雜交黃顙魚與普通黃顙魚幼魚生長性能及耐低氧能力的比較

孫俊霄 韓廣坤 劉 婭 李明波 袁勇超 樊啟學 王銀海楊賀舒 莫愛杰

(1. 華中農業大學水產學院, 農業部淡水生物繁育重點實驗室, 湖北省水生動物病害防控工程技術研究中心, 武漢 430070;2. 潛江市水產技術推廣中心, 潛江 433100)

黃顙魚Pelteobagrus fulvidraco隸屬鲇形目(Siluriformes)、鲿科(Bagridae)、黃顙魚屬(Pelteobagrus), 俗名黃姑魚, 黃臘丁等, 廣泛分布于我國江河、湖泊、水庫等自然水域的底棲、小型、經濟魚類[1]。據2017年中國漁業統計年鑒報道, 黃顙魚養殖產量已從 2003 年的5.48×107kg增長至2016年的41.73×107kg, 已發展成為南至兩廣、北至遼寧、東起江浙、西至川陜以及中部各大省份的全國性養殖魚類。目前, 我國已經形成了以池塘集約化養殖黃顙魚的產業化生產模式, 隨著黃顙魚養殖產業規模的擴大, 對優質性狀、良種多元化的需求不斷增加。將生長速度作為選育目標, 以選育三代的普通黃顙魚為母本, 選育兩代的瓦式黃顙魚為父本雜交獲得的子一代, 即雜交黃顙魚“黃優1號”, 目前已經全國水產原種和良種審定委員會審定通過成為水產新品種。雜交黃顙魚為黃顙魚良種培育提供了新的選擇, 但有關雜交黃顙魚相比于其他黃顙魚品種的優缺點還少有報道。

在自然水體中, 水體低氧是一種常見且頻發的現象, 對魚體產生了很多不利影響甚至可能導致魚類的大量死亡[2]。水體溶氧水平直接關系著魚類的生存、生長和魚體代謝水平, 是影響魚類生命活動的重要指標。對于絕大多數養殖魚類而言, 當水中溶解氧含量低于2.0 mg/L, 魚會因缺氧表現出浮頭的癥狀; 當水中溶解氧含量低于1.0 mg/L, 魚會表現出嚴重浮頭的癥狀甚至缺氧死亡[3]。氣壓、溫度、鹽度、晝夜節律以及季節變化、水體富營養化、人類行為等都會對水體溶氧平衡造成影響[4]。魚類的低氧耐受能力是魚類抗逆性的重要指標, 也是評價水產養殖良種的重要指標。

本研究以相同養殖條件下的雜交黃顙魚“黃優1號”和普通黃顙魚幼魚為研究對象, 比較研究其生長性能和低氧脅迫條件下乳酸脫氫酶和抗氧化酶等活力的變化以及缺氧誘導基因(HIF-1α)的相對表達量變化, 評估雜交黃顙魚“黃優1號”幼魚的生長優勢以及低氧耐受能力, 為今后選育黃顙魚養殖新品種提供基礎資料和參考數據。

1 材料與方法

1.1 實驗魚

本研究的雜交黃顙魚“黃優1號”和普通黃顙魚苗種由湖北黃優源漁業發展有限公司魯湖基地提供。雜交黃顙魚和黃顙魚苗種均為同批次繁育, 挑選規格一致、健康無病的實驗魚進行實驗。在實驗開始前, 雜交黃顙魚“黃優1號”和普通黃顙魚經過為期2周的馴化暫養以適應實驗環境和飼料。

1.2 實驗設計與養殖管理

生長性能對比試驗生長性能對比實驗在華中農業大學校內基地的流水養殖系統中進行, 選取6個養殖水體體積為250 L的養殖缸進行了雜交黃顙魚和普通黃顙魚8周養殖生長對比實驗。初始規格分別為: (2.05±0.18) g和(1.95±0.24) g的雜交黃顙魚和普通黃顙魚魚苗各90 尾, 2種實驗魚分別各自隨機分成三組, 每組30 尾/缸。實驗期間均采用實驗室自制的黃顙魚配合飼料, 每天進行2次飽食投喂(上午8:00和下午19:00), 飼料的主要組成及營養成分見表 1。

