滁菊的功能成分及其體外抗氧化活性

賈雨朦，陳芹芹，畢金峰，呂 瑩，喬葉寧，張佰清

（1.沈陽農業大學食品學院，遼寧 沈陽 110866；2.中國農業科學院農產品加工研究所，農業農村部農產品加工綜合性重點實驗室，北京 100193）

菊花為菊科植物菊花（Chrysanthemum morifolium Ramat）的干燥頭狀花序，具有疏風、清熱、明目、解毒的功效，在我國種植廣泛，有3 000 年的栽種歷史[1]。按產地可將菊花分為“杭菊”、“貢菊”、“懷菊”、“滁菊”、“毫菊”等品種[2]。其中，滁菊產于安徽滁州地區，為當地特色植物資源，又名“甘菊”、“白菊”等，是中國“四大名菊”之一，其性微寒，具有平肝、明目及疏風散熱等功效，為我國衛生部批準的藥食同源植物[3]。

在多種菊花品種中，滁菊效用較優。《中藥志》所述“主產于安徽滁縣，品質最佳”；《現代實用中藥》同樣評價“滁州產者菊花味最清涼，不苦不甜，白菊中以此為最良，且不濕不燥，故處方中常以滁菊代替其他菊花，而其他菊花不能代替滁菊”[4]。同時，現代研究也表明，滁菊含有酚酸類、黃酮類、萜類和多糖[5]等物質，具有抗氧化、抗衰老[6]、預防高血糖、改善缺血心肌的血液供應[5]、抗腫瘤等作用[6]。

氧化過程對許多生物體是來說必不可少的，氧化反應可以產生代謝所需的能量，然而，氧自由基的過度產生會誘發諸多疾病，例如癌癥、類風濕性關節炎、心血管疾病、糖尿病以及與衰老相關的退行性過程[7]。過去20 年來，有很多關于活性氧及自由基在細胞損傷和與衰老過程相關的疾病中起重要作用的報道[8]。研究證明，含有抗氧化活性物質（如酚類、維生素、類胡蘿卜素和黃酮類）的食物可以幫助人體減少氧化損傷[9]。近年來，具有抗氧化能力的食物作為可以保護人體健康的天然抗氧化劑，受到大眾越來越多的關注，因此對食物含有的抗氧化活性物質及抗氧化能力進行檢測和鑒定具有重要意義。

目前對于滁菊的研究主要集中在產品加工[10]、成分提取和鑒定[11]及種質特征分析[12]上，對滁菊的功能性成分及其效用的研究較少，特別是對類胡蘿卜素類物質。Kishimoto等[13]對菊花中類胡蘿卜素的含量和種類進行了鑒定，Ullas等[14]對部分菊花品種的類胡蘿卜素類物質及其抗氧化能力進行了分析測定，但目前對于滁菊中類胡蘿卜素類物質的種類及功能尚鮮見報道。本研究對滁菊中類胡蘿卜素的含量、單體組成及其抗氧化能力進行分析，并對滁菊中含有的其他具有抗氧化能力的物質如多糖、多酚、黃酮等生物活性物質的含量、單體組成和對1,1-二苯基-2-三硝基苯肼（1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl，DPPH）和2,2'-聯氮雙(3-乙基苯并噻唑啉-6-磺酸)（2,2'-azino-bis(3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid)，ABTS）陽離子自由基的清除能力、對Fe3+的還原能力進行測定和比較，以期明確滁菊中各抗氧化物質單體在不考慮協同作用情況下對其總抗氧化能力的貢獻，為今后對滁菊抗氧化功能的進一步研究及其作為天然抗氧化劑的進一步開發利用提供科學依據。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

滁菊 安徽滁州全椒縣臥龍湖有機農業園。

蘆丁標準品、沒食子酸標準品、β-胡蘿卜素標準品、綠原酸標準品 上海源葉生物科技有限公司；葡萄糖標準品、亞硝酸鈉、無水碳酸鈉、氯化鈉、硫酸、苯酚、丙酮、無水乙醇 國藥集團化學試劑有限公司；DPPH、ABTS、2,4,6-三吡啶基均三嗪、水溶性VE（Trolox）、α-胡蘿卜素標準品、葉黃素標準品、隱黃素標準品、福林-酚試劑、九水合硝酸鋁 美國西格瑪奧德里奇貿易有限公司；氫氧化鈉 上海阿拉丁生化科技股份有限公司；甲醇、正己烷、甲基叔丁基醚（色譜級） 美國賽默飛世爾科技公司。

