蚓激酶對TGF-β1誘導HK-2細胞ColⅠ、PAI-1、NOX4表達的影響

魏曉露，李月紅，李國霞

（1.天津中醫藥大學研究生院，天津 301617；2.天津南開醫院腎內科，天津 300100 ；3.天津醫科大學國際醫學院，天津 300070 ）

腎纖維化（renal fi brosis，RF）是慢性腎臟疾病發展至終末期腎功能衰竭的重要病理基礎，嚴重危害人類健康，有效干預纖維化的發生、發展，已受到醫學領域的廣泛關注[1-2]。蚓激酶是中藥地龍中具有蛋白水解作用的單體成分，有激活抗凝，抑制血小板聚集，改善微循環等作用，臨床上主要用于防治心腦血管病、下肢深部靜脈血栓、腎病綜合征等。我們前期研究發現蚓激酶可有效阻抑UUO大鼠腎纖維化的進展[3]。基于前期研究，本實驗從體外細胞角度，探討蚓激酶對轉化生長因子-β1（TGF-β1）刺激的人腎小管上皮細胞（HK-2）細胞膠原蛋白Ⅰ（ColⅠ）、纖溶酶原激活物抑制劑-1（PAI-1）、NADPH氧化酶4（NOX4）表達的影響。

1 材料

1.1 實驗材料及試劑 人腎小管上皮細胞（HK-2），由天津中醫藥大學第一附屬醫院研究所惠贈；蚓激酶購自北京普天同創公司（規格：26000 U/支）；鹽酸貝那普利購自北京諾華制藥有限公司；MTT購自Amresco公司；TGF-β1、DMSO、RIPA裂解液均購自Sigma公司；一抗 ColⅠ、PAI-1、NOX4、GAPDH兔抗大鼠單克隆抗體，二抗山羊抗兔 IgG均購自proteintech公司；TRIpure試劑購自艾德萊公司；cDNA合成試劑盒、實時定量PCR擴增預混合溶液均購自novoprotein公司。

1.2 主要儀器 細胞培養箱（Thermo）；倒置顯微鏡CKX41（Olympus）；酶標儀（Thermo Varioskan）；電泳儀、轉膜裝置（美國 Bio-Rad）；熒光PCR儀器ABI7500（美國ABI）。

2 方法

2.1 細胞培養 將凍存的HK-2復蘇后，加入含10%胎牛血清的DMEM/F12（加入100 U/L鏈霉素和100 U/L青霉素）培養液在37 ℃、5%CO2的培養箱中培養，每2天更換1次細胞培養液，約培養3~4 d細胞融合至90%以上后可傳代培養。

2.2 藥物配制 將蚓激酶用含血清培養液溶解配置成1200 U/mL的貯存液TGF-β1用含血清培養液溶解配置成1 mg/mL的貯存液；鹽酸貝那普利用DMSO助溶，用含血清培養液配置成終濃度為100 μmoL/L的貯存液，其中DMSO的終濃度≤0.5%。

2.3 MTT法檢測不同劑量蚓激酶對HK-2活性的影響 收集對數期細胞，調整細胞懸液濃度為1×105個/mL，在96孔板中每孔加入100 uL細胞懸液，每組設6個復孔，將96孔板放入37 ℃、5%CO2培養箱， 待貼壁后給藥（設蚓激酶7個質量濃度：20、40、60、80、100、120、140 U/mL）；給藥后細胞放入培養箱培養24 h，藥物作用結束后，每孔加入 20 uL的MTT（5 mg/mL）；終止培養，小心吸去孔內培養液，每孔加入150 uL DMSO，37 ℃溫箱孵育 10 min后，用酶標儀檢測單波長為490 nm處各孔的光密度（OD）值。

2.4 實驗分組 1）正常組；2）模型組：TGF-β1+培養液；3）貝那普利組：TGF-β1+鹽酸貝那普利（10 μmol/L）+培養液；4）蚓激酶低劑量組：TGF-β1+蚓激酶（30 U/mL）+培養液；5）蚓激酶中劑量組：TGF-β1+蚓激酶（60 U/mL）+培養液；6）蚓激酶高劑量組：TGF-β1+蚓激酶（120 U/mL）+培養液。其中TGF-β1提前 30 min作用于細胞，TGF-β1的終濃度為10 μg/mL，培養24 h后用于后續檢測。