低氧脅迫實驗低氧環境設計參考姜景騰等[5]的方法: 用1個體積為2000 L的儲水桶, 放于較高位置; 6個體積為250 L的實驗桶, 放于較低位置。用氮氣把水中的氧排出, 加液體石蠟封閉。選取(38.14±2.35) g 的雜交黃顙魚和(38.02±2.50) g普通黃顙魚進行低氧脅迫實驗。

選取3個實驗桶, 每個實驗桶隨機放30尾雜交黃顙魚, 再用另外3個實驗桶, 每個實驗桶隨機放30尾普通黃顙魚。通過預實驗發現當實驗魚在溶氧水平低于1.50 mg/L時實驗魚表現出明顯的缺氧癥狀(煩躁不安, 不時上游到水面), 所以以溶解水平1.50 mg/L作為實驗低氧標準。低氧脅迫過程中實驗桶內溶解氧含量為(1.48±0.27) mg/L (Winkler 碘量法), 每隔1h重新測定溶解氧含量, 根據需要調節水流速度維持溶氧水平不變。

表1 基礎飼料組成和營養水平Tab. 1 Composition and nutrient levels of the basal diet

1.3 測定指標與方法

生長指標測定雜交黃顙魚和普通黃顙魚養殖8周, 禁食24h后取出每個養殖缸中的所有實驗魚, 以MS-222溶液麻醉, 然后計數并稱重, 測量魚體體長, 計算肥滿度; 解剖得到肝臟和內臟稱重, 計算肝體比和臟體比。計算方法如下:

其中,W0和Wt分別為實驗魚的初始體重和終末體重(g);WL和WV分別為肝臟濕重和內臟濕重(g);t為實驗天數;N0和Nt分別為實驗開始和結束時養殖缸中實驗魚的尾數;Wf為攝食飼料干重(g);L為魚的體長(cm)。

血清和肝臟酶活性變化低氧脅迫0、6h、12h和24h后取雜交黃顙魚和普通黃顙魚的血清和肝臟。每個時間點取3尾魚, 以MS-222溶液麻醉,尾靜脈取血于EP管中混勻, 于4℃, 4000 r/min, 制備血清, -80℃冰箱保存。隨后在冰盤上解剖, 分離肝臟, 以體積1:9加預冷生理鹽水勻漿, 在4℃下3000 r/min離心10min, 取上清液, -20℃冰箱保存。血清和肝臟乳酸脫氫酶(LDH)活性、超氧化物歧化酶(SOD)活性、過氧化氫酶(CAT)活性、總抗氧化能力(T-AOC)測定采用南京建成生物工程研究所的試劑盒, 具體測定方法見試劑盒說明書。

腦和肝臟缺氧誘導基因(HIF-1α)mRNA 的相對表達量變化低氧脅迫0、6h、12h和24h后取雜交黃顙魚和普通黃顙魚的腦和肝臟。每個時間點取3尾魚, 以MS-222溶液麻醉, -80℃冰箱保存備用。PCR引物參考張慧[6]根據黃顙魚HIF-1α基因序列設計的引物HIF-f6與HIF-r6, 以及根據黃顙魚βactin基因序列設計的引物AF和AR, 引物序列見下表 2。

表2 引物序列Tab. 2 Primer sequence

1.4 數據分析

實驗結果數據用平均值±標準差(Mean±SD)來表示, 利用SPSS 18.0軟件進行單因素方差分析, 當差異顯著時再進行Tukey’s檢驗分析不同組別之間的差異, 顯著水平為P＜0.05。

