祝麗瓊 陳慧 劉梅蘭 陳穎 王瞾華 魏菁 蘇芳 張建平
中山大學孫逸仙紀念醫院1婦產科,2醫學研究中心(廣州 510120)
復發性流產(recurrent spontaneous abortion,RSA)是常見的妊娠并發癥,指與同一性伴侶連續發生3次或3次以上自然流產者。據統計,RSA的發病率約5%,它在生理和心理上對育齡婦女及其家庭產生諸多不良的影響,嚴重損害人類生殖健康。RSA的病因非常復雜,包括夫婦或胚胎染色體異常、代謝及內分泌異常、感染,生殖道解剖異常、抗凝脂綜合征等[1]。但仍有一半以上患者病因不明,因此稱為“原因不明復發性流產”(unexplained recurrent spontaneous abortion,URSA)。生殖免疫學觀點認為,URSA的發生與母-胎免疫耐受異常有關[2]。近年來,CD4+CD25+調節性T細胞(regula?tory T cell,Treg)在免疫耐受中的作用備受關注,Treg細胞在正常妊娠的維持中具有重要作用[3]。既往對Treg細胞的研究較多采用CD4+CD25+或CD4+CD25high作為其分子標志[4],但這標記并不能真實反映Treg細胞水平。Foxp3又稱叉狀頭轉錄因子,在Treg細胞中特異性表達,是Treg細胞特異性的分子標志。本研究采用CD4、CD25、Foxp3作為標記,采用三色流式細胞技術檢測并比較正常未孕及早孕,URSA患者未孕及稽留流產外周血中Treg細胞百分比,Foxp3 mRNA表達及血清中細胞因子TGF?β及IL?10的表達,以探討Treg細胞數量及其功能在URSA患者中的變化及其在妊娠維持中的作用。
1.1 研究對象選取2013年9月至2015年1月在中山大學孫逸仙紀念醫院就診,有連續3次或3次以上12周以前發生流產史的URSA稽留流產者及未孕患者各50例作為研究組,稽留流產患者在入組時均以陰道B超確診為早期妊娠稽留流產,且經過系統流產病因篩查,排除夫婦染色體異常、內分泌異常、解剖異常、感染及抗磷脂綜合征導致的流產;選取同期在人流室就診,要求進行人工流產的早期妊娠者25例及在體檢中心體檢的正常未孕婦女25例作為正常對照組,所有對照者以往至少有過一次正常足月分娩且無自然流產病史,正常早期妊娠者入組時均以B超確診為宮內早孕,可見心管搏動。所有研究對象均沒有吸煙史、酗酒史、無糖尿病、高血壓、心臟病、肝腎疾病及血液疾病,3個月內均無疫苗接種史。
1.2 方法
1.2.1 主要試劑淋巴細胞分離液購自Sigma公司,流式抗體:CD4?FITC,CD25?APC、Foxp3?PE及PE同型對照單克隆抗、固定劑、破膜劑均購自BD Pharmigin公司。qRT?PCR引物由廣州吉賽生物技術有限公司設計合成。Trizol購自美國Invitrogen公司,Real?time PCR試劑購自盒日本TOYOBO公司,反轉錄試劑盒購自美國Promega公司。細胞計數儀為Beck?man coulter(美國),PCR儀購自美國ABI公司,流式細胞儀購自BD公司(BD FACS Verse ?Z6511550198)。
1.2.2 分離外周血單個核細胞(peripheral bloodmononuclear cell,PBMC)本研究通過中山大學孫逸仙紀念醫院倫理委員會批準,在征得研究對象的知情同意后,使用肝素鈉試管抽取靜脈血4 mL(研究組在行清宮前,對照組在做人工流產前)。取15 mL管離心管,每管小心加入淋巴細胞分離液4 mL,將4 mL外周血沿管壁緩慢置于淋巴細胞分離液層面之上,2 000 r/min 20℃離心20 min,收集淋巴細胞層中的淋巴細胞,PBS洗滌2次備用。
1.2.3 流式細胞技術檢查Treg百分比將PBMC調整至1×107/mL。取100 μL細胞懸液,向其中加入CD4?FITC,CD25?APC各10 μL,混勻,室溫避光孵育30 min,經PBS洗滌離心后分別加入1 mL Fixation/Permeabilization破膜劑,室溫避光孵育40 min,用破膜緩沖液洗滌2次后,加入10 μL Foxp3?PE(同型對照管加入10 μL 小鼠IgG r1?PE),避光孵育30 min,經破膜緩沖液洗滌2次,用500 μL PBS重懸,上流式機檢測。先以FSC?SSC設門淋巴細胞群(gate P1),再以CD4+T細胞設門(gate P2),分析CD4+T細胞中CD25+Foxp3+Treg細胞的百分比。
1.2.4 qRT?PCRFoxp3 和β?actin引物由廣州吉賽生物技術有限公司設計合成,序列如下:Foxp3?forward:5′?CATCCGCCACAACCTGAGTCTG?3′;Foxp3?reverse:5′?CCTGTTCGTCCATCCTCCTTT?CCT?3′;β?actin?forward:5′?GCACCACACCTTCTA?CAATGAGC?3′;β?actin?reverse:5′?GGATAGCA?CAGCCTGGATAGCAAC?3′。
取PBMC(2×106mL)按照說明書操作進行RNA提取,逆轉錄成cDNA,在PCR儀上按以下反應條件:95℃ 5 min;95℃ 15 s,60 ℃ 30 s(此步驟收集熒光信號);45個循環,融解曲線分析:溫度60~95℃。熒光實時定量PCR儀在設定相關參數后,測量出不同基因的cycle threshold(Ct值)。計算出ΔCt值及ΔΔCt。內參β?actin及Foxp3擴增曲線及溶解曲線如圖1。
1.3 統計學方法統計數據用Graph pad Prism v5.0 software軟件進行分析及作圖。計量資料結果以均數±標準差表示,兩組差異性比較采用t檢驗,相關性分析采用pearson相關分析法。P<0.05為差異有統計學意義。
2.1 兩組研究對象臨床基本情況比較URSA稽留流產組流產次數為3~5次;正常早孕組足月分娩次數均為1~2次;研究對象年齡、月經周期,懷孕者孕周、BMI差異無統計學意義(均P>0.05)。見表1。
2.2 Treg/CD4+T百分比在URSA患者及正常對照中的表達流式細胞技術檢測Treg占外周CD4+T細胞的百分比,結果顯示見圖2。正常早孕者Treg/CD4+T百分比較正常未孕者明顯增高[(7.38±1.48vs.(5.67± 0.94),P<0.000 1];URSA稽留流產者Treg/CD4+T百分比較URSA未孕者增高[(5.72± 1.00)vs.(5.26±1.08),P=0.03];URSA稽留流產患者Treg/CD4+T百分比較正常早孕者明顯下降[(5.72±1.00)vs.(7.38±1.48),P<0.000 1];而URSA未孕組與正常未孕組相比Treg/CD4+T百分比差異無統計學意義[(5.26±1.08)vs.(5.68±0.94),P=0.1]

