李曉軍,馬躍英,郭躍東,王海霞,馮 謙,王春穎,李康寧,黃少磊,劉彥民
(內蒙古雙奇藥業股份有限公司,內蒙古呼和浩特 010010)
乳酸菌是工業上公認的發酵能力最強的微生物,主要用于益生菌和乳酸生產。盡管如此,乳酸菌發酵過程中通常受到產物乳酸的抑制,導致生長速度減緩或停止,從而不能達到理想的細胞濃度或者乳酸濃度。目前,常用的濃縮培養方法主要有緩沖鹽法、化學中和法、透析培養法、膜過濾法和微膠囊培養法等。從成本和應用規模上考慮,只有緩沖鹽法和化學中和法更適合大規模的生產。一般情況下,研究人員以緩沖鹽法配合化學中和法來實現更高的菌體密度。常用的中和劑有碳酸鈣、氫氧化鈣、氨水、氫氧化鈉或氫氧化鉀[1]。我國工業上常用碳酸鈣作為乳酸發酵的中和劑。目前,針對不同類型的酸中和劑對乳酸菌的生長和產酸影響的研究比較多[2]。但是,關于不同目數碳酸鈣對乳酸菌發酵和凍干的影響的研究非常鮮見。以保加利亞乳桿菌為研究對象,系統比較了不同目數碳酸鈣對保加利亞乳桿菌發酵和凍干的影響。
1.1.1 供試材料
保加利亞乳桿菌NQ2508。
1.1.2 培養基
改良MRS培養基:蛋白胨10 g,牛肉膏10 g,酵母粉5 g,葡萄糖20 g,K2HPO42 g,檸檬酸二銨2 g,乙酸鈉 5 g,吐溫 -80 1 mL,MgSO4·7H2O 0.58 g,MnSO4·4H2O 0.25 g,碳酸鈣2 g,蒸餾水 1 000 mL,pH值6.6。MRS檢測培養基:在以上改良MRS培養基的基礎上加入15 g的瓊脂粉。凍干保護劑配方:脫脂乳200 g,乳糖120,谷氨酸鈉10 g,抗壞血酸10 g,蒸餾水1 000 mL。
1.1.3 主要試劑
乳酸為分析純,天津市富宇精細化工有限公司提供;100目,200目,325目,600目,800目和1 250目輕質碳酸鈣,天津燕東礦產品有限公司提供。
1.1.4 主要儀器及設備
J2-21型離心機(BECKMAN)、超凈臺BCN-1360,哈爾濱東聯公司產品;1029型厭氧培養箱,Forma scientific公司產品;2014-025Bb型真空冷凍干燥機,上海東富龍公司產品。
1.2.1 不同目數碳酸鈣中和乳酸能力比較
配制含不同目數碳酸鈣的MRS培養基各200 mL,于121℃下滅菌15 min。冷卻至室溫后,分別以50%的乳酸滴定,每次每組加入的量均為50μL,加入后搖瓶5 s,然后測定pH值,直到所有組的pH值均降到4.5以下,停止滴加。比較各培養基pH值降到4.5時滴加乳酸的量。根據乳酸的滴加量來初步比較各種碳酸鈣中和乳酸的能力。
1.2.2 不同目數碳酸鈣對保加利亞乳桿菌生長影響
將保加利亞乳桿菌菌種在MRS液體培養基中活化2代后,按5%的接種量分別接種于含不同目數碳酸鈣的MRS培養基中,厭氧培養箱于37℃下培養。每隔1 h取樣測定發酵液活菌數和pH值,以活菌數和pH值為縱坐標、時間為橫坐標,繪制生長曲線。比較不同目數碳酸鈣對保加利亞乳桿菌生長的影響。
1.2.3 不同目數碳酸鈣對保加利亞乳桿菌凍干影響
將保加利亞乳桿菌菌種在MRS液體培養基中活化2代后,按5%的接種量分別接種于含不同目數碳酸鈣的MRS培養基中,厭氧培養箱37℃下培養。培養至對數生長后期時,于4℃下各發酵液以轉速8 000 r/min離心20 min,棄去上清,離心得到的菌體以2倍質量的保護劑懸浮,然后進行真空冷凍干燥(預凍:-40℃,2 h;升華干燥:-30~-8℃,8 h;解析干燥:8~25℃,4 h)。得到的凍干粉進行活菌數檢測,并計算凍干存活率。凍干存活率的計算方法為:

含不同目數碳酸鈣的MRS培養基滅菌后的pH值基本一致,都在6.5左右。但每種培養基中和乳酸的能力卻有很大差別。同樣將培養基pH值降到4.5,325目的碳酸鈣所消耗的乳酸最多,為1 450μL。初步可以判斷325目碳酸鈣的中和能力較其他幾種要強。
不同目數碳酸鈣中和乳酸的能力比較見圖1。

圖1 不同目數碳酸鈣中和乳酸的能力比較
各試驗組的生長曲線見圖2。

圖2 各試驗組的生長曲線
由圖2可知,各試驗組接種后經過短的緩慢期(約2 h)后,進入對數期,在發酵到6~8 h,時,菌體從對數期進入穩定期??梢?,使用325目的碳酸鈣的試驗組3在8 h后進入穩定期,比其余各組晚2 h,對數期時間的延長,也使得發酵液活菌數得到了很大的提升。其中,試驗組3的發酵液活菌數最高,達到19×108CFU/mL,與其他組相比,有顯著性差異 (F=21.90,p<0.01)。
在對數末期和穩定性前期收獲各組發酵液,加入凍干保護劑,進行冷凍干燥,并計算凍干存活率。由表1和圖3的結果可以看出,試驗組3的凍干存活率較高,與其他組相比,差異具有統計學意義(p<0.01)。
碳酸鈣的目數越高,粒徑越小。粒徑的大小決定了碳酸鈣顆粒的比表面積及顆粒上孔的大小和數量。在碳酸鈣顆粒上的孔可以為乳酸菌提供一個相對有利的微環境[3]。首先,碳酸鈣外殼可以使孔內細胞保持較高的活性水平,保護細胞不受研磨力和剪切力的影響。其次,乳酸菌產生的乳酸一旦被釋放到細胞外溶液中,這部分乳酸就會被其周圍的碳酸鈣快速消耗,從而導致細胞周圍溶液中游離乳酸濃度的降低。從而降低游離乳酸的反饋抑制作用,提高細胞微環境的pH值[4]。研究得到的結果顯示,使用325目碳酸鈣的試驗組3的發酵液活菌數和凍干存活率最高,其次是使用800目碳酸鈣的試驗組5。目數太大和太小的試驗組發酵液活菌數和凍干存活率均不高??赡艿脑蚴牵∧繑档奶妓徕}質量大、易沉底,大目數的碳酸鈣質量小易漂浮,只有325目的碳酸鈣處于懸浮狀態,與乳酸菌的接觸面積最大,且其比表面積和孔的大小及數量也適宜。
表1 各試驗組的凍干存活率(±s)

表1 各試驗組的凍干存活率(±s)
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圖3 各試驗組的凍干存活率
研究的不足之處在于,沒有從微觀角度證實不同目數碳酸鈣形貌之間的區別,及保加利亞乳桿菌與碳酸鈣顆粒之間的相互作用的機理。但是,研究的實際應用價值還是非常大的。首先,為乳酸菌發酵中和劑的篩選又創造了一條新途徑和一種新的思路。其次,研究結果可進一步通過中試試驗和生產試驗的驗證,應用于生產中,提升產能。