感冒清片中南板藍根定性分析方法的研究

喬莉，楊志業，李華，周穎儀，劉瀟瀟

(廣東省藥品檢驗所，廣東 廣州 510663)

感冒清片是常見的治療風熱感冒的中西藥復方制劑，由南板藍根、大青葉、崗梅、金盞銀盤、山芝麻、穿心蓮葉、對乙酰氨基酚、馬來酸氯苯那敏、鹽酸嗎啉胍組方而成。其中對乙酰氨基酚具有解熱鎮痛作用；氯苯那敏能減輕微血管擴張和降低毛細血管通透性，能緩解流涕、流淚、打噴嚏的癥狀；鹽酸嗎啉胍對多種病毒(如甲、乙型流感病毒，副流感病毒等)有抑制作用。中藥南板藍根和大青葉性寒、味苦，均具有清熱解毒，涼血消斑之功效；金盞銀盤具有清熱解毒，散瘀活血之功效[1]；崗梅具有清熱解毒，生津止渴，利咽消腫，散瘀止痛之功效[2]；山芝麻具有解表清熱，解毒消腫之功效[3]；穿心蓮葉具有清熱解毒，涼血，消腫之功效[4]。處方藥味中西合璧，協同發揮藥效，常用于感冒引起的發燒、頭痛、鼻塞流涕、噴嚏、咽喉腫痛、全身酸痛等癥狀[5]。但現行質量標準收載于《衛生部藥品標準中藥成方制劑》第十九冊(WS3-B-3716-98)，檢驗項目僅包含了一個化學反應、馬來酸氯苯那敏和鹽酸嗎啉胍的薄層色譜鑒別、對乙酰氨基酚的液相色譜鑒別和含量測定，缺乏對其中6味中藥的專屬性鑒別和有效成分的含量測定。特別是處方中的主要藥味南板藍根由于其生長年限長，野生資源匱乏，人工種植量少，遠遠不能滿足市場需求，導致藥材市場流通中出現了以同科植物球花馬藍[StrobilanthesPentstemonoides(Nees)T.Ander]、廣西馬藍(S.guangxiensisS.Z.Huang)、少花馬藍(S.oliganthusMiq.)和疏花馬藍[S.divaricatus(Nees)Ander]等作為南板藍根混用的現象[6]。因此，建立感冒清片中南板藍根的定性分析方法對完善其質量標準、保證其有效性具有積極的意義。

南板藍根為爵床科植物馬藍[BaphicacanthusCusia(Nees) Bremek.]的干燥根莖和根，為抗病毒的常用中草藥，廣泛分布于我國華南、華東及西南地區，其化合物主要有生物堿類、黃酮類、有機酸類、苷類、甾醇類、五環三萜類等[7]。現行質量標準收載于《中國藥典》2015年版(一部)，檢驗項目包括：橫切面的顯微鑒別；以靛藍、靛玉紅對照品為參照的薄層鑒別；水分、總灰分的檢查；浸出物的測定。有文獻報道以靛藍、靛玉紅作為專屬性指標成分能有效地對馬藍和其混淆品球化馬藍、廣西馬藍、少花馬藍和疏花馬藍進行鑒定[8-9]，但由于本品處方藥味大青葉亦含有靛藍和靛玉紅[10]，因此該方法不適用于本品中南板藍根的定性分析。另有Gu等[11-12]從南板藍根中分離得到2-苯并噁唑啉酮，該化合物的含量較高，且具有抗流感病毒(H1N1)的活性，與南板藍根的現代藥理作用基本相符。本研究以此為依據，首先通過對25批次的南板藍根正品、偽品和混淆品樣本進行比較，結果顯示2-苯并噁唑啉酮為南板藍根的專屬性化學成分；然后以2-苯并噁唑啉酮作為感冒清片中南板藍根藥味的指標成分，建立定性分析方法。