1.2 儀器與設備

離心機 艾本德中國有限公司；RE52AA旋轉蒸發器 上海亞榮生化儀器廠；DK-S26電熱恒溫水浴鍋、DHG-9023A鼓風干燥箱 上海精宏實驗設備有限公司；UV1800紫外分光光度計 日本島津公司；1525高效液相色譜（high performance liquid chromatography，HPLC）儀 美國Waters公司。

1.3 方法

1.3.1 滁菊樣品的制備

將滁菊置于粉碎機中22 000 r/min粉碎1 min，粉碎后將滁菊粉放置于自封袋中，密閉封口，常溫下放置在干燥器中保存。經測定粉碎后滁菊粉濕基水分質量分數為11.03%。

1.3.2 滁菊酚類提取液的制備

采用Istrati等[15]的方法提取酚類物質，稍作修改。精確稱取粉碎后的滁菊樣品2.00 g于具塞試管中，加入10.0 mL 80%（體積分數，下同）甲醇溶液，超聲提取30 min（40 kHz、25 ℃），經10 000 r/min離心10 min后取上清液，重復3 次，合并上清液，于-20 ℃下保存備用，用于總酚、黃酮含量及酚類物質抗氧化能力測定。

1.3.3 抗氧化能力的測定

1.3.3.1 DPPH自由基清除能力測定

參照Wang Yongtao等[16]的方法并略作修改。取2.0 mL不同濃度的Trolox溶液（0、20、30、40、60、80、100 μmol/L，80%甲醇溶解）于10 mL試管中，加入4.0 mL 0.1 mol/L DPPH溶液（80%甲醇溶解），避光靜置30 min，于517 nm波長處測定吸光度。以Trolox濃度為橫坐標，吸光度為縱坐標繪制標準曲線，曲線方程為y＝0.007 4x+0.641 3，R2＝0.998 9。取0.05 mL提取液，用80%甲醇稀釋至2 mL，按上述步驟操作并測定吸光度，代入標準曲線方程，結果以每克干物質中Trolox的物質的量表示。

1.3.3.2 Fe3+還原能力的測定

參照Tabart等[17]的方法并略作修改。取0.20 mL不同濃度的Trolox溶液（0、100、200、300、400、500、600、700、800 μmol/L，80%甲醇溶解）于10 mL試管中，加入6.0 mL Fe3+還原能力試劑，混勻，37 ℃水浴30 min，冷卻至常溫后于593 nm波長處測定吸光度。以Trolox濃度為橫坐標，吸光度為縱坐標繪制標準曲線，曲線方程為y＝0.001 3x-0.094 2，R2＝0.999 1。取0.10 mL提取液，用80%甲醇稀釋至0.20 mL，按上述步驟操作并測定吸光度，代入標準曲線方程，結果以每克干物質中Trolox的物質的量表示。

1.3.3.3 ABTS陽離子自由基清除能力

參照Jeong等[18]的方法并略作修改。將7.0 mmol/L ABTS溶液加入2.45 mmol/L過硫酸鉀溶液中（體積比1∶1），避光靜置12～14 h（室溫）后，用80%甲醇將溶液稀釋至734 nm波長處吸光度為0.700±0.020。取0.40 mL不同濃度的Trolox溶液（0、25、50、75、100、125、150 μmol/L，80%甲醇溶解）于10 mL試管中，加入3.6 mL ABTS溶液，混勻，靜置1 min（室溫），于734 nm波長處測定吸光度。以Trolox濃度為橫坐標，吸光度為縱坐標繪制標準曲線，曲線方程為y＝-0.003 0x+0.612 4，R2＝0.999 1。吸取0.10 mL提取液，用80%甲醇稀釋至0.40 mL，按上述步驟操作并測定吸光度，代入標準曲線方程，結果以每克干物質中Trolox的物質的量表示。

