB轉(zhuǎn)錄因子在植物抗逆脅迫中的作用及其分子機(jī)理[J].遺傳,2008,30(10):1265-1271.
[6] KANEI-ISHII C,SARAI A,SAWAZAKI T,et al.The tryptophan cluster:a hypothetical structure of the DNA-binding domain of the myb protooncogene product[J].The Journal of Biologigal Chemistry,1990,265(32):19990-19995.
[7]WILKINS O,NAHAL H,F(xiàn)OONG J,et al.Expansion and diversification of the Populus R2R3-MYB family of transcription factors[J].Plant Physiol,2009,149(2):981-993.
[8]DUVAL M,HSIEH T F,KIM S Y,et al.Molecular characterization of AtNAM;A member of the Arabidopsis NAC domain superfamily[J].Plant Molecular Biology,2002,50:237-248.
[9]湯章城.植物的抗逆性和節(jié)水栽培 [J].植物生理學(xué)通訊,1997(6):473-474.
[10]陳良.油菜相關(guān)抗逆基因的鑒定和功能研究[D].武漢:華中師范大學(xué),2011.
[11]賀亞軍,吳道明,游婧璨,等.油菜耐鹽相關(guān)性狀的全基因組關(guān)聯(lián)分析及其候選基因預(yù)測 [J].中國農(nóng)業(yè)科學(xué),2017,50(7):1189-1201.
[12]OH J E,KWONY,KIMJ H,et al.A dual role for MYB60 in stomatal regulation and root growth of Arabidopsis thaliana under drought stress[J].Plant Mol Biol,2011,77(1/2):91-103.
[13]郭弘光.MYB轉(zhuǎn)錄因子功能與調(diào)控研究進(jìn)展 [J].安徽農(nóng)業(yè)科學(xué),2012,40(20):10381-10382.
[14] QIN Y,WANG M,TIAN Y,et al.Over-expression of TaMYB33 encoding a novel wheat MYB transcription factor in creases salt and drought tolerance in Arabidopsis[J].Mol Biol Rep,2012,39(6):7183-7192.
[15]ZHANG L,ZHAO G,JIA J,et al.Molecular characterization of 60 isolated wheat MYB genes and analysis of their expression during abiotic stress[J].Exp Bot,2011,63:203-214.
[16]LIAO Y,ZOU H F,WANG H W,et al.Soybean GmMYB76,Gm-MYB92,and GmMYB177 genes confer stress tolerance in transgenic Arabidopsis plants[J].Cell Research,2008,18:1047-1060.
[17]李紹翠,姜新強(qiáng),丁愛琴,等.月季RhMYB61基因的克隆及表達(dá)特征分析[J].華北農(nóng)學(xué)報(bào),2017,32(5):61-68.
[18]宋欣,趙淑清.擬南芥35S:MS606/myb26轉(zhuǎn)基因植物的鑒定[J].山西農(nóng)業(yè)科學(xué),2017,45(5):680-683.
[19] YANG Y,KLESSING D F.Isolation and characterization of a tobacco mosaic virus-inducible myb oncogene homolog from tobacco[J].PNAS,1996,93(25):14972-14977.
[20]ZHANG Y Y,YANG C W,LI Y,et al.SDIR1 is a RING finger E3 ligase that positively regulates stress-responsive abscisic acid signalingin Arabidopsis[J].Plant Cell,2007,19(6):1912-1929.
[21]唐寧,陳信波.植物MYB轉(zhuǎn)錄因子與非生物脅迫響應(yīng)研究[J].生物學(xué)雜志,2014,31(3):74-78.
[22]SHAN H,CHEN S,JIANG J,et al.Heterologous expression of the chrysanthemum R2R3-MYB transcription factor CmMYB2 enhances drought and salinity tolerance,increases hypersensitivity to ABA and delays floweringin Arabidopsis thaliana[J].Mol Biotechnol,2012,51(2):160-173.
[23]肖冬長,張智俊,徐英武,等.毛竹MYB轉(zhuǎn)錄因子PeMYB2的克隆與功能分析[J].遺傳,2013,35(10):1217-1255.