1 儀器與試藥

1.1 儀器 LC-20AT液相色譜儀(包括四元泵、柱溫箱、SPD-M20A二極管陣列檢測器、自動進樣器、Lab Solution色譜數據處理軟件，美國安捷倫公司)；1290 Infinity超高效液相色譜儀(包括四元泵、柱溫箱、G4212A二極管陣列檢測器、自動進樣器，美國安捷倫公司)；6540 UHD Accurate- Mass- Q- TOF高分辨四級桿-飛行時間質譜儀(配ESI源、Mass Hunter Acquisition色譜工作站和Qualitative Analysis數據處理軟件，德國優萊博公司)；Julabo E19恒溫水浴箱(德國賽多利斯儀器系統有限公司)；CP225D(d=0.01 mg)、CP224S(d=0.1 mg)電子天平(德國艾爾瑪公司)；S300H超聲波清洗儀。

1.2 試藥 對照藥材南板藍根(批號：120971-201105和120971-201306)、對照品靛玉紅(批號：110717-200204)均購于中國食品藥品檢定研究院，對照品2-苯并噁唑啉酮(批號：C10040722)購于上海麥克林生化科技有限公司。市售南板藍根正品、南板藍根偽品、板藍根樣品共25批次(樣本編號為YC001～YC025)，經廣東省藥品檢驗所中成藥室/中藥材(飲片)室楊志業主任藥師采用生物分子測序的方法鑒定：其中YC001～YC005為南板藍根偽品；YC006為十字化科植物菘藍(IsatisindigoticaFort.)的干燥根；YC007～YC025為爵床科植物馬藍[BaphicacanthusCusia(Nees) Bremek.]的干燥根莖和根。感冒清片樣品共56批次涉及9家生產企業，均為2017年國家藥品抽驗計劃抽檢樣品，詳見表1。感冒清片的標準制劑、缺南板藍根陰性樣品，均按感冒清片工藝制法在實驗室模擬制備。甲醇為色譜純，水為超純水，其他試劑均為分析純。

表1 樣品信息

2 方法與結果

2.1 溶液的制備

2.1.1 對照品溶液 取2-苯并噁唑啉酮對照品適量，加甲醇-二氯甲烷(8∶2)制成每1 mL含10 μg的溶液，即得。

2.1.2 供試品溶液 取本品8片，除去包衣，研細，置錐形瓶中，加二氯甲烷50 mL，60 ℃水浴回流90 min，放冷，濾過，用二氯甲烷分次洗滌濾渣及容器，合并濾液及洗液，蒸干，殘渣加甲醇-二氯甲烷(8∶2)的混合溶液使溶解，并轉移至5 mL量瓶中，加甲醇-二氯甲烷(8∶2)的混合溶液稀釋至刻度，即得。

2.1.3 南板藍根溶液 取南板藍根藥材粉末(過5號篩)約2 g，按“2.1.2”項下的方法操作，即得。

2.1.4 南板藍根水煎浸膏提取溶液 取南板藍根藥材粉末(過5號篩)約2 g，加水煎煮2次，第一次2 h，第二次1 h，過濾，合并濾液，濃縮至適量，加無水乙醇使含醇量達50%以上，靜置，濾過，濾液回收乙醇并濃縮至近干(按感冒清片工藝制法)，按“2.1.2”項下的方法操作，即得。

2.1.5 南板藍根陰性樣品溶液 取南板藍根陰性樣品適量(相當于感冒清片8片的量)，按“2.1.2”項下的方法操作，即得。

2.2 HPLC-DAD法初篩

2.2.1 色譜條件 采用Agilent Ecilpse Plus C18(4.6 mm×250 mm，5 μm)色譜柱；以甲醇為流動相A，水為流動相B，進行梯度洗脫(0～40 min，20%A；40～60 min，20%A→70%A；60～80 min，70%A)；流速為1 mL·min-1；柱溫為30 ℃；檢測波長為271 nm，并進行200～400 nm全波長掃描；進樣量為20 μL 。

2.2.2 儀器精密度試驗 精密吸取同一供試品溶液(標準制劑)，按“2.2.1”項下的色譜條件，連續進樣6次，記錄峰面積。結果：2-苯并噁唑啉酮峰面積的RSD為0.3%(n=6)，表明儀器精密度良好。