2 結果

2.1 雜交黃顙魚和普通黃顙魚幼魚生長對比結果

雜交黃顙魚和普通黃顙魚幼魚生長實驗結果見表 3和表 4。結果表明: 經過8周的養殖, 雜交黃顙魚平均體重為 (19.60±0.88) g/尾, 顯著高于普通黃顙魚平均體重為 (15.74±0.42) g/尾(P＜0.05), 雜交黃顙魚幼魚較普通黃顙魚幼魚體重生長快24.52%;雜交黃顙魚幼魚存活率為 (87.78±1.92) %, 顯著高于普通黃顙魚幼魚存活率 (67.78±1.92) % (P＜0.05),雜交黃顙魚幼魚比普通黃顙魚幼魚存活率高29.51%;雜交黃顙魚的飼料系數為1.18±0.14, 普通黃顙魚飼料系數為1.36±0.21。雜交黃顙魚和普通黃顙魚肝體比、臟體比、肥滿度等形態學指標差異不顯著(P＞0.05)。

2.2 雜交黃顙魚和普通黃顙魚幼魚酶活力測定

在低氧脅迫下雜交黃顙魚和普通黃顙魚幼魚血清和肝臟乳酸脫氫酶(LDH)活性從圖 1、圖 2可以看出: 低氧脅迫0時, 雜交黃顙魚和普通黃顙魚血清和肝臟中LDH活性沒有顯著性差異(P＞0.05);低氧脅迫6h、12h和24h時, 雜交黃顙魚和普通黃顙魚血清、肝臟中LDH活性均顯著高與低氧脅迫0時LDH活性(P＜0.05); 低氧脅迫6h時, 雜交黃顙魚血清中LDH活性顯著低于普通黃顙魚血清中LDH活性(P＜0.05)。

在低氧脅迫下雜交黃顙魚和普通黃顙魚幼魚血清和肝臟超氧化物歧化酶(SOD)活性從圖 3、圖 4可以看出: 低氧脅迫0時, 雜交黃顙魚和普通黃顙魚血清和肝臟中SOD活性沒有顯著性差異(P＞0.05), 低氧脅迫后雜交黃顙魚和普通黃顙魚血清、肝臟中SOD活性呈現出先升高后降低的趨勢。在低氧脅迫6h時, 雜交黃顙魚和普通黃顙魚血清和肝臟中SOD活性顯著高于低氧脅迫0時SOD活性(P＜0.05), 雜交黃顙魚肝臟中SOD活性顯著高于普通黃顙魚肝臟中SOD活性(P＜0.05)。

表3 雜交黃顙魚和普通黃顙魚幼魚生長對比Tab. 3 Growth characteristics of P. fulvidraco and P. vachelii ♂ × P. fulvidraco ♀

表4 雜交黃顙魚和普通黃顙魚幼魚形態學指標Tab. 4 The morphological indicators of P. fulvidraco and P.vachelii ♂ ×P. fulvidraco ♀

圖1 雜交黃顙魚和黃顙魚幼魚肝臟乳酸脫氫酶活性Fig. 1 The effect of hypoxia on LDH activities in the liver of P.fulvidraco and P. vachelii ♂ ×P. fulvidraco ♀

圖2 雜交黃顙魚和黃顙魚幼魚血清乳酸脫氫酶活性Fig. 2 The effect of hypoxia on LDH activities in the serum of P.fulvidraco and P. vachelii ♂ ×P. fulvidraco ♀

