張霞 薛文郁 薛雁明
(忻州職業(yè)技術學院,山西 忻州 034000)
生長激素釋放肽屬于生長激素促泌劑的小分子內源配體,能夠參與葡萄糖代謝和胰島素的分泌,與胰島素抵抗密切相關〔1~4〕。研究表明,1型糖尿病患者經過胰島素治療后,生長激素釋放肽水平下降29%,在2型糖尿病患者的后代中發(fā)現(xiàn)生長激素釋放肽水平下降,而生長激素釋放肽水平下降能夠在一定程度上抑制胰島素抵抗,是機體的一種保護性機制〔5,6〕。研究報道稱,生長激素釋放肽能夠抑制β細胞減少導致的糖尿病,并且能夠抑制阿霉素等誘導的胰島β細胞凋亡的發(fā)生〔7〕。蛋白激酶B(Akt)信號通路參與胰島β細胞凋亡過程,Akt磷酸化水平升高后,Akt信號通路激活〔8〕。本研究主要探討生長激素釋放肽對高糖環(huán)境下的胰島β細胞凋亡的影響。
1.1材料 NIT-1胰島β細胞由山西醫(yī)科大學基礎學院生理實驗室保存,青霉素、鏈霉素、胎牛血清均購自美國Gibco;Akt信號通路抑制劑LY294002、胰蛋白酶、DMEM培養(yǎng)基均購自美國Sigma;二喹啉甲酸(BCA)定量檢測試劑盒購自碧云天生物技術研究所;Akt單克隆抗體、磷酸化(p)-Akt單克隆抗體均購自美國Santa Cruz;生長激素釋放肽購自上海譜振生物科技有限公司。
1.2細胞培養(yǎng)及分組 NIT-1胰島β細胞用含有10%胎牛血清、1×105U/L青霉素、100 mg/L鏈霉素的低糖DMEM細胞培養(yǎng)液培養(yǎng),37℃,95%的空氣、5%CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng)。每隔3~5 d用0.25%的胰蛋白酶消化傳代。細胞分為正常組、高糖組、實驗組,其中正常組用正常細胞培養(yǎng)液培養(yǎng),高糖組和實驗組用含有33.3 mmol/L葡萄糖的細胞培養(yǎng)液培養(yǎng),實驗組細胞在實驗開始前用10-7mmol/L的生長激素釋放肽預處理20 h。
1.3噻唑藍(MTT)檢測細胞增殖 NIT-1細胞培養(yǎng)至對數(shù)期后,胰蛋白酶消化,以每孔加入3 000個細胞接種到96孔細胞培養(yǎng)板中,每組設置6個復孔,按1.2中方法處理細胞,培養(yǎng)48 h后,在每個孔中加入20 μl的MTT溶液,放在37℃反應4 h。吸除上清,加150 μl的二甲基亞砜,觀察結晶物融化后,檢測490 nm處的光密度值(OD值),實驗重復3次,取均值。
1.4流式細胞術檢測細胞凋亡 正常組、高糖組、實驗組細胞按照1.2中方法處理后,培養(yǎng)48 h,收集1×106個細胞,用冰預冷的磷酸鹽緩沖溶液(PBS)重懸細胞2次,1 000 r/min離心10 min,棄上清,加入5 μl碘化丙啶(PI)和5 μl膜聯(lián)蛋白 V-FITC(Annexin V-FITC),放在避光環(huán)境中孵育20 min后,再加入400 μl結合緩沖液,用流式細胞儀檢測細胞凋亡,實驗重復3次,取均值。
1.5Western印跡檢測Akt、p-Akt表達水平 正常組、高糖組、實驗組細胞按照1.2中方法處理后,培養(yǎng)48 h,按照6孔板每孔中加入100 μl裂解液將細胞裂解后,4℃,14 000 r/min離心15 min后,蛋白存在于上清溶液中,吸取蛋白上清,用BCA定量檢測試劑盒檢測蛋白濃度。用12%的分離膠和5%的濃縮膠進行電泳。蛋白樣品在上樣前與上樣緩沖液混合煮沸5 min,按照每個上樣孔加入40 μl變性蛋白樣品,在濃縮膠中用80 V電壓電泳,在分離膠中用120 V電壓電泳。100 V轉膜60 min。用5%牛血清白蛋白在室溫中封閉90 min,4℃與1∶1 000倍稀釋的一抗孵育過夜,室溫環(huán)境中與1∶2 000倍稀釋的二抗孵育90 min。顯色顯影后,以Akt為內參,分析p-Akt/Akt水平,實驗重復3次,取均值。
1.6Akt信號通路抑制劑對細胞增殖凋亡的影響 20 μg/ml的Akt信號通路抑制劑LY294002作用于實驗組細胞記為實驗組+抑制劑,48 h后,MTT檢測細胞增殖,流式細胞術檢測細胞凋亡,Western印跡檢測Akt、p-Akt的表達水平。
1.7統(tǒng)計學處理 采用SPSS22.0統(tǒng)計學軟件進行t檢驗。
2.1生長激素釋放肽對細胞增殖影響 正常組、高糖組、實驗組細胞OD值依次為(1.39±0.05)、(0.68±0.03)、(1.13±0.06)。高糖組OD值明顯低于正常組,差異具有統(tǒng)計學意義(t=21.090,P=0.000)。實驗組OD值明顯高于高糖組,差異具有統(tǒng)計學意義(t=11.619,P=0.000)。
2.2生長激素釋放肽對細胞凋亡影響 正常組、高糖組、實驗組細胞凋亡率依次為:(5.25±0.09)%、(16.34±1.03)%、(10.11±0.58)%。高糖組細胞凋亡率明顯高于正常組,差異具有統(tǒng)計學意義(t=18.578,P=0.000)。實驗組細胞凋亡率明顯低于高糖組,差異具有統(tǒng)計學意義(t=9.129,P=0.001)。見圖1。
2.3生長激素釋放肽對Akt、p-Akt表達影響 正常組、高糖組、實驗組p-Akt/Akt依次為(0.86±0.05)、(0.24±0.02)、(0.57±0.09)。高糖組p-Akt/Akt明顯低于正常組,差異具有統(tǒng)計學意義(t=19.941,P=0.000)。實驗組p-Akt/Akt明顯高于高糖組,差異具有統(tǒng)計學意義(t=6.200,P=0.003)。見圖2。