2.2.3 專屬性試驗

2.2.3.1 南板藍根藥材中2-苯并噁唑啉酮的專屬性試驗 取收集的南板藍根正品、偽品和混淆品樣本共25批次和南板藍根對照藥材2批次，分別按“2.1.3”和“2.1.4”項下的方法操作，制成南板藍根對照藥材、正品、偽品和混淆品溶液和各自的水煎浸膏提取溶液，按“2.2.1”項下的色譜條件進行測定，結果：樣本YC001～YC006的溶液和其水煎浸膏提取溶液均未檢出2-苯并噁唑啉酮；樣本YC007～YC025的溶液、對照藥材的溶液和其水煎浸膏提取溶液均檢出2-苯并噁唑啉酮。說明2-苯并噁唑啉酮為南板藍根的專屬性化學成分。

2.2.3.2 感冒清片制劑的專屬性試驗 分別取對照品溶液、供試品溶液與南板藍根陰性樣品溶液，按“2.2.1”項下的色譜條件注入液相色譜儀，記錄色譜圖，結果見圖1，表明缺南板藍根陰性樣品無干擾。

A.對照品；B.供試品；C.缺南板藍根陰性樣品 1.2-苯并噁唑啉酮

2.2.4 重復性試驗 取同一批樣品(標準制劑)，研細，按“2.1.2”項下方法平行制備6份供試品溶液，按 “2.2.1”項下色譜條件測定，結果：2-苯并噁唑啉酮單位峰面積的RSD為0.7%(n=6)，表明本方法重復性良好。

2.2.5 穩定性試驗 取同一批樣品(標準制劑)，按 “2.1.2”項下的方法制成供試品溶液，精密吸取10 μL，按 “2.2.1”項下的色譜條件，分別在0、2、4、8、12、18和24 h，注入液相色譜儀，記錄峰面積。結果：2-苯并噁唑啉酮峰面積的RSD為0.2%(n=6)，表明樣品在24 h內基本穩定。

2.2.6 檢測限 用2-苯并噁唑啉酮對照品溶液進行逐級稀釋，按“2.2.1”項下的色譜條件測定，結果得檢測限為2.142 ng(S/N=3.3)。

2.2.7 樣本測定結果的判定 分別取“2.1.1”項下對照品溶液和“2.1.2”項下的供試品溶液，按“2.2.1” 項下的色譜條件，記錄色譜圖：若供試品色譜中呈現與2-苯并噁唑啉酮對照品色譜峰保留時間相同的色譜峰，且相應的色譜峰在200～400 nm波長范圍的紫外吸收光譜相同，認定為陽性樣本。若供試品色譜中未呈現與2-苯并噁唑啉酮對照品色譜峰保留時間相同的色譜峰，或供試品色譜中呈現與2-苯并噁唑啉酮對照品色譜峰保留時間相同的色譜峰，但相應的色譜峰在200～400 nm波長范圍的紫外吸收光譜與對照品不相同，則需要采用超高效液相色譜-四級桿串聯飛行時間-質譜法確認。

2.3 UPLC-Q-TOF-MS法確證

2.3.1 液相色譜條件 采用Agilent Poroshell 120 EC- C18(4.6 mm×50 mm，2.7 μm)色譜柱，以乙腈(A)-0.1%甲酸溶液(B)為流動相，梯度洗脫(0～20 min，20%A→60%A；20～25 min，60%A)，流速為0.2 mL·min-1，檢測波長為271 nm，柱溫為30 ℃，進樣量2 μL

2.3.2 質譜條件 采用電噴霧離子源(ESI)，負離子模式采集數據；離子源溫度為150 ℃；毛細管電壓為3.5 kV；霧化器壓力為20 psi；干燥氣流速為8 L·min-1；干燥氣溫度為350 ℃；錐孔電壓65 V；掃描范圍為m/z：50～300；碰撞能為30 V。

