劉 磊 曾 彬 廖小婷
武漢大學人民醫院心內科 武漢大學心血管病研究所 心血管病湖北省重點實驗室,湖北武漢 430060
三碘甲腺原氨酸(T3)是甲狀腺分泌的主要活性物質之一,T3已經證明可以改善心肌收縮功能,保護受損后心功能[1-2]。PI3K/Akt 信號通路參與心肌缺血再灌注損傷,且激活這一通道能減少缺血再灌注損傷,保護心肌[3]。T3可以激活Akt 信號通路從而發揮心臟保護作用,但T3對心肌細胞電生理的影響研究很少。本研究建立缺氧/復氧(H/R)模型,并用膜片鉗全細胞技術觀察T3對乳小鼠心室肌細胞L-型鈣離子通道電流(ICaL)的作用,旨在探討T3對心臟鈣離子通道的影響,并且驗證PI3K/Akt 信號通路是否在其中發揮作用。
1.1.1 實驗動物 1~2 d 新生C57BL/6 小鼠20 只,雌雄不限,合格證號:SCXK(鄂)2015-0018,由湖北省實驗動物中心提供。
1.1.2 藥品和試劑 DMEM-F12 培養基(Hyclone 公司);胎牛血清(Gibico 公司);膠原酶Ⅱ、甲狀腺素T3、LY294002(Sigma 公司);胰酶(Beyontime 公司);兔抗鼠P-Akt、兔抗鼠P-PI3K(美國CST 公司);辣根過氧化物酶標記的羊抗兔二抗(美國ASPEN 公司);未注明者均為國產分析純。
1.1.3 溶液配制 記錄ICaL的細胞外液成分:氯化膽堿100 mmol/L,NaCl 35 mmol/L,KCl 5.4 mmol/L,MgCl21.0 mmol/L,CaCl21.8 mmol/L,NaH2PO40.33 mmol/L,HEPES 10 mmol/L,葡萄糖10 mmol/L,BaCl20.1 mmol/L,4-氨基吡啶3 mmol/L,NaOH 調整pH 值到7.35。記錄ICaL電極內液成分:CsCl2120 mmol/L,CaCl21.0 mmol/L,Na2ATP 5 mmol/L,MgCl25 mmol/L,EGTA 11 mmol/L,HEPES 10 mmol/L,CSOH 調整pH 值到7.2。
1.2.1 心肌細胞培養 參照之前的方法[4],取20 只1~2 d 小鼠,將心臟置于預冷PBS 液中清洗,留取心室并將心室肌組織剪碎,吸入含10 mL 的0.125%胰酶的離心管中4℃過夜。后用含0.035%膠原酶Ⅱ的消化液于37℃水浴振搖消化,待液體變混濁后停止消化,重復消化6~7 次直至消化完全。將收集的上清液1000 r/min 離心10 min,用含15%胎牛血清的完全培養液重懸細胞。接種于10 cm 培養皿中并置于培養箱(37℃、5%CO2)中差速貼壁1 h,將細胞懸液種于35 mm(1×106/mL)培養皿中培養。
1.2.2 心肌細胞H/R 模型的建立及實驗分組 細胞貼壁完全且搏動良好后,將培養液換為2 mL PBS 液,于缺氧培養箱(94%N2,5%CO2,1%O2,37℃)中培養4 h。隨后吸去PBS 液,更換為完全培養液并放入普通培養箱中培養24 h,即完成H/R 過程。本實驗分為五組:正常對照(Control)組、H/R 組、T3+H/R 組、T3+H/R+LY 組、H/R+LY 組。T3(20 ng/mL)在H/R 前24 h 加入培養液中;LY294002(LY)為PI3K/Akt 通路阻滯劑[5],在細胞H/R 前24 h 以10 μmol/L 加入培養液中。
