RNA干擾HDAC1對子宮內膜癌細胞遷移和侵襲的影響

李少儒，王世進，戶瑞麗，任艷芳，文政芳

新鄉醫學院第一附屬醫院婦產科，河南 新鄉 453100

子宮內膜癌是一種女性生殖系統惡性腫瘤，其發病率呈逐年上升趨勢，具有發病隱匿、發展速度快、易轉移等特點，嚴重威脅女性的生命健康[1]。常見的治療子宮內膜癌的方法有手術治療、放療及化療，這些治療方法雖然可以取得一定的效果，但往往會影響女性患者的生育功能[2-3]。基因靶向治療是近年來發現的治療惡性腫瘤的方法之一，具有靶向性強、不良反應小等特點[4-5]。組蛋白去乙酰化酶（histone deacetylase，HDAC）是一種存在于真核生物體內的蛋白酶家族，能夠調控染色體上組蛋白的乙酰化水平，進而影響細胞中基因的轉錄[6]。組蛋白去乙酰化酶1（histone deacetylase 1，HDAC1）是HDAC蛋白家族的成員之一，參與腫瘤細胞的生長、凋亡、侵襲和遷移等過程[7]。有研究表明，HDAC1能夠影響肝癌、前列腺癌等腫瘤細胞的遷移和侵襲[8-9]。本研究以子宮內膜癌細胞為研究對象，通過RNA干擾技術下調HDAC1基因的表達，探討HDAC1對子宮內膜癌細胞遷移和侵襲能力的影響，以期為靶向HDAC1治療子宮內膜癌提供理論依據，現報道如下。

1 材料與方法

1.1 材料

子宮內膜癌細胞Ishikawa（高分化腺癌）購自美國模式菌種收集中心（American Type Culture Collection，ATCC）；DMEM培養基購自美國Sigma公司；胰蛋白酶購自美國Thermo公司；HDAC1siRNA、siRNA control均購自西寶生物科技（上海）股份有限公司；HDAC1、甘油醛-3-磷酸脫氫酶（glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase，GAPDH）引物均購自生工生物工程（上海）股份有限公司；二喹啉甲酸（bicinchoninic acid，BCA）蛋白濃度測定試劑盒購自北京索萊寶公司；RNA提取試劑盒、逆轉錄聚合酶鏈反應（reverse transcription-polymerase chain reaction，RT-PCR）試劑盒均購自美國GeneCopoeia公司；基質金屬蛋白酶2（matrix metalloprotease 2，MMP2）多克隆抗體、基質金屬蛋白酶9（matrix metalloprotease 9，MMP9）多克隆抗體、GAPDH多克隆抗體、信號轉導及轉錄激活因子3（signal transduction and activator of transcription 3，STAT3）多克隆抗體、磷酸化的STAT3（p-STAT3）多克隆抗體均購自美國Abcam公司；HDAC1多克隆抗體購自美國Abgent公司。

1.2 細胞培養及轉染

將子宮內膜癌細胞Ishikawa接種于含10%胎牛血清的DMEM培養液中，在37℃、飽和濕度、5%CO2培養箱中培養。當細胞密度達到80%時，用0.25%的胰蛋白酶消化傳代。Ishikawa細胞培養至對數期后，胰蛋白酶消化，采用細胞培養液調整細胞濃度為3×104/ml，以每孔1 ml接種于6孔細胞培養板中，待細胞融合度為60%時，用Lipofectamine 2000轉染試劑將HDAC1siRNA和siRNA control轉染至Ishikawa細胞中，分別作為HDAC1siRNA組和siRNA control組，轉染步驟參照Lipofectamine 2000轉染說明書，同時以不作轉染的細胞為對照組。實驗中的HDAC1siRNA組和siRNA control組細胞均為轉染后48 h的細胞。

1.3 RT-PCR檢測HDAC1 mRNA的表達水平

HDAC1siRNA組、siRNA control組和對照組細胞培養48 h后，采用RNA提取試劑盒提取細胞中的RNA，采用紫外分光光度計檢測RNA樣品的濃度和純度。采用反轉錄試劑盒反轉錄合成cDNA，按照RT-PCR試劑盒使用說明書檢測基因表達水平，以GAPDH基因為內參，采用2-△△Ct方法計算HDAC1mRNA的表達水平。HDAC1上游引物為5'-CGCATGACTCATAAT-3'，下游引物為5'-GCTGTGGTACTTGGTCATCT-3'；GAPDH 上游引物為5'-CCAGCCATGTACGTTGCTATC-3'，下游引物為5'-CAGGTCCAGCCGACGGATGGC-3'。反應條件：94 ℃ 3 min；94 ℃ 45 s，53 ℃ 60 s，72 ℃ 80 s，共30個循環。實驗重復3次。