1.3.3.4 滁菊不同提取物中單一成分對總抗氧化能力貢獻的計算

按照式（1）計算不同提取物中單一成分對滁菊總抗氧化能力的貢獻[19]。

式中：w為某提取物抗氧化能力貢獻；Ux為某單體抗氧化能力/（μmol/g）；Cy為某單體含量/（μg/g）；Uy為某提取物總抗氧化能力/（μmol/g）。

1.3.4 總酚含量測定

采用福林-酚比色法[20]進行總酚含量測定，使用沒食子酸作為標準品，以80%甲醇為空白，繪制標準曲線，曲線方程為y＝0.093 5x+0.014 2，R2＝0.997。取0.2 mL提取液，用80%甲醇定容至2.0 mL，加1.0 mL質量分數10%福林-酚顯色劑，充分搖勻，6 min之后加入2.0 mL 7.5 g/L Na2O3溶液，混勻定容至10.0 mL，75 ℃放置10 min，冷卻至常溫后于765 nm波長處測定其吸光度。總酚含量以每克干物質中沒食子酸的質量表示。

1.3.5 黃酮含量的測定

根據Sun Lijun等[21]的方法測定黃酮含量，并稍作修改。以蘆丁作為標準品，結果以每克干物質中蘆丁的質量表示。準確稱取蘆丁標準品5.00 mg于25 mL容量瓶中，80%甲醇溶解定容，得到質量濃度為0.20 mg/mL的標準品溶液。精確移取蘆丁標準品溶液0、0.5、1.0、1.5、2.0、2.5、3.0、3.5、4.0 mL于15 mL比色管中，加80%甲醇定容至4.0 mL，再加入質量分數5%亞硝酸鈉0.5 mL，搖勻，放置6 min；加質量分數10%硝酸鋁0.5 mL，搖勻，放置6 min；加質量分數4%氫氧化鈉4.0 mL，定容至10.0 mL，搖勻，放置15 min，以不加樣品組為空白。于510 nm波長處測定吸光度，并以蘆丁的質量濃度為橫坐標，吸光度為縱坐標繪制標準曲線，曲線方程為y＝0.013 2x+0.031 3，R2＝0.999。取0.2 mL提取液，按上述步驟操作并測定吸光度，代入標準曲線計算黃酮含量。

1.3.6 總類胡蘿卜素含量的測定

根據Knockaert[22]的方法測定總類胡蘿卜素含量。取2.00 g滁菊粉加40.0 mL混合液（含質量分數50%正己烷、25%丙酮、25%乙醇、0.1% 2,6-二叔丁基-4-甲基苯酚（2,6-di-tert-butyl-4-methylphenol，BHT）、0.5 g NaCl），常溫下攪拌30 min，之后加入15.0 mL蒸餾水，常溫下攪拌10 min，攪拌結束將混合物倒入分液漏斗，振蕩3 次，靜置，待液體分為清晰的兩層后收集上層有機相。空白組為加入BHT（0.10 g/100 mL）并充分溶解后的正己烷，450 nm波長處測定吸光度，按照公式（2）計算滁菊總類胡蘿卜素含量。

式中：A為滁菊在450 nm波長處的吸光度；m為稱取的原料質量/g；V為收集的有機相體積/mL；為β-胡蘿卜素在正己烷中的摩爾消光系數（2 560 L/（mol·cm））。

1.3.7 多糖含量的測定

采用Zhao Qingsheng[23]和Wang[24]等的方法進行多糖提取，并稍作修改。精確稱取粉碎后的滁菊樣品2.00 g，加30.0 mL蒸餾水，置于90 ℃的恒溫水浴鍋中水浴1 h，水浴結束后超聲提取1 h（40 kHz、25 ℃）。抽濾取濾液，旋轉蒸發濃縮至10.0 mL，加無水乙醇至溶液乙醇體積分數為80%，4 ℃下醇沉24 h，醇沉結束后抽濾取沉淀，合并沉淀加蒸餾水溶解并定容至100.0 mL。

吸取葡萄糖標準品0.2、0.4、0.6、0.8、1.0、1.2 mL于15 mL試管中，加水至2.0 mL，加入1.0 mL質量分數5%苯酚溶液，混合均勻，迅速加入5.0 mL質量分數95%硫酸溶液，搖勻，室溫放置10 min后沸水浴15 min，取出后迅速冷卻至室溫，以蒸餾水代替葡萄糖溶液作為空白。以葡萄糖質量濃度為橫坐標，吸光度為縱坐標繪制標準曲線，曲線方程為y＝0.060 8x+0.001 1，R2＝0.999。取多糖提取液1.0 mL，蒸餾水稀釋至2.0 mL，按上述步驟操作并測定吸光度，代入標準曲線方程，滁菊多糖含量以葡萄糖計。

