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miRNA-155通過AT1R-VEGFR2通路影響大鼠腦梗死后血管生成的研究

2019-04-30 09:03:50魏欣納文麗白向東胡雯馬玲
健康必讀·下旬刊 2019年4期
關鍵詞:檢測

魏欣 納文麗 白向東 胡雯 馬玲

【摘 要】目的:探討miRNA-155通過AT1R/VEGFR2信號通路調控大鼠腦梗死后血管生成的作用及機制。方法:選擇雌性SD大鼠采用大腦中動脈線栓閉塞的方法建立大鼠腦缺血實驗動物模型。將大鼠分為四組,分別為假手術組、腦缺血組、腦缺血/ miRNA-155模擬物組、腦缺血/miRNA-155 抑制物組。RT-PCR檢測各組大鼠腦梗死后miRNA-155表達量;Zea-Longa 5 分制評分法對各組大鼠進行神經功能評分;采用2,3,5 -三苯基四唑氯銨染色法評價各組大鼠腦梗死體積;免疫組織化學染色法檢測各組大鼠缺血腦皮質區CD31蛋白的表達量;Western blotting 檢測各組大鼠缺血腦皮質區VEGFR2和AT1R的表達。結果:腦梗死后腦缺血組織中miRNA-155表達增加。假手術組大鼠無神經功能損害癥狀,而腦缺血組大鼠有明顯的神經功能損害。經miRNA-155抑制劑治療后,腦缺血大鼠神經功能得到改善,腦梗死面積減少。但經miRNA-155模擬治療后,神經功能進一步惡化,腦梗死面積增加。免疫組化檢測結果表明,miRNA-155抑制劑可上調CD31的表達,而miRNA-155模擬物可下調CD31的表達。Western blotting檢測發現,經miRNA-155抑制劑處理后,腦缺血大鼠AT1R和VEGFR2蛋白表達增加;但經miRNA-155模擬處理后,AT1R和VEGFR2 蛋白表達降低。結論:抑制miRNA-155可以改善腦梗死大鼠的神經功能損害,減少腦梗死體積,有效促進缺血區血管生成,這可能是通過AT1R/VEGFR2信號通路介導的。

【關鍵詞】miRNA-155;腦梗死;血管生成;血管內皮生長因子;血管緊張素II受體1

【中圖分類號】 R733 .7

【文獻標識碼】 A? 【文章編號】 1672-3783(2019)04-03-248-01

流行病學調查結果顯示,我國腦梗死發病率呈逐年上升趨勢,因其致殘率高、死亡率高而受到廣泛關注[1]。腦梗死可引起腦神經元的不可逆變性和壞死,從而導致一系列神經功能障礙。因此尋求早期促進腦梗死區域局部血管生成的有效手段,恢復組織灌注對腦梗死患者預后具有重要意義。

血管生成可以改善腦梗死區域的灌注,從而促進中樞神經的再生,是腦神經元恢復的基礎[2]。血管內皮生長因子(vascular endothelial growth factor, VEGF)是血管生成過程中最重要的調節因子之一。VEGF通過VEGF受體1、2、3三種受體發揮作用,其中VEGFR2對早期血管生成最為重要[3]。血管緊張素II(Angiotensin II, Ang II)是一種多功能的生物活性肽,能促進血管生成,在血管生成中起著關鍵作用。血管緊張素II受體1 (AT1R)/VEGFR2信號通路可促進血管內皮細胞的增殖和遷移,在生理和病理條件下均可調控血管生成[4]。因此有必要尋求有效的措施來增強AT1R/VEGFR2通路在這一過程中的作用。

miRNA是一種小的非編碼RNA分子,約有22個核苷酸,廣泛存在于植物、動物和一些病毒中[5]。基于靶基因與信使RNA(mRNA)的互補配對,miRNA在RNA沉默和轉錄后可以在基因調控中發揮關鍵作用。據報道miRNA-155與血管生成有著密切的關系,其靶基因為AT1R,可以靶向降低AT1R的表達,抑制Ang II/AT1R信號通路,從而導致血管生成抑]。研究發現在腦缺血狀態下miRNA-155的表達顯著增加,而抑制miRNA-155可以保護神經,從而改善腦缺血的損傷[6]。因此本研究擬建立大鼠腦梗死模型,根據miRNA-155在體內的過表達及對表達的抑制作用,觀察miRNA-155對腦梗死大鼠血管生成的影響,進一步探討AT1R/VEGFR2通路在這一過程中的作用。