2.5 Western blotting 法檢測 PAI-1、NOX4、ColⅠ的蛋白含量 RIPA裂解液提取總蛋白，將各組蛋白調至相同濃度后上樣，SDS-PAGE電泳結束后將蛋白轉移到PVDF膜上，5%脫脂奶37 ℃封閉3 h，一抗（1：2000稀釋）4 ℃孵育過夜，漂洗后，加入二抗（1：10000稀釋）37 ℃孵育l.5 h，最后加入ECL在儀器中顯色。以GAPDH為內參，應用ImageJ圖像分析軟件對特異性條帶做定量分析，以目標條帶與內參的吸光度值比反映蛋白相對表達量。

2.6 熒光定量PCR檢測PAI-1、NOX4、ColⅠ的基因表達 TRIpure 試劑提取各組細胞總RNA，鑒定RNA純度；按照試劑盒說明書進行cDNA合成。PCR引物序列為：

ColⅠ上游5’- GGAGAGAGCATGACCGATGG -3’，

下游5’- GAATCGACTGTTGCCTTCGC -3’；

PAI-1上游5’- CTTCATGGGGCAAGTGATG-3’，

下游5’- TCTCCAGTTTCGTCCAAATGA-3’；

NOX4上游5’- CTTGGTGAATGCCCTCAACT-3’，

下游：5’-TCAGACCAGGAATGGTTG TG-3’；

GAPDH上游5’-CCTTCCGTGTTCCTACCC-3’，

下游5’-AAGTCGCAGGAGA CAACC-3’。反應條件為 95 ℃預變性15 min、95 ℃變性10 s、50 ℃退火/延伸30 s、循環40次，該實驗重復3次。反應結果以Ct值表示，采用2-ΔΔCt法對目的基因進行相對定量分析。

3 結果

3.1 蚓激酶對HK-2活性的影響 MTT法顯色深淺隨孔板中活細胞數增加而逐漸加深，其光密度值（OD）亦隨之升高。計算半數抑制率（IC50）， IC50約為蚓激酶濃度120 U/mL的加藥濃度。見表1。

表1 蚓激酶對HK-2活性的影響（± s ，n = 6）

表1 蚓激酶對HK-2活性的影響（± s ，n = 6）

注：n為重復次數

組 別 劑量/（U/mL） OD值 抑制率/%正常組 - 0.57±0.34 0蚓激酶20 0.55±0.19 3.5 40 0.50±0.10 12.3 60 0.44±0.23 22.8 80 0.37±0.02 35.1 100 0.35±0.02 38.6 120 0.29±0.14 49.1 140 0.28±0.15 50.8

3.2 蚓激酶對TGF-β1刺激HK-2細胞ColⅠ、PAI-1、NOX4的蛋白含量的影響 模型組中HK-2經TGF-β1刺激后，與正常組比較，模型組ColⅠ、PAI-1、NOX4的蛋白含量均比正常組升高（P＜0.05）；貝那普利組及蚓激酶低、中、高劑量組ColⅠ、PAI-1、NOX4的蛋白含量均比模型組降低（P＜0.05）。見圖1、表 2。

圖1 ColⅠ、PAI-1、NOX4及內參GAPDH的蛋白表達

表2 各組HK-2細胞ColⅠ、PAI-1、NOX4的蛋白表達情況（± ，n = 3）s

表2 各組HK-2細胞ColⅠ、PAI-1、NOX4的蛋白表達情況（± ，n = 3）s

注：與正常組比較，# P＜0.05；與模型組比較，△P＜0.05；n為重復次數

組 別 ColⅠ PAI-1 NOX4正常組 0.07±0.01△ 0.36±0.03△ 0.41±0.03△模型組 1.14±0.12# 1.06±0.09# 1.13±0.09#貝那普利組 0.40±0.02#△ 0.58±0.06#△ 0.71±0.11#△蚓激酶低劑量組 0.97±0.07#△ 0.60±0.04#△ 0.92±0.02#△蚓激酶中劑量組 0.71±0.08#△ 0.59±0.05#△ 0.79±0.06#△蚓激酶高劑量組 0.70±0.02#△ 0.43±0.02#△ 0.75±0.02#△

3.2 蚓激酶對TGF-β1刺激HK-2細胞ColⅠ、PAI-1、NOX4的基因表達影響 與正常相比，模型組ColⅠ、PAI-1、NOX4基因表達均上調（P＜0.05），在給藥不同濃度的蚓激酶和貝那普利均能明顯下調ColⅠ、PAI-1、NOX4基因表達（P＜0.05）。見表3。