1.3.8 抗氧化成分單體組成的測定

1.3.8.1 單體酚組成的測定

稱取2.00 g滁菊粉于帶蓋離心管中，加入10 mL 80%甲醇，室溫避光超聲提取30 min（40 kHz、25 ℃），經10 000 r/min離心10 min后，取上清液，重復3 次，合并上清液，于旋轉蒸發儀30 ℃下蒸至近干，用甲醇（色譜級）溶解殘渣并定容至10.0 mL，測定前過0.45 μm濾膜。

選用C18色譜柱（250 mm×4.6 mm，5 μm），流動相A為體積分數2%乙酸溶液，流動相B為甲醇，梯度洗脫[25]，流速1 mL/min，柱溫40 ℃，進樣量10 μL，檢測波長280 nm。洗脫程序為：0～20 min，95%～75% A；20～35 min，75%～60% A；35～40 min，60% A；40～45 min，60%～5% A；45～50 min，5% A；50～52 min，5%～95% A；52～55 min，95% A。

1.3.8.2 類胡蘿卜素單體組成的測定

類胡蘿卜素的提取同1.3.5節方法，測定前過0.45 μm有機濾膜。采用HPLC法測定類胡蘿卜素單體組成，選用反相C30色譜柱（250 mm×4.6 mm，5 μm）[26]，流動相A為V（甲醇）∶V（甲基叔丁基醚）∶V（水）＝81∶15∶4，流動相B為V（甲醇）∶V（甲基叔丁基醚）：V（水）＝6∶90∶4，采用100%～44% A、45 min洗脫程序進行梯度洗脫，流速1 mL/min，柱溫30 ℃，進樣量10 μL，檢測波長450 nm。

1.4 數據統計與分析

實驗均進行3 次平行，采用Excel 2013軟件處理數據，顯著性分析采用Duncan's多范圍檢驗方法，P＜0.05表示差異顯著；采用Origin 9.0軟件作圖。

2 結果與分析

2.1 滁菊總酚、黃酮、多糖及類胡蘿卜素含量

滁菊的總酚含量為53.67 mg/g，是藍莓全果的5～11 倍[27]，黑莓全果的5.5 倍[28]；黃酮含量為70.32 mg/g，比黃菊高24%，比大洋菊高66%～79%[29]，是藍莓的1.9 倍、黑莓的5.9 倍[28]；多糖含量為7.68 mg/g，為棗的1/10[30]；類胡蘿卜素含量為112.36 μg/g，為枸杞的1/12[31]。由此可知，滁菊的酚類物質含量較多，且高于普遍被認為酚類含量較高的藍莓、黑莓等小漿果食物，黃酮含量也遠高于其他品種菊花，多糖含量和類胡蘿卜素含量相比于這兩種物質含量較高的棗和枸杞并不突出。

2.2 滁菊酚類、多糖及類胡蘿卜素的抗氧化能力分析

圖1 滁菊各提取物抗氧化能力Fig. 1 Antioxidant activities of various extracts of chrysanthemum flowers from Chuzhou

由圖1可知，滁菊酚類提取物對DPPH自由基的清除能力為208.79 μmol/g，比黃山貢菊、胎菊、洋金菊等其他幾種菊花高25%～68%[2]；對ABTS陽離子自由基的清除能力為160.23 μmol/g，是藍莓的1.4 倍[28]；Fe3+還原能力為238.35 μmol/g，高于杭白菊、黃金貢菊和胎菊[2]。滁菊多糖提取物對DPPH自由基和ABTS陽離子自由基的清除能力分別為2.39 μmol/g和3.55 μmol/g，Fe3+還原能力為3.58 μmol/g；滁菊類胡蘿卜素提取物對DPPH自由基的清除能力為9.77 μmol/g，均遠低于酚類提取物。由此可知，滁菊的抗氧化能力要高于普遍被認為抗氧化能力較強的小漿果食物，且滁菊的抗氧化能力要高于其他品種菊花，說明滁菊為菊花中的優質品種，是一種優質的天然抗氧化劑。

從對滁菊酚類、多糖和類胡蘿卜素提取物抗氧化能力之間的比較可以發現，其酚類物質的抗氧化能力遠高于多糖和類胡蘿卜素類物質。根據熊磊等[32]的研究可知，滁菊多糖在0.2～1.0 mg/mL的高質量濃度下具有較好的抗氧化活性，其質量濃度為1.0 mg/mL時對自由基的清除率高于0.2 mg/mL抗壞血酸；根據張成孜[33]的研究結果可知，滁菊多糖能夠提高血清和肝臟中超氧化物歧化酶、谷胱甘肽過氧化物酶活性，并降低丙二醛含量，說明滁菊能提高機體抗氧化能力，并抑制脂質過氧化反應。本研究中滁菊多糖抗氧化能力較低，可能是因為其質量濃度較低（0.07 mg/mL），導致其清除自由基能力較差；也可能是因為滁菊多糖的抗氧化活性更多體現在對超氧化物歧化酶等的作用，而不是自由基的清除能力。