在低氧脅迫下雜交黃顙魚和普通黃顙魚幼魚血清和肝臟過氧化氫酶(CAT)活性從圖 5、圖 6可以看出: 低氧脅迫0時, 雜交黃顙魚和普通黃顙魚血清和肝臟中CAT活性沒有顯著性差異(P＞0.05)。在低氧脅迫后, 雜交黃顙魚和普通黃顙魚肝臟中CAT活性呈現出先降低后升高的趨勢, 雜交黃顙魚和普通黃顙魚血清中CAT活性呈現逐漸上升趨勢。在低氧脅迫6h時, 雜交黃顙魚和普通黃顙魚肝臟中CAT活性顯著低于低氧脅迫0時 肝臟中CAT活性(P＜0.05), 雜交黃顙魚和普通黃顙魚血清中CAT活性顯著高于低氧脅迫0時血清中CAT活性(P＜0.05); 雜交黃顙魚肝臟中CAT活性顯著高于普通黃顙魚肝臟中CAT活性(P＜0.05); 雜交黃顙魚血清中CAT活性顯著高于普通黃顙魚血清中CAT活性(P＜0.05)。

圖3 雜交黃顙魚和黃顙魚幼魚肝臟 SOD 活性Fig. 3 The effect of hypoxia on SOD activities in the liver of P.fulvidraco and P. vachelii ♂ ×P. fulvidraco ♀

圖4 雜交黃顙魚和黃顙魚幼魚血清 SOD 活性Fig. 4 The effect of hypoxia on SOD activities in the serum of P.fulvidraco and P. vachelii×P. fulvidraco

圖5 雜交黃顙魚和普通黃顙魚幼魚肝臟 CAT 活性Fig. 5 The effect of hypoxia on CAT activities in the liver of P.fulvidraco and P. vachelii ♂ ×P. fulvidraco ♀

在低氧脅迫下雜交黃顙魚和普通黃顙魚幼魚血清和肝臟總抗氧化能力(T-AOC)活性變化從圖 7、圖 8可以看出: 低氧脅迫0時, 雜交黃顙魚和普通黃顙魚血清和肝臟中T-AOC活性沒有顯著性差異(P＞0.05), 在低氧脅迫后雜交黃顙魚和黃顙魚血清和肝臟中 T-AOC 活性均呈現先升高后降低趨勢。在低氧脅迫12h時, 雜交黃顙魚和黃顙魚血清和肝臟中 T-AOC 活性顯著高于低氧脅迫 0 時TAOC活性(P＜0.05); 雜交黃顙魚血清和肝臟中TAOC活性顯著高于普通黃顙魚 T-AOC 活性(P＜0.05)。

2.3 雜交黃顙魚和普通黃顙魚幼魚缺氧誘導因子(HIF-1α)mRNA相對表達量

從圖 9和圖 10可以看出: 低氧脅迫后雜交黃顙魚和普通黃顙魚腦和肝臟中HIF-1αmRNA 相對表達量逐漸升高; 低氧脅迫6h和12h雜交黃顙魚腦中HIF-1αmRNA相對表達量顯著高于普通黃顙魚腦中HIF-1αmRNA 相對表達量(P＜0.05); 低氧脅迫12h 雜交黃顙魚肝臟中HIF-1α mRNA相對表達量顯著高于普通黃顙魚肝臟中HIF-1αmRNA相對表達量(P＜0.05)。

圖6 雜交黃顙魚和普通黃顙魚幼魚血清 CAT 活性Fig. 6 The effect of hypoxia on CAT activities in the serum of P.fulvidraco and P. vachelii ♂ ×P. fulvidraco ♀

圖7 雜交黃顙魚和普通黃顙魚幼魚肝臟 T-AOC 活性Fig. 7 The effect of hypoxia on T-AOC activities in the liver of P. fulvidraco and P. vachelii ♂ ×P. fulvidraco ♀

圖8 雜交黃顙魚和普通黃顙魚幼魚血清 T-AOCFig. 8 The effect of hypoxia on T-AOC activities in the serum of P. fulvidraco and P. vachelii ♂ ×P. fulvidraco ♀

圖9 雜交黃顙魚和普通黃顙魚幼魚腦 HIF-1α mRNA 相對表達量Fig. 9 The effect of hypoxia on the brain HIF-1α mRNA P.fulvidraco and P. vachelii ♂ ×P. fulvidraco ♀

