楊大俏,王錦旭,李來好*,楊賢慶,馬海霞,岑劍偉,王悅齊
(1.中國水產(chǎn)科學研究院南海水產(chǎn)研究所,農(nóng)業(yè)農(nóng)村部水產(chǎn)品加工重點實驗室,廣東 廣州 510300;2.上海海洋大學食品學院,上海 201306;3.韓山師范學院食品工程與生物科技學院,廣東 潮州 521041)
牡蠣俗稱蠔或海蠣子,具有很高的藥用價值[1-2],富含鋅、鐵、鈣等元素,素有“海洋牛奶”之稱[3]。褶牡蠣(Alectryonella plicatulaGmelin)分布于中國南部海域,是一種高蛋白高碳水化合物的重要經(jīng)濟貝類,經(jīng)研究發(fā)現(xiàn)褶牡蠣具有較強的體外抗氧化活性及體內(nèi)抗疲勞特性[3],但是目前中國對牡蠣產(chǎn)品除直接食用外,大多通過簡單加工直接進入食品市場,產(chǎn)品附加值不高[4],牡蠣產(chǎn)業(yè)發(fā)展受到制約。相關研究報道顯示牡蠣多糖[5]具有抗腫瘤、降糖、增強免疫力等功能[6];天然海洋活性多肽具有較高的穩(wěn)定性[7-8],但是海洋魚蝦貝類中的生物活性肽的研究尚處于實驗室階段[9-12]。國內(nèi)外對牡蠣的研究主要集中于多肽的活性和序列分析,少量研究針對于牡蠣多糖的提取工藝和結構研究[13-14],而關于聯(lián)產(chǎn)制備牡蠣多糖多肽的研究較少。本研究旨在得到同時提取褶牡蠣中功能多糖和活性多肽的工藝,達到褶牡蠣多糖和多肽聯(lián)產(chǎn)制備[15-16],以提高褶牡蠣利用率。
本實驗以褶牡蠣全臟器為原料,采用單因素試驗研究胰蛋白酶添加量、酶解時間及料液比對多糖多肽聯(lián)產(chǎn)制備的影響,在此基礎上進一步通過響應面法[17-19]分析各因素及其交互作用對多肽質(zhì)量分數(shù)、總糖質(zhì)量分數(shù)、水解度及酸性糖質(zhì)量分數(shù)[20-21]的影響,并最終得到最優(yōu)多糖多肽聯(lián)產(chǎn)工藝條件,以期為連續(xù)膜分離聯(lián)產(chǎn)制備褶牡蠣多糖及多肽的中試化放大生產(chǎn)提供基礎。
褶牡蠣全臟器(于-20 ℃冷凍保藏備用)來源于廣東省潮州市。
堿性蛋白酶(210 AU/mg)、木瓜蛋白酶(≥800 U/mg)、胰蛋白酶(≥250 U/mg)、菠蘿蛋白酶(≥500 U/mg)、胃蛋白酶(≥10 000 NFU/mg)、中性蛋白酶(≥100 U/mg)廣州齊云生物技術有限公司;甘氨酸、氯化鈉、氫氧化鈉、無水乙醇、三氯乙酸、苯酚、無水硫酸銅、甲醛、鹽酸、濃硫酸(均為分析純) 廣州佳研生物科技有限公司;硫酸軟骨素、葡萄糖、Gly-Gly-Tyr-Arg(標準品)、1,9-二甲基亞甲基藍 美國Sigma公司。
JS30-230攪拌機 蘇泊爾股份有限公司;T50均質(zhì)機德國IKA公司;Sunrise-basic吸光酶標儀 瑞士Tecan公司;ZDJ-4A雷磁自動電位滴定儀 上海儀電科學儀器股份有限公司;三聯(lián)高壓平板膜設備 廈門福美科技有限公司。
1.3.1 聯(lián)產(chǎn)提取工藝
褶牡蠣全臟器→勻漿→均質(zhì)10 min→熱水浸提→調(diào)pH 8.0→酶解→煮沸滅酶→離心→上清液調(diào)pH 7.0→0.22 μm濾膜除雜→200 kDa膜分離→收集濾過液與截留液→濾過液經(jīng)8 kDa膜分離[22]→收集8 kDa以下濾過液(粗多肽)、8 kDa以上截留液(粗多糖)→凍干得粗多肽、粗多糖。