圖1 內參β?actin及Foxp3擴增曲線及溶解曲線Fig.1 Amplification and dissolution curves of internal reference beta?actin and Foxp3
表1 研究對象臨床基本情況比較Tab.1 Comparison of the basic clinical situation of the subjects ±s

表1 研究對象臨床基本情況比較Tab.1 Comparison of the basic clinical situation of the subjects ±s
流產次數(次)足月分娩次數(次)年齡(歲)月經周期(d)孕周(d)BMI(kg/m2)URSA未孕(n=50)3~4 0 28.08±2.78 29.67±2.34-20.78±1.58正常未孕(n=25)0 1~2 28.45±2.15 29.27±1.78-21.38±2.12 URSA稽留流產(n=50)3~5 0 28.35±1.87 30.58±2.45 44.14±5.83 20.14±2.53正常早孕(n=25)0 1~2 27.35±3.17 28.58±2.17 46.48±4.66 21.53±1.43
2.3 Foxp3 mRNA在URSA患者及正常對照中的表達以qRT?PCR測外周血PBMC中Foxp3 mRNA水平。結果見圖3。正常早孕者Foxp3 mRNA水平較正常未孕者明顯增高[(3.43±0.46)vs.(3.02±0.47),P=0.003];URSA稽留流產者Foxp3 mRNA水平URSA未孕者增高[(3.06±0.57)vs.(2.79±0.52),P=0.01];URSA稽留流產患者Foxp3 mRNA水平較正常早孕者明顯下降[(3.06±0.57)vs.(3.43±0.46),P=0.006];而URSA未孕組與正常未孕組相比Foxp3 mRNA水平差異無統計學意義[(2.79±0.52)vs.(3.02±0.47),P=0.07]。
2.4 TGF?β及IL?10在URSA患者及正常對照中的表達以URSA稽留流產及正常早孕兩組為研究對象,以ELISA方法檢測兩組血清中Treg相關細胞因子TGF?β及IL?10的水平,結果見圖3。URSA稽留流產患者TGF?β及IL?10水平均較正常早孕者下降[TGF?β:(56.12± 11.25)vs.(50.12±9.78)ng/mL,P=0.02;IL ?10:(6.43±2.48)vs.(4.48± 2.12)pg/mL,P<0.001],差異有統計學意義。
1995年,SAKAGUCHI等[5]首次報道了在自身免疫耐受中存在一類表達IL2受體a鏈(IL2Ra,CD25)的T細胞亞群,并將這類CD4+CD25+T細胞命名為調節性T細胞(Regulatory T cell,Treg)。隨后研究發現,Treg是一種具有免疫調節功能的細胞群,它能分泌IL?10、TGF?β,表達Foxp3及CTLA?4分子等,通過細胞間直接接觸或細胞因子間接方式抑制自身反應性T細胞的免疫反應、抑制傳統T細胞的活化以及促進一些抑制性細胞因子的分泌等,在維持機體內環境的穩定、誘導移植物的耐受中發揮重要作用。近年來國內外研究均證明Treg細胞在母胎免疫耐受中起著極其重要的作用[6]。

