吳閩付,陶金艷,葛正行
貴陽中醫學院研究生院,貴陽550021
小細胞肺癌占肺癌的15%~20%,其惡性程度極高,5年生存率僅為10%~20%[1]。小細胞肺癌對化療比較敏感,初治緩解率較高,但極易發生耐藥,由于小細胞肺癌細胞具有生長分數高、倍增時間短的特點,因此多數患者在確診時往往已發生遠處轉移。目前,臨床針對小細胞肺癌的治療仍不具有靶向性。但已有研究發現,細胞增殖抑制基因(hyperplasia suppressor gene,HSG)基因 、WNT/Ca2+信號通路與腫瘤的生長和轉移密切相關[2],但目前針對其與小細胞肺癌關系的研究仍較少。本研究對小細胞肺癌中HSG基因及WNT/Ca2+信號通路關鍵基因的表達情況進行分析,旨在為臨床小細胞肺癌的基因靶向治療提供理論參考,現報道如下。
裸鼠20只,無特定病原體(specific pathogen free,SPF)級,雌雄各10只,年齡為6~8周,體重為18~22 g,購自常州卡文實驗動物有限公司,合格證書[SCXK(蘇)2011-0003]。
Trizol總RNA提取試劑購自GenStar-Biosolutions公司,反轉錄試劑盒及擴增試劑盒均購自天根生化科技(北京)有限公司,人小細胞肺癌NCIH446細胞購自齊氏生物科技有限公司;NanoDrop 2000超微量分光光度計購自美國Thermo公司,實時熒光定量逆轉錄聚合酶鏈反應(reverse transcription-polymerase chain reaction,RT-PCR)儀和聚合酶鏈反應(polymerase chain reaction,PCR)儀購自美國ABI公司,凝膠成像系統購自Bio-Rad公司。
將NCI-H446細胞靜置于37℃、5%CO2培養箱中培養24 h,隨后進行傳代,分別在含10%胎牛血清和1%雙抗的DMEM培養基中培養,取第2代NCI-H446細胞用于接種。
1.4.1 細胞接種將第2代NCI-H446細胞制成濃度為1×107/HP的細胞懸液,在100級實驗室內,用帶6號針頭的2.5 ml注射器取1 ml細胞懸液注射于裸鼠皮下,雙前肢腋下注射約0.2 ml[3-4]。
1.4.2 裸鼠腫瘤組織提取與鑒定接種后5天左右,接種部位表面可見一暗紅色突起腫瘤組織,拖頸處死裸鼠,切開腫塊皮膚取出腫塊,將腫瘤組織切成重量為50~100 mg的組織塊,隨機取腫瘤組織塊于10%中性福爾馬林固定液中固定,將標本送于貴陽中醫學院第二附屬醫院病理科進行病理鑒定。
取50 mg腫瘤組織及50 mg距腫瘤組織1 cm的皮膚組織(癌旁組織),采用液相提取法提取腫瘤組織和癌旁組織總RNA,隨后對總RNA進行瓊脂糖電泳檢測其質量。將提取的總RNA逆轉錄成cDNA,逆轉錄體系:4 μl 5×Prime Script Buffe(rfor real time),1 μl Prime Script RT Enzyme Mix I,1 μl Oligo dT Primer(50 μmol/L),1 μl Random 6 mers(100 μmol/L),2 μl cDNA 模 板 ,9 μl Rnase Free ddH2O;反應條件:37 ℃ 15 min,85 ℃ 5 s;反應產物于4℃冰箱保存。按如下方法構建PCR反應體系:SYBR premix Ex Taq Ⅱ 10 μl,PCR Forward Primer(10 μmol/L)0.8 μl,PCR Reverse Prime(r10 μmol/L)0.8 μl,ROX Reference Dye Ⅱ 0.4 μl,cDNA模板2 μl,Rnase Free ddH2O 6 μl。