圖10 雜交黃顙魚和普通黃顙魚幼魚肝臟 HIF-1α mRNA 相對表達量Fig. 10 The effect of hypoxia on the liver HIF-1α mRNA level of P. fulvidraco and P. vachelii ♂ ×P. fulvidraco ♀

3 討論

3.1 雜交黃顙魚和普通黃顙魚幼魚生長性能比較

目前有關雜交黃顙魚雜交育種的研究, 主要是通過對瓦氏黃顙魚(Pelteobagrus vachelli)、黃顙魚(Pelteobagrus fulvidraco)、斑點叉尾鮰(Ietalurus punetaus)、烏蘇里擬鲿(Pseudobagrus ussuriensis)和粗唇(Leiocassis crassilabris)等魚類進行正、反交育種, 就體型特征和生長速度而言, 以黃顙魚為母本, 瓦氏黃顙魚為父本雜交得到的雜交黃顙魚是目前最優的雜交組合[7,8]。同時, 張佳佳等[9]通過對黃顙魚 ♀ ×瓦氏黃顙魚 ♂ 雙親以及雜交子代的營養成分進行對比得出: 雜交黃顙魚在營養方面不低于其親本, 甚至優于親本; 陳建明等[10]通過雜交黃顙魚、雄性瓦氏黃顙魚和黃顙魚的形體指數及肌肉營養組成比較分析發現黃顙魚 ♀ ×瓦氏黃顙魚 ♂ 雜交得到的雜交黃顙魚的體形和出肉率與雄性黃顙魚一致, 其肌肉為低脂高蛋白食品,營養價值接近黃顙魚。生長速度、成活率、飼料系數等被認為是評估水產良種的重要指標, 已有研究表明通過雜交育種獲得了生長速度更加優良的子代, 如尼羅羅非魚(Oreochromis niloticus)[11]、鯉(Cyprinus carpio)[12]、石斑魚(Epinephelusssp.)[13]等。本研究對雜交黃顙魚“黃優1號”和普通黃顙魚幼魚進行了生長對比試驗, 對比分析雜交黃顙魚“黃優1號”和普通黃顙魚幼魚的生長性能。在相同室內流水養殖條件和養殖密度下, 雜交黃顙魚幼魚較普通黃顙魚幼魚體重生長快24.52%, 存活率高29.51%, 這充分表明雜交黃顙魚具有優良的生長性能。對于雜交黃顙魚其他優良性狀以及與全雄黃顙魚生長性能對比將是本研究后續的研究方向。通過與普通黃顙魚生長對比充分表明: 雜交黃顙魚幼魚比普通黃顙魚幼魚具有更快的生長速度、更高的存活率以及更低的飼料系數。

3.2 雜交黃顙魚和普通黃顙魚幼魚耐低氧能力比較

黃顙魚屬于小型、底棲魚類, 目前有關黃顙魚耐低氧能力的研究主要是圍繞黃顙魚耗氧率[14,15]和窒息點[15]、在低氧脅迫條件下氧化應激反應[16,17]以及分子應對機制[6,17]等幾個方面。楊凱等[15]通過對不同規格黃顙魚的窒息點和瞬時耗氧率研究表明: 黃顙魚屬于低窒息點(0.33—0.60 mg/L)魚類, 窒息點隨體長的增加而逐漸降低; 呼吸類型為順應型, 瞬時耗氧率隨溶氧水平的下降而逐漸降低。張國松等[17]通過對瓦氏黃顙魚應對低氧脅迫的分子機制研究發現: 瓦氏黃顙魚為了應對急性低氧環境,在轉錄水平上通過miRNA-mRNA pairs調控一些重要的信號通路(如HIF-1 signaling pathway、Glycolysis/Gluconeogenesis、AMPK signaling pathway等)并導致包括促進血紅細胞增殖, 促進血管生成,抑制細胞凋亡; 有氧代謝和無氧代謝的轉換; 減少能量消耗和生物合成等一系列生物學過程。同時張國松等[17]對瓦氏黃顙魚氧化應激反應的研究結果表明: 瓦氏黃顙魚在同一溶氧水平條件下, 不同組織的耐低氧程度也不同, 導致不同組織在氧化應激下的酶活性和各個指標變化存在差異。