類胡蘿卜素類提取物對于DPPH自由基的清除能力雖然比多糖提取物高，但也遠低于酚類提取物，這可能是因為滁菊中類胡蘿卜素含量較低，且類胡蘿卜素在結合狀態沒有抗氧化能力[31]。由以上結果可推斷，滁菊的抗氧化能力可能更多地歸因于其所含有的酚類物質。

2.3 滁菊酚類及類胡蘿卜素單體組分的鑒定結果

2.3.1 滁菊酚類物質單體組分及含量分析

圖2 酚類標準品HPLC圖譜Fig. 2 HPLC chromatogram of mixed phenol standards

去除溶劑峰后單體酚標準品HPLC測定結果如圖2所示。對單體酚標準品進行測定，可得出15 種標準品保留時間及其峰面積的關系，以標準品峰面積為橫坐標，標準品含量為縱坐標繪制出標準曲線，曲線方程的R2均大于0.97。

圖3 滁菊酚類提取液HPLC圖譜Fig. 3 HPLC chromatogram of phenolic extract of chrysanthemum flowers from Chuzhou

由圖3可見，與標準品圖譜相比較，同等測定條件下可鑒定出滁菊含有兒茶素、綠原酸、咖啡酸、阿魏酸、金絲桃苷和槲皮素6 種酚類。謝越等[34]利用HPLC法同樣在滁菊中檢測出了阿魏酸、槲皮素等酚類物質；舒俊生等[35]在95%乙醇提取的滁菊提取液中檢測出了綠原酸、咖啡酸、槲皮素等酚類物質，與本實驗結果具有一致性。由圖4可知，6 種酚類物質中，綠原酸、金絲桃苷含量較高，分別達到了813.21 μg/g和408.17 μg/g，咖啡酸、阿魏酸和槲皮素含量較低，僅分別有32.39、45.76、56.49 μg/g。

圖4 滁菊單體酚物質含量Fig. 4 Contents of monophenols in chrysanthemum flowers from Chuzhou

2.3.2 滁菊類胡蘿卜素單體組分及含量分析

圖5 類胡蘿卜素標準品HPLC圖譜Fig. 5 HPLC chromatogram of mixed carotenoid standards

圖6 滁菊類胡蘿卜素提取物HPLC圖譜Fig. 6 HPLC chromatogram of carotenoid extract of chrysanthemum flowers from Chuzhou

對類胡蘿卜素單體標準品進行測定后可得峰面積與標準品濃度的標準曲線，曲線方程的R2均大于0.97。圖5為類胡蘿卜素標準品在450 nm波長處的HPLC圖。圖6為滁菊類胡蘿卜素提取物在450 nm波長處的HPLC圖，與標準品圖譜相比較，可以確定滁菊含有的類胡蘿卜素單體為葉黃素和β-類胡蘿卜素。從圖7可知，這3 種類胡蘿卜素單體中，葉黃素含量較高，達到了78.6 μg/g；β-類胡蘿卜素含量較低，為6.4 μg/g，說明葉黃素是滁菊含有的主要類胡蘿卜素單體。

圖7 滁菊類胡蘿卜素單體物質含量Fig. 7 Types and contents of carotenoid monomers in chrysanthemum flowers from Chuzhou

2.4 單體抗氧化能力及其對總抗氧化能力的貢獻

由2.1節分析可知，在滁菊中具有抗氧化能力的物質中，酚類的抗氧化能力最強，總類胡蘿卜素次之，但具體哪種酚類單體、類胡蘿卜素單體在不考慮協同作用的情況下對酚類及總類胡蘿卜素抗氧化能力的貢獻最大尚不得而知，故用各單體標準品進行抗氧化能力測定。鑒于各成分之間的協同作用機理較為復雜[36]，抗氧化能力貢獻的計算僅考慮各單體單獨作用情況。

2.4.1 單體酚抗氧化能力及貢獻

表1 滁菊單體酚抗氧化能力Table 1 Antioxidant activities of monophenols in chrysanthemum flowers from Chuzhou μmol/mg