1.4 蛋白質印跡法（Western blot）檢測HDAC1蛋白的表達水平

HDAC1siRNA組、siRNA control組和對照組細胞培養48 h后，加入裂解液，置于冰上裂解30 min后，12 000 r/min離心20 min，將蛋白上清吸取至EP管中。BCA法對蛋白樣品進行定量，步驟參照BCA蛋白濃度測定試劑盒。取蛋白樣品，加入等體積的2×loading buffer混合后，置于100℃的孵育器中煮沸變性。每孔加入30 μg蛋白樣品進行蛋白電泳，初始電壓為80 V，待溴酚藍進入到分離膠后，將電壓調整到120 V直至電泳結束。在恒流100 mA、4℃條件下，將蛋白轉印至硝酸纖維素膜上，轉膜時間為70 min。5%牛血清白蛋白室溫封閉60 min，然后加入一抗（1∶1000倍稀釋，4℃孵育過夜）、二抗（1∶2000倍稀釋，37 ℃孵育60 min），電化學發光（electrochemiluminescence，ECL）顯色試劑盒顯色，以GAPDH為內參，利用Bandscan 5.0軟件分析目的蛋白的相對表達水平。實驗重復3次。

1.5 細胞劃痕實驗檢測細胞的遷移能力

HDAC1siRNA組、siRNA control組和對照組細胞培養至對數期后，以2×104/ml接種于細胞培養瓶中培養過夜，待細胞完全貼壁后，吸除上清液，用200 μl的移液槍槍頭在長滿細胞的瓶壁上垂直劃出一條細痕，用磷酸鹽緩沖液（phosphate buffered saline，PBS）將劃下的細胞洗掉。加入細胞培養液，置于37℃、5%CO2培養箱中培養24 h。在倒置顯微鏡下觀察0 h劃痕寬度和24 h劃痕寬度，計算細胞遷移率。細胞遷移率=細胞遷移距離/0 h劃痕寬度，細胞遷移距離=0 h劃痕寬度-24 h劃痕寬度。實驗重復3次。

1.6 Transwell小室檢測細胞的侵襲能力

在實驗開始前將基質膠加入到24孔Transwell小室中，并將Transwell小室置于37℃培養箱中濕化3 h，待基質膠凝固后，用不含胎牛血清的細胞培養液繼續孵育40 min。取200 μl的HDAC1siRNA組、siRNA control組和對照組細胞懸浮液（無血清的培養液調整細胞濃度為4×104/ml）加入Transwell小室的上室，在小室的下室加入500 μl含有胎牛血清的細胞培養液。培養24 h后，取出Transwell小室，用棉簽將沒有穿膜的細胞擦掉，PBS洗滌，多聚甲醛固定，結晶紫染色后，在顯微鏡下隨機選取5個視野觀察侵襲細胞數目。實驗重復3次。

1.7 Western blot檢測 MMP2、MMP9、STAT3、p-STAT3蛋白的表達水平

HDAC1siRNA組、siRNA control組和對照組細胞繼續培養24 h后，按照1.4中Western blot方法檢測細胞中MMP2、MMP9、STAT3、p-STAT3蛋白的表達水平。

1.8 統計學方法

采用SPSS 22.0軟件對-數據進行統計分析，計量資料以均數±標準差（±s）表示，多組間比較采用F檢驗，多組間兩兩比較采用SNK-q檢驗。以P＜0.05為差異有統計學意義。

2 結果

2.1 3組細胞中HDAC1 mRNA和HDAC1蛋白表達水平的比較

RT-PCR和Western blot檢測結果顯示，HDAC1siRNA組中HDAC1mRNA和HDAC1蛋白的表達水平均低于對照組和siRNA control組，差異均有統計學意義（P＜0.05）；對照組和siRNA control組中HDAC1mRNA和HDAC1蛋白的表達水平比較，差異均無統計學意義（P＞0.05）。（表1、圖1）

表1 3組細-胞中HDAC1 mRNA和HDAC1蛋白表達水平的比較（±s）

表1 3組細-胞中HDAC1 mRNA和HDAC1蛋白表達水平的比較（±s）

注：a與對照組比較，P＜0.05；b與siRNAcontrol組比較，P＜0.05

HDAC1 mRNA 1.00±0.08 1.02±0.09 0.28±0.04a b 1.12±0.14 1.13±0.10 0.36±0.06a b對照組siRNAcontrol組HDAC1 siRNA組HDAC1蛋白組別

圖1 Western blot檢測HDAC1蛋白表達

2.2 細胞遷移率的比較

細胞劃痕實驗結果顯示，對照組和siRNA control組的細胞遷移率比較，差異無統計學意義（P＞0.05）。HDAC1siRNA組的細胞遷移率低于對照組和siRNA control組，差異均有統計學意義（P＜0.05）。（表 2）

表2 3組細胞遷移率的比較（%，±s）

表2 3組細胞遷移率的比較（%，±s）

注：a與對照組比較，P＜0.05；b與siRNAcontrol組比較，P＜0.05

細胞遷移率63.84±6.26 64.25±6.11 28.56±3.97a b對照組siRNAcontrol組HDAC1 siRNA組組別

2.3 細胞侵襲數目的比較

對照組和siRNA control組的侵襲細胞數目比較，差異無統計學意義（P＞0.05）。HDAC1siRNA組的侵襲細胞數目少于對照組和siRNA control組，差異均有統計學意義（P＜0.05）。（表3）