1 材料與方法

1.1 動物

雌性SD大鼠,體重200-250g,購于蘭州大學基礎醫學院。

1.2 試劑

RNA提取試劑盒購于美國Invitrogen公司;反轉錄試劑盒、RT-PCR試劑盒購于日本Takara公司;miRNA-155模擬物、miRNA-155抑制劑購于美國Life Technologies公司;2,3,5 -三苯基四唑氯銨購于美國Sigma公司;兔抗大鼠CD31、AT1R、VEGFR2、β-actin antibody抗體購于美國Santa Cruz公司;辣根過氧化物沒標記的羊抗兔IgG購于中國北京中杉金橋生物技術有限公司。

1.3 設備

電子分析天平購于瑞士梅特勒托利多公司;臺式離心機購于美國BECKMAN公司;實時熒光定量PCR儀、穩壓穩流電泳儀、Mini Trans-blot轉移系統購于美國Bio-Rad公司。

1.4 SD大鼠腦缺血實驗動物模型的構建

采用大腦中動脈線栓閉塞(MCAO)的方法建立大鼠腦缺血實驗動物模型:經頸外側切口,從頸總動脈分叉處附近插入線栓,制作大腦中動脈閉塞缺血性腦卒中的大鼠實驗動物模型。

1.5 分組和干預

將大鼠分為四組,每組10只。第一組為假手術組,不阻斷右側大腦中動脈,假手術5分鐘后經側腦室注射等容量生理鹽水。第二組為大腦中動脈線栓閉塞模型組,本組于腦缺血5分鐘后經側腦室注射等容量生理鹽水。第三組為腦缺血/模擬物組,于腦缺血5分鐘后經側腦室注射miRNA-155模擬物10ug。第四組為腦缺血/miRNA-155 抑制物組,于腦缺血5分鐘后經側腦室注射 miRNA-155 抑制物10ug。

1.6 神經功能評分

參照 Zea-Longa 5 分制評分標準,于缺血24小時對各組大鼠進行行為學評分紀錄[7]。

1.7 梗死體積測定

過量麻醉處死,迅速斷頭取腦,將鼠腦立即置于-20℃冰箱中20min后取出,行2mm厚的連續冠狀切片。將切片立即置于2%氯化三苯四氮唑溶液中,37℃恒溫下避光染色30 min,然后置于4℃、4%多聚甲醛溶液中固定24h。正常腦組織染為紅色,梗死組織為白色,測定每張腦片的梗死面積。

1.8 RT-PCR檢測 miRNA-155的表達

采用RNA提取試劑盒提取總RNA,設計miR-155上游引物: 50-GTCGTATC CAGTGCAGGGTCCGAGG-30,下游引物:TATTCGCACTGGATACGACCCCCTA,采用RT-PCR試劑盒將RNA反轉錄成cDNA,統計各組間miRNA-155相對表達量。

1.9 免疫組織化學染色法檢測缺血腦皮質區CD31的表達

取各組大鼠缺血區的腦組織,4%多聚甲醛固定。洗滌后依次乙醇梯度脫水、二甲苯透明、石蠟包埋切片、脫蠟水合、修復抗原,內源性過氧化物酶阻斷。血清封閉后加入抗CD31一抗,4℃孵育過夜。洗滌后加入生物素標記的IgG孵育10min。洗滌后加入鏈霉菌素親和素過氧化物酶,室溫孵育10 min。DAB染色3 min,蘇木精染色10 s。1%鹽酸乙醇分化2 s。用中性樹脂固定后,在顯微鏡下觀察。

1.10 Western blotting 檢測VEGF受體2(VEGFR2)和AT1R的表達

提取腦組織蛋白用BCA法測定蛋白濃度。SDS-PAGE電泳后蛋白轉膜,將轉移后的膜取出,用50ml的TBS室溫晃動洗滌5分鐘。將膜置于50ml 5%脫脂牛奶的TBS中室溫晃動封閉1小時。25ml的TBS洗滌三次,每次洗滌5分鐘。加入稀釋好的VEGF受體2(VEGFR2)和AT1R的兔抗大鼠一抗,β-actin兔抗人一抗為1:3000倍稀釋,室溫孵育2小時。25ml的TBS洗滌三次,每次洗滌5分鐘。加入稀釋好的辣根過氧化物酶標記的羊抗兔二抗,室溫孵育2小時。25ml的TBS洗滌三次,每次洗滌5分鐘,顯色并分析系統進行分析。

1.11 統計學分析

所有數據均采用SPSS 19.0進行處理。測量數據用均數±標準差表示。方差齊性檢驗采用Levene檢驗(參考標準為0.10)。符合方差齊性的采用單向ANOVA和LDS檢驗,不符合方差齊性的采用Kruskal-Wallis H檢驗。采用配對t檢驗對同一組實驗前后進行比較。P < 0.05為差異有統計學意義。