1.2.3 ICaL的記錄 應用全細胞膜片鉗技術記錄細胞鈣離子通道電流,微電極充灌電極內液后電阻在5~7 MΩ。室溫下,將細胞放入細胞槽內,用電極外液以2~3 mL/min 的流速進行灌流。選用大小相近、細胞狀態良好的細胞進行實驗。待高阻封接形成后,負壓脈沖破膜,補償膜電容、串聯電阻及漏電流,形成全細胞記錄方式,平衡5 min,待電極內液與細胞內液交換充分后,進行膜電流記錄。膜電流的大小以電流密度,即pA/pF 表示。
1.2.4 Western blot 測定PI3K/Akt 通路的蛋白表達 在培養皿中加入裂解液進行蛋白提純,采用BCA 法進行蛋白定量,SDS-PAGE 電泳,轉膜,5%脫脂牛奶室溫封閉1 h,然后用兔抗鼠P-Akt、兔抗鼠P-PI3K 抗體4℃孵育過夜。次日用辣根過氧化物酶標記的羊抗兔二抗室溫孵育1 h,化學發光法(ECL)顯影。采用凝膠成像系統(美國UVP 公司)進行分析,以目的蛋白條帶灰度值與β-actin 條帶灰度值的比值反映P-Akt 和P-PI3K 的表達。
采用SPSS 22.0 軟件進行統計學分析。計量資料采用均數±標準差()表示,多組間比較采用單因素方差分析,進一步兩兩比較采用LSD-t 檢驗。以P <0.05 為差異有統計學意義。
形成全細胞構型后,在電壓鉗模式下記錄電流。鉗制電位固定于-40 mV,指令電壓從-50 mV 以10 mV為步階逐步階躍至+60 mV。各組電流-電壓(I-V)曲線形狀近似。與Control 組比較,H/R 組ICaL峰值電流減?。≒ <0.01),I-V 曲線上移;與H/R 組比較,T3+H/R 組ICaL峰值電流增大(P <0.01),T3能部分恢復H/R損傷引起的I-V 曲線上移,且T3+H/R 組I-V 曲線左移,峰值電位從+10 mV 減小至-10 mV;與H/R 組比較,H/R+LY 組ICaL峰值電流減小(P <0.01);與T3+H/R 組比較,T3+H/R+LY 組ICaL峰值電流減小(P <0.01)。見圖1。
采用雙脈沖實驗方法測定失活曲線,鉗制電壓-40 mV,將保持電位維持在-50 mV,從-50 mV 增加到60 mV(躍階10 mV),記錄內向峰電流,然后給測試電位0 mV,持續300 ms。以電流的相對值(I/Imax)對條件脈沖電壓作圖,得出ICaL穩態失活曲線(圖2a)。依Boltzman 方程I/Imax=1/[1+exp(V-V1/2)/K]進行擬合。式中Imax為最大膜電流,V1/2為半數失活電壓,K 為斜率參數。結果顯示,與Control 組比較,H/R 組V1/2減小[(-16.10±4.03)mV 比(-25.32±1.48)mV,P <0.05],失活曲線右移,失活減慢。與H/R 組比較,T3+H/R組[(-24.49±1.58)mV]的V1/2增大(P <0.05),失活曲線左移,失活加快。各組K 值差異無統計學意義(P >0.05)。
將ICaL的I-V 曲線的結果轉化為膜電導(G),對條件刺激電壓作圖,采用Boltzman 方程G/Gmax=1/[1+exp(V-V1/2)/K]進行擬合,得到ICaL穩態激活曲線(圖2b)。Gmax為最大膜電導,V1/2為半數激活電壓,K 為斜率參數。結果顯示,與Control 組比較,H/R 組V1/2升高[(-24.20±0.35)mV 比(-10.04±0.33)mV,P <0.05],激活曲線左移,激活加快;與H/R 組比較,T3+H/R 組[(-16.39±0.53)mV]的V1/2減?。≒<0.05),激活曲線右移,激活減慢。各組K 值差異無統計學意義(P>0.05)。