圖1 流式細胞儀檢測細胞凋亡

圖2 各組Akt、p-Akt蛋白表達
2.4Akt信號通路抑制劑對細胞增殖影響 實驗組、實驗組+抑制劑p-Akt/Akt依次為(0.62±0.06)、(0.13±0.02),OD值依次為(1.23±0.09)、(0.93±0.08)。實驗組+抑制劑p-Akt/Akt及OD值明顯低于實驗組,差異具有統(tǒng)計學意義(t=13.419、4.315,P=0.000、0.013)。見圖3。

圖3 Western印跡檢測Akt、p-Akt蛋白表達
2.5Akt信號通路抑制劑對細胞凋亡影響 實驗組、實驗組+抑制劑細胞凋亡率依次為:(9.87±0.54)%、(14.95±0.47)%。實驗組+抑制劑細胞凋亡率明顯高于實驗組,差異具有統(tǒng)計學意義(t=12.291,P=0.000)。見圖4。

圖4 流式細胞術檢測細胞凋亡
生長激素釋放肽是1型糖尿病診斷的重要標志物,是胰島素治療是否有效的重要標志〔8〕。生長激素釋放肽在2型糖尿病患者的正常后代中的水平異常降低;而低水平的生長激素釋放肽與胰島素抵抗具有相關性,還調控人體內胰島素的濃度〔9~11〕。糖尿病患者中存在胰島β細胞的大量喪失,而喪失的大部分胰島β細胞主要以細胞凋亡的方式減少〔12~16〕。糖尿病以胰島素治療和增加胰島β細胞生物學功能為主要治療手段,而促進胰島β細胞增殖和減少凋亡是治療糖尿病的基礎之一〔17〕。Ma等〔18〕構建了糖尿病大鼠模型,用生長激素釋放肽灌胃處理后,大鼠的認知功能有所改善,胰島素抵抗減弱。Wang等〔19〕研究表明,高脂高糖環(huán)境下胰島β細胞經過生長激素釋放肽作用后細胞中促凋亡蛋白表達水平下降。本研究結果顯示,高糖環(huán)境下胰島β細胞凋亡增加,細胞增殖能力降低,而經過生長激素釋放肽能夠部分逆轉高糖對胰島β細胞的增殖抑制作用和凋亡促進作用。本研究結果同之前的研究報道相符合,均說明生長激素釋放肽能夠抑制高糖誘導的胰島β細胞凋亡。細胞凋亡的發(fā)生是一種生物學現(xiàn)象,是受到多種基因嚴格調控的過程,是細胞內多種信號通路復雜調控的最終結果〔20,21〕。Akt信號通路廣泛存在于生命機體內,在胚胎發(fā)育、免疫調節(jié)、組織器官形成等過程中均發(fā)揮重要作用,除此之外,Akt信號通路還參與動脈粥樣硬化、心臟病、腦缺血再灌注、癌癥、糖尿病等多種疾病的發(fā)生過程,能夠調控細胞的生長和凋亡〔22~26〕。研究報道稱,Akt基因缺失的小鼠容易發(fā)生2型糖尿病,小鼠胰島β細胞數(shù)目異常減少,在糖尿病患者體內發(fā)現(xiàn)Akt基因發(fā)生突變〔27,28〕。劉亮等〔29〕研究表明,軟脂酸能夠通過調控Akt的磷酸化水平促進小鼠胰島β細胞凋亡。Wijesekara等〔30〕用Akt信號通路抑制劑作用于高糖環(huán)境下的胰島β細胞后,細胞凋亡率較單純高糖培養(yǎng)的胰島β細胞凋亡率升高1倍。這些研究結果均表明,Akt信號通路參與胰島β細胞凋亡過程。
本研究結果顯示,高糖作用后的胰島β細胞中Akt磷酸化水平降低,而生長激素釋放肽處理后胰島β細胞中Akt磷酸化水平有所升高。本研究還進一步用Akt信號通路抑制劑處理生長激素釋放肽預處理后的胰島β細胞,結果發(fā)現(xiàn)胰島β細胞的增殖能力降低,凋亡增加。這提示,在高糖環(huán)境下,Akt信號通路抑制劑能夠減弱生長激素釋放肽對胰島β細胞的增殖促進和凋亡抑制作用。
綜上所述,生長激素釋放肽能夠通過調控Akt信號通路抑制高糖誘導的胰島β細胞凋亡和增殖抑制作用。本研究為進一步研究生長激素釋放肽對胰島β細胞凋亡的作用機制奠定了基礎,為探討生長激素釋放肽在糖尿病治療中的作用奠定了基礎。本研究只在體外探討了生長激素釋放肽和Akt信號通路在胰島β細胞凋亡中的作用,后續(xù)實驗中會對生長激素釋放肽與其他凋亡相關信號通路在胰島β細胞凋亡中的作用做更為全面的研究。