由表1可知，不同單體酚的抗氧化能力之間差異較大，槲皮素的抗氧化能力最強，兒茶素次之，這說明并不是所有酚類都具有較強的抗氧化活性，部分酚類物質的抗氧化活性較弱，這可能是因為各單體酚在結構上有所差異[37]，同時酚類的抗氧化能力和羥基數目也有很大關系。但在抗氧化能力貢獻方面（表2），綠原酸的抗氧化能力貢獻最大，咖啡酸、阿魏酸較小，這可能是因為綠原酸在滁菊中含量較高且抗氧化能力較強，咖啡酸和阿魏酸雖有較強抗氧化能力，但含量低，故對酚類總抗氧化能力貢獻也較低，所以各單體酚的抗氧化能力貢獻在不考慮協同作用情況下既與其含量有關，也與其抗氧化能力有關。

表2 滁菊單體酚抗氧化能力貢獻Table 2 Contribution rates of monophenols in chrysanthemum flowers from Chuzhou to antioxidant capacity%

由表2可知，各單體酚抗氧化能力貢獻總和小于100%，可能是因為提取過程中酚類物質有損失，且使用的提取物雖然主要成分為酚類，但仍有氨基酸和蛋白質等物質存在；也可能因為該測定方法不能測定滁菊含有的全部酚類物質，如舒俊生等[35]在滁菊中發現了芹黃素及其糖苷類物質；同時，不同的酚類物質在共存的情況下可能存在協同作用[38]，所以該結果也可能是因為酚類的抗氧化能力主要歸因于其各單體酚之間的協同作用，這還需進一步研究。

2.4.2 類胡蘿卜素單體抗氧化能力及貢獻

表3 滁菊類胡蘿卜素單體抗氧化能力及貢獻Table 3 Antioxidant capacity and contribution rates of monomeric carotenoids in chrysanthemum flowers from Chuzhou

由表3可知，葉黃素的DPPH自由基清除能力最高，達到4.84 μmol/mg，其抗氧化能力貢獻最高；β-類胡蘿卜素的DPPH自由基清除能力較低，且其含量遠低于葉黃素，故其抗氧化能力貢獻僅為0.23%，遠低于葉黃素的3.89%。與單體酚相同，在僅考慮單體單獨作用的情況下，類胡蘿卜素單體的抗氧化能力貢獻之和小于100%，這可能是因為類胡蘿卜素單體之間[39]、類胡蘿卜素與其他成分之間[36]存在協同作用，這還需要進一步的研究。

3 結 論

本實驗對滁菊含有的各類具有抗氧化活性的物質進行了測定和分析，結果表明，滁菊的多酚、黃酮類物質含量分別為53.67 mg/g和70.32 mg/g，高于其他品種菊花和小漿果食物，但多糖和類胡蘿卜素類物質的含量較低。滁菊的酚類物質抗氧化能力最高，遠高于類胡蘿卜素和多糖物質，且高于杭白菊等多種菊花。通過HPLC法對滁菊的酚單體組分進行測定，可確定滁菊含有兒茶素、綠原酸、咖啡酸、阿魏酸、金絲桃苷、槲皮素6 種酚類物質，其中綠原酸含量最高。在不考慮協同作用的情況下，綠原酸對酚類Fe3+還原能力、DPPH自由基及ABTS陽離子自由基清除能力的貢獻最大，金絲桃苷次之。對滁菊的類胡蘿卜素單體進行分析，發現其含有葉黃素和β-類胡蘿卜素2 種類胡蘿卜素單體，其中葉黃素含量最高，在僅考慮單獨作用情況下其對DPPH自由基的清除能力貢獻最大。實驗結果表明，滁菊是一類具有良好抗氧化能力的天然抗氧化劑，但目前市面上滁菊產品較少，加工較為簡陋，使珍貴的資源未能完全開發利用，造成較大的浪費。作為一種藥食同源食物，滁菊可以被加工為功能飲料、果蔬復合粉配料，或者作為粥產品、面制品和乳制品等的添加劑，也可以直接作為酚類和類胡蘿卜素類等具有抗氧化能力物質的提取原料以制備抗氧化保健品，具有廣闊的開發利用空間和巨大的市場潛力。對其進行充分利用不僅可以減少資源浪費，還可以豐富市場中菊花產品的種類，提高農民的經濟收益。