按兩步法設置反應條件:第一步,90℃30 s預變性,共1個循環;第二步,95℃5 s,60℃34 s,共40個循環。采用7500 Software v2.3軟件分析PCR結果。基因的相對表達量用ΔΔCt法表示,具體計算公式:成瘤組基因ΔCt=成瘤組基因Ct值-內參基因Ct值;對照組基因ΔCt=對照組基因Ct值-內參基因Ct值;ΔΔCt值=成瘤組基因ΔCt-對照組基因ΔCt;倍數變化采用 2-ΔΔCt表示,2-ΔΔCt>1表示成瘤組基因表達水平高于對照組,2-ΔΔCt<1表示對照組基因表達水平高于成瘤組,2-ΔΔCt=1表示兩組表達水平一致。
采用SPSS 19.0統計軟件對數據進行分析。符合正態分布的計量資料以均數±標準差(±s)表示,兩組間比較采用t檢驗。以P<0.05為差異有統計學意義。
20只接種NCI-H446細胞懸液的裸鼠中,1只裸鼠于操作過程中死亡,15只裸鼠成功成瘤,成瘤率為78.9%(15/19)。腫瘤組織在蘇木精-伊紅(hematoxylin-eosin,HE)染色下可見小于靜止期小淋巴細胞大小的腫瘤細胞,其形態具有圓形、卵圓形或梭形核,細胞質稀少,細胞核內染色質呈細顆粒狀,核仁缺乏或不明顯,細胞邊界不清,可見核切跡,核分裂數高(圖1)。成瘤組織病理學形態與NCI-H446細胞腫瘤病理學形態大致相同,說明造模成功。

圖1 裸鼠成瘤組織的病理切片(HE染色,×200)
取同一標準HSG、WNT5A、WNT11及β-actin基因的cDNA模板,進行1倍、10倍、100倍濃度稀釋,分別在同一擴展體系下進行基因擴展,結果顯示:HSG、WNT5A、WNT11及β-actin基因的擴展效率均為89.25%,r2=0.993;各指標均無引物二聚體以及非特異性擴增高峰的出現,引物設計合理,特異性較高。
以癌旁組織為對照,成瘤組織中HSG基因的相對表達量明顯降低,為(0.79±0.23),WNT5A、WNT11基因的相對表達量明顯增高,分別為(6.62±1.45)、(4.80±1.74),差異均有統計學意義(P<0.01)。
HSG基因由中國學者陳光慧發現,其編碼產物HSG/MFN2可以通過抑制ERK/MAPK信號轉導通路使細胞周期停滯在G0/G1期。HSG基因定位于人1號染色體短臂36.22,該區域易發生基因突變,出現異位或缺失[5]。相關研究表明,HSG基因通過影響線粒體融合度及活動性而參與細胞分化過程[6]。進年來,HSG基因作為一個抑癌基因逐漸被人們重視[7]。也有研究證明,HSG基因具有抑制腫瘤細胞增殖和促進腫瘤細胞凋亡的作用[8]。HSG基因與腫瘤轉移有關[9-11]。本研究結果顯示,成瘤組織中HSG基因的相對表達量明顯低于癌旁組織(P<0.01),表明HSG具有抗腫瘤效應,可能為潛在的抑癌基因[12-13],為小細胞肺癌的早期治療提供靶點。
WNT/Ca2+信號通路屬于WNT信號通路中的非經典通路之一,激活該通路的關鍵蛋白有WNT5A、WNT11,該通路被激活后可引起細胞內Ca2+濃度增加和Ca2+敏感信號成分的激活,以調節細胞黏著和細胞運動。WNT5A在各器官腫瘤發展過程中起到重要的作用,在各系統腫瘤組織中都有較高表達[14-15]。相關研究表明,WNT信號異常激活與拮抗基因SFRP的缺失或啟動子的甲基化導致基因沉默或表達下調有關[16]。本研究結果顯示,WNT5A、WNT11在成瘤組織中的表達水平明顯增高,表明WNT/Ca2+信號通路在成瘤組織中大量開放,并參與成瘤的過程。
綜上所述,HSG基因表達水平降低及WNT/Ca2+信號通路大量開放共同作用,可以促進小細胞肺癌細胞的生長及轉移。但本研究因受實驗經費影響,實驗樣本較小,未進行相關蛋白檢測,因此本實驗結果僅為后續相關實驗提供有限參考。