操作要點:熱水浸提:將牡蠣勻漿與水混勻后在55 ℃水浴0.5 h;離心:將經(jīng)過煮沸滅酶后的牡蠣酶解液9 000 r/min離心10 min;0.22 μm微濾條件:操作壓力0.12 MPa,操作溫度10 ℃;8 kDa膜分離超濾條件:操作壓力1.05 MPa,操作溫度10 ℃;200 kDa膜分離超濾條件:操作壓力0.5 MPa,操作溫度10 ℃;凍干:旋轉蒸發(fā)溫度55 ℃。
1.3.2 蛋白酶種類選擇
以褶牡蠣全臟器為原料,勻漿均質(zhì)、熱水浸提后分別按照質(zhì)量分數(shù)0.2%添加堿性蛋白酶、木瓜蛋白酶、胰蛋白酶、菠蘿蛋白酶、胃蛋白酶及中性蛋白酶6 種酶,分別在6 種酶的最適條件下(pH 8.0、6.0、8.0、7.0、4.0、7.0,溫度55 ℃)單酶酶解80 min,酶解液9 000 r/min離心10 min,取上清液測定多肽質(zhì)量分數(shù)及水解度,酶解液上清液pH值調(diào)至中性,加入無水乙醇至終體積分數(shù)為65%,4 ℃醇沉24 h,過濾取沉淀,丙酮洗滌3 次,干燥后配制成溶液檢測酸性糖及總糖質(zhì)量分數(shù)。以酶解液中多肽、總糖及酸性糖質(zhì)量分數(shù)的極大值為指標,判定最佳酶種類(水解度作參考指標)。
1.3.3 褶牡蠣肉多糖多肽聯(lián)產(chǎn)工藝的單因素試驗
1.3.3.1 酶添加量對褶牡蠣肉多糖多肽聯(lián)產(chǎn)工藝的影響
取50.0 g褶牡蠣全臟器勻漿均質(zhì)后,加入150 mL去離子水,于55 ℃熱水浸提0.5 h,調(diào)節(jié)pH 8.0,分別加入質(zhì)量分數(shù)0.1%、0.2%、0.3%、0.4%及0.5%的胰蛋白酶,在55 ℃酶解80 min。酶解后煮沸滅酶,離心取適量上清液測量水解度以及多肽質(zhì)量分數(shù),調(diào)節(jié)pH 7.0,加入無水乙醇至終體積分數(shù)為65%,4 ℃醇沉24 h,過濾取沉淀,丙酮洗滌3 次,干燥后配制成溶液檢測酸性糖質(zhì)量分數(shù)以及總糖質(zhì)量分數(shù)。以酶解液中多肽、總糖及酸性糖質(zhì)量分數(shù)的極大值為指標,判定最佳酶添加量(水解度作參考指標)。
1.3.3.2 酶解時間對褶牡蠣肉多糖多肽聯(lián)產(chǎn)工藝的影響
在胰蛋白酶添加量0.2%、料液比1∶3(g/mL)的情況下,分別酶解20、40、60、80 min及100 min。以酶解液中多肽、總糖及酸性糖質(zhì)量分數(shù)的極大值為指標,判定最佳酶解時間(水解度作參考指標)。
1.3.3.3 料液比對褶牡蠣肉多糖多肽聯(lián)產(chǎn)工藝的影響
在酶解時間80 min、胰蛋白酶添加量0.2%條件下,分別按照1∶1、1∶2、1∶3、1∶4、1∶5(g/mL)的料液比添加去離子水。以酶解液中多肽、總糖及酸性糖質(zhì)量分數(shù)的極大值為指標,判定最佳料液比(水解度作參考指標)。
1.3.4 響應面法優(yōu)化褶牡蠣肉多糖多肽聯(lián)產(chǎn)工藝
通過單因素試驗[23]確定選取酶添加量、酶解時間、料液比3 個因素進行編碼[14],以多肽、酸性糖和總糖質(zhì)量分數(shù)作為響應值,試驗因素與水平設計見表1。