表3 3組侵襲細胞數目的比較（個，±s）

表3 3組侵襲細胞數目的比較（個，±s）

注：a與對照組比較，P＜0.05；b與siRNAcontrol組比較，P＜0.05

組別對照組siRNAcontrol組HDAC1 siRNA組125.36±11.87 129.42±12.55 69.23±8.34a b侵襲細胞數目

2.4 3組細胞中MMP2、MMP9、STAT3、p-STAT3蛋白表達水平的比較

對照組和 siRNA control組中 MMP2、MMP9、STAT3、p-STAT3蛋白的表達水平比較，差異均無統計學意義（P＞0.05）。HDAC1siRNA組中MMP2、MMP9、p-STAT3蛋白的表達水平均低于對照組和siRNA control組，差異均有統計學意義（P＜0.05）。（圖2、表4）

圖2 Western blot檢測MMP2、MMP9、STAT3、p-STAT3蛋白表達

表4 3組細胞中MMP2、MMP9、STAT3、p-STAT3蛋白表達水平的比較（±s）

表4 3組細胞中MMP2、MMP9、STAT3、p-STAT3蛋白表達水平的比較（±s）

注：a與對照組比較，P＜0.05；b與siRNAcontrol組比較，P＜0.05

組別對照組siRNAcontrol組HDAC1 siRNA組MMP2 0.92±0.11 0.93±0.13 0.37±0.06a b MMP9 0.82±0.06 0.81±0.08 0.30±0.05a b STAT3 1.55±0.13 1.58±0.12 1.57±0.15 p-STAT3 0.87±0.07 0.85±0.10 0.36±0.04a b

3 討論

哺乳動物體內一共有18種HDAC，分為4大類，其中HDAC1是位于細胞核內的HDAC成員之一，可以使DNA核心區域組蛋白帶正電荷，從而增加組蛋白與負電荷DNA結合的能力，調控基因的轉錄[10]。HDAC1基因編碼的蛋白質由482個氨基酸組成，與核小體結構改變、DNA轉錄抑制因子的表達有關，對細胞凋亡具有抑制作用[11-12]。HDAC1在腫瘤組織中過表達，能夠增加腫瘤細胞的增殖能力，促進細胞外基質降解，從而促進腫瘤細胞的遷移[13]。研究表明，HADC1能夠影響卵巢癌細胞株的黏附、侵襲及遷移過程[14]。季佳文[15]的研究表明，白藜蘆醇作用于子宮內膜癌細胞后HDAC1的表達水平下降，細胞的增殖、遷移和侵襲能力下降，提示HDAC1可能與子宮內膜癌細胞的遷移和侵襲有關。本研究結果顯示，干擾HDAC1表達后的子宮內膜癌細胞的侵襲和遷移能力降低，與之前的研究報道相符，說明HDAC1表達下調能夠抑制子宮內膜癌的轉移能力。

基質金屬蛋白酶家族含有26個家族成員，由于需要依賴鋅、鈣等金屬離子的輔助而得名，具有降解細胞外基質的作用，因其作用的底物不同可以分為基質溶解素、明膠酶、膠原酶等，與腫瘤細胞的遷移和侵襲有關[16-18]。MMP2和MMP9屬于Ⅳ型膠原酶，在已知的基質金屬蛋白酶家族成員中作用最為廣泛，能夠促進腫瘤細胞的遷移和侵襲[19]。研究表明，MMP2和MMP9在多種腫瘤組織中表達上調，而干擾其表達后腫瘤細胞的侵襲能力下降[20]。本研究結果顯示，干擾HDAC1表達后的子宮內膜癌細胞中MMP2和MMP9的表達水平下降，提示HDAC1表達下調可能通過抑制MMP2和MMP9的表達阻礙子宮內膜癌細胞的遷移和侵襲。

STAT3是一種廣泛存在于生物體內的信號通路，在組織胚胎發育、疾病發生、免疫調節等過程中均發揮重要作用[21]。STAT3磷酸化后生成的p-STAT3可激活STAT3信號通路，促進細胞生長，STAT3信號通路在腫瘤組織中過度激活，能夠促進腫瘤細胞的遷移和侵襲[22]。本研究結果顯示，干擾HDAC1表達后的子宮內膜癌細胞中p-STAT3的表達水平下降，提示HDAC1可能通過作用于STAT3信號通路影響子宮內膜癌細胞的遷移和侵襲能力。

本研究為進一步探討HDAC1在子宮內膜癌中的作用及機制奠定了基礎，為HDAC1靶向治療子宮內膜癌提供了新思路。本研究僅探討了子宮內膜癌中HDAC1與STAT3信號通路的關系，后續將進一步深入探討HDAC1與其他相關信號通路的作用，并在多株子宮內膜癌細胞及體內進行驗證。

綜上所述，干擾HDAC1的表達可能通過抑制STAT3信號通路的激活和MMP2、MMP9的表達，抑制子宮內膜癌細胞的遷移和侵襲能力。