乳酸脫氫酶(LDH)存在于機體所有組織細胞的細胞質內, 是參與糖無氧酵解和糖異生的重要酶可以在缺氧條件下為魚體生命活動提供能量, 常被用來作為衡量無氧代謝能力的重要指標。在低氧脅迫后LDH活性上升且隨著時間延長LDH活性未出現明顯下降, 說明雜交黃顙魚和普通黃顙魚在低氧條件下均可通過無氧代謝為機體提供能量。乳酸脫氫酶主要存在于機體各組織器官中, 當機體各組織器官受損時, 可引起血液中LDH含量的改變[18]。在低氧脅迫前(0時)雜交黃顙魚和普通黃顙魚血清和肝臟中LDH活性沒有顯著性差異(P＞0.05); 在低氧脅迫后 6h 雜交黃顙魚血清中LDH活性顯著低于普通黃顙魚血清中LDH活性(P＜0.05), 說明相比與普通黃顙魚, 在低氧脅迫條件下雜交黃顙魚受到的損傷更小。通過雜交黃顙魚和普通黃顙魚血清和肝臟中LDH活性變化表明: 相比于普通黃顙魚, 雜交黃顙魚的低氧耐受能力要高于普通黃顙魚。

低氧環境會加速生物體內活性氧(ROS)的產生, 包括一些活性氧自由基和過氧化氫(H2O2)、二氧化氮等活性物質。活性氧會對生物造成氧化脅迫, 導致生物細胞膜流動性降低和通透性增加、蛋白質功能的喪失以及DNA的損傷和突變等, 因此生物能否快速有效地清除活性氧是其能否在低氧環境下生存的關鍵[19]。超氧化物歧化酶(SOD)和過氧化氫酶(CAT)是生物體中能夠對活性氧發揮作用的抗氧化酶, 廣泛分布于機體血液和各個組織器官中。SOD可以催化活性氧自由基超氧陰離子轉變成 H2O2, 是生物體中最先對活性氧自由基作出反應的抗氧化酶[20], 并且能夠對環境脅迫反應表現出明顯的活力變化[17]。總抗氧化能力(T-AOC)是生物體內抗氧化酶體系和抗氧化物體系抗氧化能力的總和, 是反映抗氧化能力的重要指標之一。有研究表明在不同溶氧水平條件下, 黃顙魚體內抗氧化酶活性會發生明顯變化[21]。本研究在低氧脅迫條件下, 雜交黃顙魚和普通黃顙魚血清和肝臟中SOD活性均呈現出先升高后降低的趨勢, 這一結果與姜景騰等[5]研究低氧脅迫對真鯛(♀)與黑鯛(♂)雜交子一代體內酶活力的影響中肝臟SOD活性變化趨勢以及強俊[22]、謝明媚等[23]研究低溫脅迫對尼羅羅非魚幼魚和銀鯧幼魚血清和肝臟中SOD活性變化趨勢相似。當低氧脅迫時雜交黃顙魚和普通黃顙魚機體產生更多的活性氧自由基對機體細胞和組織器官造成損傷促使機體SOD活性升高, 隨著脅迫時間的延長, 過量的活性氧自由基可能會超過機體自我調節閾值導致SOD活性降低。CAT能夠將SOD催化活性氧自由基超氧陰離子生成的H2O2分解成 H2O與O2使得 H2O2不至于與O2反應生成危害性更大的-OH。CAT與SOD接連發揮作用, 但本研究發現肝臟CAT的活性變化與SOD的活性變化趨勢相反, 這一結果與姜景騰等[5]研究低氧脅迫對真鯛(♀)與黑鯛(♂)雜交子一代體內酶活力的影響中肝臟CAT活性呈先下降后上升變化趨勢相同; 與王春琳等[24]在曼氏無針烏賊耗氧率及溶氧脅迫對其體內酶活力的影響研究中低氧脅迫后CAT活性呈先升后降趨勢相反。雜交黃顙魚和普通黃顙魚血清中CAT活性呈現上升趨勢, 肝臟中CAT活性先降低后升高, 這一結果與謝明媚等[23]研究急性溫度脅迫對銀鯧幼魚抗氧化和免疫指標的影響中高溫脅迫對肝臟造成損傷促使魚體細胞通透性增加因此肝臟 CAT 活性降低而血清CAT活性升高這一結果相似。因此, 在不同物種不同脅迫條件下肝臟CAT活性變化趨勢還有待研究。在低氧脅迫后, 雜交黃顙魚和黃顙魚血清和肝臟中SOD活性和TAOC較低氧脅迫前(0時)均會表現出明顯上升, 而隨著脅迫時間的延長, 抗氧化酶活性降低, 這一結果表明: 在低氧脅迫條件下, 雜交黃顙魚和普通黃顙魚短時間均可以通過改變血清和肝臟中抗氧化酶活性來適應低氧環境, 但隨著脅迫時間的延長超過自身調節閾值仍會對魚體造成氧化損傷。在低氧脅迫后, 肝臟中CAT活性下降有學者認為是低氧脅迫條件下活性氧的大量產生直接抑制了CAT活性[25]。在低氧脅迫后, 雜交黃顙魚血清和肝臟中LDH活性、SOD活性、CAT活性和 T-AOC變化幅度大于普通黃顙魚血清和肝臟中LDH活性、SOD活性、CAT活性和T-AOC變化幅度, 表明在低氧脅迫條件下, 相比于普通黃顙魚, 雜交黃顙魚抗氧化能力更高。