2 結果

2.1 各組大鼠神經功能評分和梗死體積比較

假手術組大鼠無神經功能損害癥狀,而腦缺血組大鼠神經功能損害評分為2.698±0.529。經miRNA-155抑制劑治療后,與腦缺血組相比,神經功能損害評分降低(P < 0.05),而miRNA-155模擬物治療后,神經功能損害評分升高(P < 0.05)。2,3,5 -三苯基四唑氯銨染色結果顯示,miRNA-155抑制劑治療后腦梗死面積減小(P < 0.05),而miRNA-155模擬物治療后腦梗死面積增大(P < 0.05)。以上結果表明,抑制miRNA-155可改善腦梗死患者的神經功能,減少腦梗死體積宏觀。具體見表1所示。

2.2 各組大鼠miRNA-155表達的變化

腦梗死后檢測腦缺血組織中miRNA-155的表達,各組大鼠miRNA-155相對表達量見表2所示。比較顯示腦缺血組大鼠miRNA-155的表達量顯著高于假手術組。腦缺血/ miRNA-155模擬物組和腦缺血/ miRNA-155抑制劑組與腦缺血組相比較,結果顯示與腦缺血組相比,腦缺血/ miRNA-155模擬物組miRNA-155表達顯著增加(P < 0.01),而腦缺血/ miRNA-155抑制劑組miRNA-155表達顯著降低(P < 0.01)。miRNA-155模擬物可以模擬內源性的miRNA-155,從而上調miRNA-155的表達增強其功能。miRNA-155抑制劑可以特異性地靶向敲除miRNA-155,從而下調miRNA-155的表達。

2.3 miRNA-155對腦梗死后缺血組織CD31表達的影響

本研究采用免疫組織化學方法進一步檢測腦梗死后缺血組織中CD31的表達情況。結果顯示與假手術組相比,腦缺血組大鼠缺血組織中CD31表達無明顯變化(P > 0.05)。經miRNA-155抑制劑處理后,CD31表達顯著升高(P < 0.01);而經過miRNA-155模擬物處理后,CD31表達顯著降低(P < 0.01),說明抑制miRNA-155可促進腦梗死后血管生成。見表3所示。

2.4 miRNA-155對腦梗死后缺血組織中AT1R和VEGFR2蛋白表達的影響

本研究用Western blotting檢測腦梗死后缺血組織中AT1R和VEGFR2蛋白表達。miRNA-155抑制劑處理后AT1R和VEGFR2蛋白的表達明顯增加(P < 0.01),而經過miRNA-155模擬物處理后,AT1R的表達和VEGFR2蛋白顯著減少(P < 0.01)。表明抑制miRNA-155的表達可以促進腦梗死后血管生成,可能是通過AT1R / VEGFR2通路介導的。見表4所示。

3 討論

腦血管疾病已成為人類死亡的重要原因之一,其中缺血性腦血管疾病占絕大多數,約占死亡總數的75%-85%。腦梗死可引起腦神經元的不可逆變性和壞死,從而導致一系列神經功能障礙,給患者及其家屬和社會帶來巨大的負擔[8]。

本研究中腦梗死后腦缺血組之中miRNA-155的表達量顯著增加,這表明腦缺血后miRNA-155的表達參與腦組織的損傷。為了明確miRNA-155在腦梗死后腦組織損傷中的作用,我們利用miRNA模擬物上調了miRNA的表達,并利用miRNA抑制劑下調了miRNA的表達。結果表明,miRNA-155抑制劑能改善腦缺血大鼠的神經功能,減少腦梗死體積;而miRNA-155的模擬會進一步惡化腦缺血大鼠的神經功能,增加腦梗死的體積。

參考文獻

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[2]李銀萍,劉昌齡,涂雙燕,楊蓉.腦卒中病人照顧者需求狀況研究進展[J].護理研究,2019(04):616-619

[3]Silpanisong J, Pearce WJ. Vasotrophic regulation of age-dependent hypoxic cerebrovascular remodeling. Curr Vasc Pharmacol 2013; 11(5): 544-563.

[4]張荻,徐鳴曙,張英杰,程愛芳,管華宗.腦缺血后周細胞及相關血管生成信號通路的研究進展[J].中國康復理論與實踐:1-6

[5]Szafranski K, Abraham KJ, Mekhail K. Non-coding RNA in neural function, disease, and aging. Front Genet 2015; 6: 87.

[6]李偉.血管生成素-1對豬慢性缺血心肌中功能性新生血管增生的促進作用[J].復旦學報(醫學版),2018,45(03):347-353.

[7]Purvis N, Bahn A, Katare R. The role ofmiRNAs in cardiac stem cells. Stem Cells Int 2015; 2015: 194894.

[8]袁園,張瀟,邵菊,孫芳,李蓉.富血小板血漿對小鼠下肢缺血血管生成的作用研究[J].重慶醫學,2019,48(02):198-201.

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