表3 各組HK-2細胞ColⅠ、PAI-1、NOX4的基因表達情況（± s ，n = 3）

表3 各組HK-2細胞ColⅠ、PAI-1、NOX4的基因表達情況（± s ，n = 3）

注：與正常組比較，# P＜0.05；與模型組比較，△P＜0.05；n為重復次數

組 別 ColⅠ PAI-1 NOX4正常組 1.00±0.00△ 1.00±0.00△ 1.00±0.00△模型組 4.31±0.32# 2.01±0.59# 3.08±0.47#貝那普利組 2.47±0.05#△ 1.36±0.01#△ 1.72±0.06#△蚓激酶低劑量組 3.60±0.62#△ 1.76±0.23#△ 2.21±0.17#△蚓激酶中劑量組 3.16±0.14#△ 1.59±0.36#△ 1.98±0.25#△蚓激酶高劑量組 2.77±0.33#△ 1.43±0.27#△ 1.81±0.22#△

4 討論

地龍作為一種蟲類藥，具有搜風通絡、活血祛瘀的功效[4]，蚓激酶是從地龍體內提取的一組絲氨酸蛋白酶，因其溶栓能力強、不良反應小等優勢而得到廣泛關注。蚓激酶的藥理作用是多方面的，包括激活抗凝，纖溶，抑制血小板聚集，改善微循環、抗腫瘤、抗炎等。有實驗研究表明，蚓激酶對肺纖維化、心纖維化有一定的療效[5-6]，然而關于蚓激酶防治腎纖維化的實驗研究尚未見報道。課題組前期研究發現蚓激酶能明顯減輕UUO大鼠腎纖維化的病理改變，降低TGF-β1、α-SMA等纖維化因子的含量[3]。基于前期基礎，本實驗采用TGF-β1誘導HK-2細胞轉分化，從細胞層面觀察蚓激酶對腎纖維化的保護作用。

腎纖維化是各種類型的腎臟病進展到終末期的重要病理過程[7-8]，包括肌成纖維細胞（myof i broblast，MyoFb）增殖和活化、腎小管上皮細胞凋亡、炎癥細胞浸潤、細胞外基質（extracellular matrix，ECM）在腎組織內過度沉積等[9-11]。腎小管上皮細胞是腎間質纖維化的主要參與者[12-13]，TGF-β1作為經典的促纖維化因子[13]，刺激HK-2細胞后，小管上皮細胞向間充質細胞轉化[14-15]，使HK-2細胞轉化為MyoFb。MyoFb合成分泌Ⅰ型膠原、Ⅲ型膠原（ColⅠ，Col Ⅲ）、纖維連接蛋白（f i bronectin，FN）增多，加劇ECM的聚集，導致ECM在腎組織的過度沉積，引起腎纖維化。纖溶酶原激活物（PA）和PAI-1是調節ECM降解過程中蛋白溶解和抗蛋白溶解的重要參與者[16]，纖溶酶可直接降解ECM，腎內PA/ PAI-1平衡失調可影響纖溶酶生成，促進腎間質纖維化發生。Yamaguchi I 等[17]發現PAI-1表達上調還可使腎間質MyoFb增多，TGF-β1和ColⅠ表達增加，而尿激酶活性顯著減低。氧化應激在腎纖維化發生發展中起著重要的作用，活性氧（reactive oxygen species，ROS）是氧化應激過程中最重要的信號分子[18]，而NOX4產生的ROS是腎纖維化時腎組織局部ROS的主要來源。NOX4可通過影響腎血流動力學、促進炎癥反應、影響腎小管基底膜結構穩定性、介導TGF-β1各種通路來影響腎纖維化進程[19]。腎小管上皮細胞通過成纖維細胞活化和誘導氧化應激，增加各種炎癥因子和趨化因子的表達，最終導致腎臟纖維化的發生[20]。

實驗結果表明，HK-2細胞在TGF-β1刺激下，各組ColⅠ、PAI-1、NOX4蛋白和基因表達較正常組相比均升高；與模型組相比，蚓激酶各組ColⅠ、PAI-1、NOX4蛋白和基因表達也均有著不同程度的降低，說明蚓激酶可能是通過糾正纖溶平衡和阻抑氧化應激，從而對腎纖維化起到一定的防治作用。然而蚓激酶是通過具體何種通路對腎纖維化起防治作用，需要今后進一步實驗研究。