圖2 各組乳小鼠心室肌細胞L-鈣離子通道穩態失活曲線及穩態激活曲線
與Control 組比較,H/R 組心肌細胞P-PI3K 及P-Akt 表達減少(P <0.01);與H/R 組比較,T3+H/R組心肌細胞P-PI3K 及P-Akt 表達增加(P <0.01),H/R+LY 組心肌細胞P-PI3K 及P-Akt 表達減少(P <0.01);與T3+H/R 組比較,T3+H/R+LY 組心肌細胞P-PI3K及P-Akt 表達減少(P <0.01)。見圖3。

圖3 Western blot 檢測H/R 模型和T3對PI3K/Akt 信號通路表達的影響
鈣離子作為第二信使,在細胞病理和生理過程中起著重要作用,心肌細胞鈣離子的轉運調節心肌收縮與舒張。本實驗利用全細胞膜片鉗技術,證實H/R可顯著降低ICaL。很多文獻已經報道T3對心血管的保護作用[1-2],本實驗發現T3可以有效抑制H/R 誘導的鈣離子通道損傷,保護心肌細胞L-型鈣離子通道,且保護作用可通過激活PI3K/Akt 信號通路來實現。
急性心肌梗死后容易并發缺血再灌注損傷,后者可以誘發一系列病理過程,如線粒體膜電位的損傷,細胞內鈣超載,氧化應激產物的形成等,這些會誘導心律失常、微循環障礙的發生,甚至最終造成嚴重的心力衰竭[6-7]。有研究表明,胞漿鈣離子的釋放不僅通過心肌肌漿網Ca2+-ATP 酶2a(SERCA2a),也通過Na+-Ca2+交換[8-9]。缺血再灌注損傷可導致Na+-Ca2+交換增加有關并誘導細胞內鈣超載[6]。研究顯示,缺血再灌注損傷時心肌細胞動作電位時程縮短,導致心肌細胞動作電位的不均一性,誘發折返性心律失常[10]。本實驗利用膜片鉗技術記錄H/R 損傷后的細胞鈣離子,發現L-型鈣離子通道受到抑制,峰值電流較正常心肌細胞明顯下降,I-V 曲線上移,與之前的研究一致[10-12]。
甲狀腺激素可以調節心肌收縮蛋白及鈣處理蛋白的表達,調節心肌細胞離子通道及交感神經興奮系統在心血管系統中的表達[13]。既往有研究顯示,急性心肌梗死常伴隨著體內甲狀腺激素水平的改變[13-14],大量報道也證實,急性心肌梗死后運用低劑量T3可以促進心功能恢復并減輕心室重塑[1-2],T3可以激活Akt并保護心功能[15-18]。本實驗通過T3預處理證實T3可以減輕H/R 對ICaL的抑制,恢復部分上移的I-V 曲線,恢復左移的激活曲線,使激活減慢,恢復右移的失活曲線,使失活加快。PI3K/Akt 是細胞的重要信號通路,在調節細胞凋亡、細胞增殖、自噬、分化等方面均發揮重要作用[3,19],激活這一通道能保護心肌并減少缺血再灌注引起的損傷[3]。在本實驗中,H/R 損傷可減少PI3K/Akt 信號通路的激活,而T3預處理可顯著增加P-PI3K 和P-Akt 的表達。當加入PI3K/Akt 特異性通道阻滯劑后,T3對ICaL的作用被明顯抑制,證明T3通過激活PI3K/Akt 信號通路發揮作用。有研究顯示,Akt 的激活可以增加ICaL[20],本實驗通過抑制PI3K/Akt 信號通路發現T3對L-型鈣離子通道的作用可能是由PI3K/Akt 信號通路來發揮的。
綜上,H/R 損傷導致心肌細胞ICaL下降,T3可以保護L-型鈣離子通道,減少通道電流的下降,其可能是通過PI3K/Akt 信號通路來發揮作用的。