圖2 Treg/CD4+T百分比在URSA患者及正常對照中的表達Fig.2 Expression of Treg/CD4+T in URSA patients and normal controls
ZENCLUSSEN[7]首先證實正常妊娠小鼠胸腺中CD4+CD25+Treg細胞較非妊娠小鼠增高,有流產傾向的小鼠體內CD4+CD25+Treg細胞明顯降低,而向流產傾向小鼠轉入正常孕小鼠CD4+CD25+Treg細胞則可以阻止自然流產的發生。研究還發現,有流產傾向的小鼠蛻膜組織中Foxp3表達降低。國內有研究發現URSA患者CD4+CD25+Treg細胞數量較正常對照組明顯下降[8]。上述研究均顯示,Treg細胞與妊娠失敗密切相關。本研究以CD4、CD25及Foxp3作為標記,利用流式細胞技術檢測Treg占外周CD4+T細胞的百分比,數據顯示:正常早孕者Treg/CD4+T百分比較正常未孕者明顯增高[(7.38±1.48)vs.(5.67±0.94),P<0.000 1];UR?SA稽留流產者Treg/CD4+T百分比較URSA未孕者增高[(5.72±1.00)vs.(5.26±1.08),P=0.03];結果顯示,妊娠期母體外周Treg會顯著的升高,提示Treg細胞在維持妊娠中有重要作用。數據還顯示,URSA稽留流產患者Treg/CD4+T百分比較正常早孕者明顯下降[(5.72±1.00)vs.(7.38±1.48),P<0.000 1],結果提示,外周Treg細胞數量降低可能與URSA的發生密切相關。接下來筆者利用qRT?PCR技術檢測了Treg細胞特異性轉錄因子Foxp 3mRNA水平,在mRNA水平上證實了上述結果。

圖3 Foxp3 mRNA在URSA患者及正常對照中的表達Fig.3 Expression of Foxp3 mRNA in URSA patients and normal controls

圖4 TGF?β及IL?10在URSA患者及正常對照中的表達Fig.4 Expression of TGF?and IL?10 in URSA patients and normal controls
IL?10和TGF?β是兩種參與免疫調節及具有免疫抑制功能的細胞因子,而Treg細胞可通過釋放IL?10和TGF?β等抑制性細胞因子參與維持對機體免疫平衡[9-10]。研究表明,IL?10與TGF?β在母-胎免疫耐受中也起著非常重要作用。IL?10可以誘導滋養細胞及母胎界面單核細胞HLA?G基因和蛋白表達。IL?10還可以使單核細胞表面MHC?1型及Ⅱ型抗原表達降低。此外,IL?10還可以抑制Th1型細胞分泌Th1型細胞因子。有研究表明,IL?10水平降低可能與復發性流產發病有關[11]。TGF?β具有較強的免疫抑制功能,它可以通過下調黏附分子從而抑制內皮細胞上白細胞的附著,在移植物免疫耐受中起著非常重要的作用。此外,它還可以通過抑制T細胞增生,降低NK細胞毒性及效應性T細胞的活性,從而保護胚胎發育。有報道,妊娠期外周血單個核細胞表達TGF?β上調,參與維持正常妊娠,其表達下降與URSA發病有關[3]。本研究結果顯示:URSA稽留流產患者TGF?β及IL?10水平均較正常早孕者下降[TGF?β:(56.12±11.25)vs.(50.12±9.78)ng/mL,P=0.02;IL?10:(6.43±2.48)vs.(4.48±2.12),P<0.001],說明Treg細胞的數量減少,TGF?β及IL?10表達降低,與URSA的發生有密切關系。
綜上所述,Treg在維持妊娠中有重要作用;外周血Treg細胞數量及mRNA表達明顯降低,TGF?β及IL?10表達降低可能與URSA的發生有密切關系。