2.3.3 檢出限 用2-苯并噁唑啉酮對照品溶液進行逐級稀釋，按“2.2.1”項下的色譜條件測定，結果得檢測限為0.16 ng(S/N=3.0)。

2.3.4 樣本測定結果的判定 分別取“2.1.1”項下對照品溶液和“2.1.2”項下的供試品溶液，按“2.3.1”和“2.3.2”項下超高效液相串聯質譜條件，記錄一級質譜圖(見圖2)，2-苯并噁唑啉酮在負離子模式下，保留時間為7.799 min，獲得m/z:134.024 4的[M-H]-分子離子峰。若以質荷比(m/z)134.02提取的供試品離子流色譜中，呈現與2-苯并噁唑啉酮對照品色譜保留時間相同的色譜峰，且相應的色譜峰一級質譜相同，認定為陽性樣本。若以質荷比(m/z)134.02提取的供試品離子流色譜中，未呈現與2-苯并噁唑啉酮對照品色譜保留時間相同的色譜峰，或供試品色譜中呈現與2-苯并噁唑啉酮對照品色譜峰保留時間相同的色譜峰，但相應相應的色譜峰一級質譜不相同，則認定為陰性樣本。

A.對照品；B.供試品

2.4 結果 按擬定的南板藍根定性分析方法，對2017年國家藥品抽驗計劃抽檢的9家生產企業共56批次感冒清片樣本進行了測定，結果僅19批次的樣本檢出了2-苯并噁唑啉酮，檢出率為34%，詳見表2。

表2 樣品的檢測結果

3 討論

3.1 樣品前處理條件的選擇 提取溶劑的選擇上比較了無水乙醇、甲醇、乙酸乙酯和二氯甲烷，結果以二氯甲烷為提取溶劑時提取的效果最佳。提取方法的選擇上比較了超聲提取15、30、60 min和水浴回流提取30、60、90、120 min，水浴回流提取較超聲提取更完全，且水浴回流90 min后，測得2-苯并噁唑啉酮的含量無明顯增長，故選擇水浴回流提取的方式。

另外對2-苯并噁唑啉酮的熱穩定性進行了考察，發現該成分在80 ℃以上的環境中含量會有所降低，但是并未影響處方工藝條件下制得的本品及標準制劑的檢測結果。為了避免高溫條件對2-苯并噁唑啉酮的熱穩定性影響，提取、干燥等前處理過程均采用溫度在80 ℃以下的方法。

3.2 色譜條件的選擇 流動相選擇上比較了乙腈-水系統和甲醇-水系統，結果在采用甲醇-水系統時樣品中2-苯并噁唑啉酮能達到基線分離的要求。檢測波長的選擇上，對照品溶液在200～400 nm范圍內經二極管陣列檢測器掃描，結果2-苯并噁唑啉酮在223、271 nm處有最大吸收，且在271 nm處色譜基線較平穩，雜質峰較少，故選擇271 nm作為檢測波長。另外曾使用3個不同品牌的色譜柱，即Agilent Ecilpse Plus C18(4.6 mm×250 mm，5 μm)、Phenomenex Luna C18(2)(4.6 mm×250 mm，5 μm)、資生堂 MGⅡ C18(4.6 mm ×150 mm，5 μm)進行試驗，結果均能滿足分離要求，且2-苯并噁唑啉酮的保留時間適中，峰形佳。

3.3 檢測方法的選擇 HPLC-DAD法檢出限為2.142 ng，UPLC-Q-TOF-MS法檢出限為0.16 ng。由于HPLC-DAD法的靈敏度較UPLC-Q-TOF-MS法低，當采用HPLC-DAD法出現陰性結果時，建議采用UPLC-Q-TOF-MS法進行結果確證。

3.4 小結 本研究建立了感冒清片中南板藍根的定性分析方法，該方法專屬性強，靈敏度高，結果準確可靠，為感冒清片的質量控制提供了技術支持，同時為南板藍根的質量控制奠定了研究基礎。