表1 響應面試驗設計因素與水平Table 1 Factors and levels of response surface experiment
1.3.5 指標測定
多肽質(zhì)量分數(shù)的測定采用三氯乙酸沉淀法[24];總糖質(zhì)量分數(shù)的測定采用苯酚-硫酸法[25];水解度的測定依照甲醛滴定法[26-27];酸性糖質(zhì)量分數(shù)的測定采用1,9-二甲基亞甲基藍法[28]。
1.3.6 水解度及含量計算公式

式中:C1為滴定氫氧化鈉濃度/(mol/L);V1為1 mL酶解液消耗氫氧化鈉體積/L;V0為所得酶解液總體積/mL;M為—NH2摩爾質(zhì)量/(g/mol);M0為所用褶牡蠣全臟器質(zhì)量/g;C0為褶牡蠣全臟器蛋白質(zhì)質(zhì)量分數(shù)/%。

式中:C為褶牡蠣酶解液中多肽質(zhì)量濃度/(mg/mL);V為所得褶牡蠣酶解液上清液的體積/mL;M為所用褶牡蠣全臟器的質(zhì)量/mg。

式中:C為褶牡蠣酶解液中酸性糖質(zhì)量濃度/(mg/mL);V為所得褶牡蠣酶解液上清液的體積/mL;M為所用褶牡蠣全臟器的質(zhì)量/mg。

式中:C為褶牡蠣酶解液中葡萄糖的質(zhì)量濃度/(mg/mL);D為褶牡蠣酶解液上清液的稀釋倍數(shù);V為所得褶牡蠣酶解液上清液的體積/mL;M為所用褶牡蠣全臟器的質(zhì)量/mg。
1.3.7 多糖、多肽得率計算公式

式中:M1為多糖、多肽凍干品質(zhì)量/g;M2為500 g褶牡蠣全臟器勻漿干質(zhì)量/g。
以上實驗均經(jīng)過3 次重復操作,采用IBM SPSS Statistics 20.0對數(shù)據(jù)進行統(tǒng)計分析,數(shù)值采用的形式表現(xiàn),運用單因素方差分析(ANOVA)檢測平均值顯著性。

圖1 6 種酶對褶牡蠣勻漿各指標的影響Fig. 1 Comparison of hydrolysis efficiencies of A. plicatula with six proteases
由圖1可知,經(jīng)過胰蛋白酶水解的褶牡蠣酶解液中水解度、多肽、總糖及酸性糖質(zhì)量分數(shù)最高,故選擇胰蛋白酶酶解褶牡蠣勻漿,以期同時得到所需多糖多肽。
2.2.1 酶添加量對褶牡蠣多糖多肽聯(lián)產(chǎn)的影響
如圖2所示,水解度隨酶添加量的增多逐漸升高,酶添加量0.2%以上數(shù)值間存在顯著性差異(P<0.05);多肽、總糖及酸性糖質(zhì)量分數(shù)隨酶添加量的增加均呈現(xiàn)先增加后下降的趨勢,并在胰蛋白酶添加量為0.2%時達到最大值(P<0.05),故最佳酶添加量為0.2%。

圖2 胰蛋白酶添加量對褶牡蠣多糖多肽聯(lián)產(chǎn)的影響Fig. 2 Effects of trypsase addition amount on production of polysaccharides and polypeptides from A. plicatula
2.2.2 酶解時間對褶牡蠣多糖多肽聯(lián)產(chǎn)的影響


圖3 胰蛋白酶酶解時間對褶牡蠣多糖多肽聯(lián)產(chǎn)的影響Fig. 3 Effects of hydrolysis time on production of polysaccharides and polypeptides from A. plicatula
如圖3所示,水解度隨酶解時間的延長逐漸升高,各數(shù)值間存在顯著性差異(P<0.05);多肽、總糖及酸性糖質(zhì)量分數(shù)隨酶解時間延長而先增大后減小,并在酶解時間為80 min時達到最大值(P<0.05),故胰蛋白酶最佳酶解時間為80 min。
2.2.3 料液比對褶牡蠣多糖多肽聯(lián)產(chǎn)的影響


圖4 料液比對褶牡蠣多糖多肽聯(lián)產(chǎn)的影響Fig. 4 Effects of solid-to-water ratio on production of polysaccharides and polypeptides from A. plicatula
如圖4所示,隨溶劑用量增大,水解度逐漸減小;多肽、總糖及酸性糖質(zhì)量分數(shù)隨溶劑用量的增大呈現(xiàn)先增加后減小,并在料液比1∶3時達到最大值(P<0.05),故選擇最佳料液比為1∶3(g/mL)。

表2 響應面試驗設計與結果Table 2 Experimental design and results for response surface analysis
由圖2~4可知,在不同酶添加量、酶解時間及料液比下,褶牡蠣酶解液的多肽、總糖及酸性糖質(zhì)量分數(shù)均呈先增高后降低趨勢,且水解度達到12%左右,可以同時得到較高含量的多肽、總糖及酸性糖,故而在單因素試驗的基礎上,根據(jù)Box-Behnken設計原理,選取酶添加量(A)、酶解時間(B)、料液比(C)作為3因素,并以具有顯著性差異的多肽質(zhì)量分數(shù)(Y1)、總糖質(zhì)量分數(shù)(Y2)、水解度(Y3)、酸性糖質(zhì)量分數(shù)(Y4)作為響應值,試驗方案及結果見表2。
運用Design-Expert 8.0.5.0軟件對實驗結果進行回歸擬合,得到的回歸方程如下:

為檢驗上述方程的有效性,運用Design-Expert 8.0.5.0軟件對上述結果進行數(shù)據(jù)分析,可信度分析見表3,方差分析結果見表4。4 種響應值的可信度分析的模型相關系數(shù)R2分別為0.98、0.99、0.97、0.78,前3 種響應值的模型相關系數(shù)都接近于1,表示Y1、Y2、Y3模型相關度很好;變異系數(shù)分別為1.63%、1.46%、1.44%、10.03%,數(shù)值越小表明置信度越好,說明該數(shù)學模型的對Y1、Y2、Y3的置信度極高,對響應值Y4的置信度較高,該模型可以較好地反映試驗的真實值[29]。由表4可知,對于多肽質(zhì)量分數(shù)、總糖質(zhì)量分數(shù)、水解度和酸性糖質(zhì)量分數(shù)4 個響應值,該模型的F值分別為70.52、149.70、52.51、7.34,P值均小于0.01,可以判斷該模型是極顯著的;同時4 個響應值的模型失擬項P值均大于0.05,說明模型失擬項不顯著。綜上所述,該回歸模型對4 個響應值的擬合程度較好,試驗誤差小。

表3 模型的可信度分析Table 3 Reliability analysis of models

表4 回歸方程的方差分析Table 4 Analysis of variance (ANOVA) of regression equations

續(xù)表4
利用此模型可擬合出對4 個響應值相應的響應面分析圖,其三維圖形是響應值對試驗因素(單因素變量)所構成的三維空間曲面圖,當因素交互作用時,三維曲面圖可直觀看出響應值的變化趨勢[30]。二維等高線圖則進一步總結出各個變量間的交互作用并確定最優(yōu)點。圖5a中,隨著酶添加量和酶解時間水平的增加,多肽質(zhì)量分數(shù)呈現(xiàn)先增加后降低的趨勢,且其二維等高線圖偏圓形,判斷兩個因素之間的交互作用不顯著;圖5b中,隨著酶添加量和料液比水平的增加,多肽質(zhì)量分數(shù)呈現(xiàn)先增加后降低的趨勢,等高線圖偏圓形,說明兩因素之間交互作用不顯著;圖5c中,隨著酶解時間和料液比水平的增加,多肽質(zhì)量分數(shù)先增加后降低,其等高線圖偏橢圓形,表明兩個因素之間有一定的交互作用。結合表4可知,3因素對多肽質(zhì)量分數(shù)影響力為:酶解時間>料液比>酶添加量。


圖5 酶添加量、酶解時間和料液比交互作用對褶牡蠣多肽提取的影響Fig. 5 Interactive effects of enzyme dosage, hydrolysis time and solidto-water ratio on the yield of polypeptides from A. plicatula
圖6 a中,隨著酶添加量的增加和酶解時間的延長,總糖質(zhì)量分數(shù)呈現(xiàn)先增加后減小的趨勢,其等高線圖偏橢圓形,判斷兩個因素之間有一定的交互作用;圖6b中,隨著酶添加量和料液比水平的增加,總糖質(zhì)量分數(shù)先增加后減小,兩者的等高線圖偏橢圓形,說明兩者有一定的交互作用;圖6c中,隨著酶解時間和料液比水平的增加,總糖質(zhì)量分數(shù)同樣先增加后降低,且兩因素的交互作用較弱。綜合圖6可以看出對總糖提取,3 種因素之間交互作用不顯著。結合表4可知,3因素對總糖含量影響力為:酶添加量>酶解時間>料液比。


圖6 酶添加量、酶解時間和料液比交互作用對褶牡蠣總糖提取的影響Fig. 6 The interactive effects of enzyme dosage, hydrolysis time and liquid-solid ratio on the yield of total-sugar from A. plicatula
圖7 a中,隨著酶添加量和酶解時間水平的增加,水解度呈現(xiàn)先增加后降低的趨勢,且其二維等高線圖偏橢圓形,判斷兩個因素之間有一定的交互作用;圖7b中,隨著酶添加量的增加,水解度呈現(xiàn)先增加后降低的趨勢;隨著料液比水平的增加水解度逐漸降低,與單因素試驗結果一致。圖7c中,隨著酶解時間的延長,水解度先增加后降低;隨著料液比水平的增加水解度逐漸降低,其等高線圖表明兩個因素之間無交互作用。結合表4可知,3因素對水解度影響力為:酶添加量>料液比>酶解時間。