缺氧誘導基因(HIF-1)是細胞缺氧應答反應的全局性調控因子, 廣泛存在于各種高低等動物體內[26], 被喻為哺乳動物在轉錄水平上應答低氧的總開關[27]。HIF-1由HIF-1α和HIF-1β兩部分構成, 在細胞核內聚合生成具有生物活性的HIF-1。HIF-1α是HIF-1獨有亞基, 也是功能單位。細胞內HIF-1αmRNA持續表達, 在常氧條件下HIF-1α生成后會迅速分解, 在細胞內水平很低, 當細胞內氧分壓變化時HIF-1α降解途徑被破壞在細胞內會迅速積累[28];HIF-1β是HIF-1的結構單位且HIF-1βmRNA和蛋白水平均不受氧分壓影響[6]。張慧[6]通過對黃顙魚HIF-1α基因克隆和表達分析發現, 常氧條件下HIF-1αmRNA在肝臟、腎臟、腮中均有表達而在低氧誘導后表達量均顯著升高。本研究通過低氧脅迫后0、6h、12h 和 24h雜交黃顙魚和普通黃顙魚缺氧誘導基因(HIF-1α)的相對表達量變化發現雜交黃顙魚和普通黃顙魚腦和肝臟中HIF-1α的相對表達量均在低氧脅迫后出現顯著性上升(P＜0.05)且在低氧脅迫6h和12h雜交黃顙魚缺氧誘導基因(HIF-1α)的相對表達量均高于普通黃顙魚。

綜合研究結論表明: 在相同養殖條件下, 雜交黃顙魚幼魚比普通黃顙魚幼魚具有更快的生長速度、更高的存活率以及更低的餌料系數。通過對雜交黃顙魚幼魚和普通黃顙魚幼魚低氧脅迫條件下無氧代謝能力、抗氧化能力以及缺氧誘導基因相對表達量三方面分析, 表明表明雜交黃顙魚“黃優1號”幼魚比普通黃顙魚幼魚具有更好的低氧耐受能力。