圖7 酶添加量、酶解時間和料液比兩兩交互作用對褶牡蠣水解度的影響Fig. 7 The interactive effects of enzyme dosage, hydrolysis time and liquid-solid ratio on the degree of hydrolysis from A. plicatula
圖8 a中,隨著酶添加量和酶解時間水平的增加,酸性糖質(zhì)量分數(shù)呈現(xiàn)先增加后降低的趨勢,且其二維等高線圖偏橢圓形,判斷兩個因素之間有交互作用顯著;圖8b中,隨著酶添加量和料液比水平的增加,水解度呈現(xiàn)先增加后降低的趨勢,其二維等高線圖偏橢圓形,表明兩個因素之間交互作用顯著。圖8c中,隨著酶解時間的延長和料液比水平的增加,酸性糖先增加后降低,其等高線圖表明兩個因素之間交互作用顯著。結合表4可知,3因素對酸性糖質(zhì)量分數(shù)影響力為:料液比>酶添加量=酶解時間。


圖8 酶添加量、酶解時間和料液比兩兩交互作用對褶牡蠣酸性糖提取的影響Fig. 8 Interactive effects of enzyme dosage, hydrolysis time and solidto-water ratio on the yield of glycosaminoglycan from A. plicatula
經(jīng)Design-Expert 8.0.5.0軟件分析可得最佳工藝條件為添加胰蛋白酶0.21%、酶解時間79.26 min、料液比1∶3.08(g/mL),相應的響應面二次模型預測多肽質(zhì)量分數(shù)為86.31%,總糖質(zhì)量分數(shù)為31.40%,水解度為11.79%,酸性糖質(zhì)量分數(shù)為2.07%。為驗證該響應面法的可行性,考慮到實際操作問題,選取最佳提取工藝為胰蛋白酶添加量0.2%、酶解時間80 min、料液比1∶3(g/mL),重復3 次實驗得到褶牡蠣酶解液中多肽質(zhì)量分數(shù)為(85.14±1.67)%,總糖質(zhì)量分數(shù)為(28.35±2.72)%,水解度為(11.12±0.61)%,酸性糖質(zhì)量分數(shù)為(1.60±0.10)%,與回歸方程預測值相近,說明褶牡蠣多糖多肽聯(lián)產(chǎn)工藝是可行的,并在此條件開展以下實驗。
取500.0 g褶牡蠣勻漿,按照所得最佳工藝酶解褶牡蠣,經(jīng)過超濾膜分離酶解上清液,得粗多糖制品和粗多肽制品,重復3 次,粗多糖凍干品(19.11±0.41)g,得率為(2 9.3 9±0.4 1)%;粗多肽凍干品(23.93±0.74)g,得率為(36.81±0.47)%。得率與褶牡蠣干粉中總糖質(zhì)量分數(shù)及蛋白質(zhì)含量相近,判斷其可用于聯(lián)產(chǎn)制備褶牡蠣多糖及多肽制品。
另外,經(jīng)過8 kDa超濾膜超濾分離后,使用三氯乙酸沉淀法、苯酚-硫酸法、1,9-二甲基亞甲基藍法測定各濃縮凍干粉,其顏色反應證實8 kDa超濾膜分離效果良好,可用于褶牡蠣多糖多肽聯(lián)產(chǎn)工藝。
通過響應面法建立3 種影響因素酶添加量、酶解時間及料液比與4 個響應值多肽質(zhì)量分數(shù)、總糖質(zhì)量分數(shù)、水解度及酸性糖質(zhì)量分數(shù)相互作用的模型,得出褶牡蠣多糖多肽聯(lián)產(chǎn)的最優(yōu)工藝為勻漿褶牡蠣全臟器后,添加3 倍體積水,55 ℃水浴0.5 h,調(diào)節(jié)pH 8.0,添加質(zhì)量分數(shù)為0.2%的胰蛋白酶,酶解80 min,即可得到最大含量的褶牡蠣多糖與多肽。本研究具有高效、簡潔、生物友好性等特點,為褶牡蠣活性多糖和多肽的聯(lián)產(chǎn)制備提供了理論依據(jù),為企業(yè)創(chuàng)造更大的經(jīng)濟效益,實現(xiàn)褶牡蠣資源的綜合利用。