連 輝, 周 立, 張毅敏, 宋海巖, 王志勇△
(新鄉醫學院 1人體解剖學教研室, 2人體解剖學實驗室, 3新鄉市分子神經病學重點實驗室, 河南 新鄉 453003)
體重減輕是帕金森(Parkinson disease,PD)患者常見的非運動癥狀之一[1],它嚴重影響PD患者的生活質量,并增加患者的死亡率[2]。研究表明,脂肪含量的減少和重新分布是PD病人體重下降的重要因素[3-4]。腹膜后白色脂肪組織(retroperitoneal white adipose tissue,rWAT)是體內白色脂肪組織的一種,主要功能是把多余的能量以甘油三酯的形式儲存起來,以供機體在需要的時候使用[5]。脂肪分解和合成是2個作用相反的過程,兩者之間的動態平衡是體內脂肪含量穩定的重要因素。作為脂肪合成和分解過程中的關鍵酶,脂肪酸合成酶(fatty acid synthase,FAS)和磷酸化激素敏感性脂肪酶(phosphory-lated hormone-sensitive lipase,p-HSL)的變化可能會影響體內脂肪含量,從而引起體重改變。本實驗利用6-羥基多巴胺(6-hydroxydopamine,6-OHDA)損傷大鼠雙側黑質(substantia nigra,SN)建立PD模型,并對模型大鼠的體重、rWAT重量/大鼠體重比、rWAT中脂肪細胞直徑以及FAS和p-HSL蛋白水平變化進行檢測,期望為PD患者體重減輕的發生機制提供依據。
本研究共使用健康雄性SD大鼠23只大鼠,體重210~240 g,由北京維通利華實驗動物技術有限公司提供,編號為11400700256933。將大鼠隨機分為對照組10只,全部成活,納入統計的n=10;PD模型組13只,其中1只死亡,2只根據病理學和行為學檢驗模型制備不成功,沒有納入統計,最終納入統計的n=10只。所有手術均在10%水合氯醛(ip, 0.4 g/kg)麻醉下進行。所有動物在12 h∶12 h光循環中自由飲食飲水,環境溫度保持在26 ℃左右。
2.1PD模型大鼠的制備 將麻醉好的大鼠固定在腦立體定位儀上,頭頂備皮,暴露顱骨并雙側打孔(前囟尾側5.6 mm, 矢狀縫兩側2.0 mm),每側SN所在的區域(硬膜下7.5 mm)用10 μL的Hamilton微量注射器注射2 μL 6-OHDA(2 g/L溶解在含0.05%的抗壞血酸的0.9%生理鹽水中),對照組SN內注射同體積含0.05%抗壞血酸的生理鹽水)。所有大鼠在手術后每日測量進食量,手術后6周稱體重,并進行轉棒實驗。
2.2組織切片 6周后,對照組和PD模型組的大鼠各5只,麻醉后開胸暴露心臟,經左心室灌注固定取材,收集腦和rWAT,4%多聚甲醛后固定24 h,腦在蔗糖梯度溶液中脫水。根據大鼠腦圖譜粗略確定SN的位置,并用冰凍切片機(Leica CM1850)20 μm連續冰凍冠狀切片,放入-80 ℃的冰箱保存。rWAT進行常規石蠟包埋,用石蠟切片機(Leica RM2235)將石蠟塊切成5 μm厚的切片。
2.3rWAT的HE染色 rWAT的石蠟切片依次置入二甲苯1和2中浸泡10 min,以脫掉組織中的蠟,切片在100%乙醇I、Ⅱ中分別浸泡5 min,95%、90%、80%和70%乙醇中分別浸泡2 min,PBS漂洗3次,每次3 min,置蒸餾水中漂洗1 min,蘇木素復染1 min,0.5%的鹽酸酒精分化30 s,自來水返藍15 min, 蒸餾水漂洗2次每次30 s,然后用5%的伊紅染液染5 min,梯度酒精脫水至二甲苯,中性樹膠封固,光學顯微鏡下觀察rWAT形態。
2.4SN的免疫組織化學染色 切片復溫30 min后,用微波輻射法抗原修復3次每次5 min,自然冷卻至室溫,用3%的H2O2孵育3 min,5%的山羊血清封閉30 min后,滴加小鼠抗酪氨酸羥化酶(tyrosine hydroxylase,TH)單克隆抗體(1∶5 000,Sigma,T1299),4 ℃冰箱過夜,滴加HRP標記的山羊抗小鼠的IgG(1∶500,ZSGB-BIO,A0216),室溫孵育30 min,DAB染色1 min,蘇木精染色細胞核,依次脫水、透明、封片,光學顯微鏡下觀察SN中的TH。
2.5Western blot檢測 其余大鼠在麻醉好后,開腹取出兩側的rWAT并稱重,然后斷頭快速取出大鼠SN區域的腦組織。常規提取組織中的蛋白質,考馬斯亮藍法檢測蛋白濃度。取2組大鼠rWAT和SN的蛋白質樣品各30 μg進行10% SDS-PAGE,電轉移至NC膜,裁剪目的條帶。用5%脫脂奶粉封閉2 h,小鼠抗TH單克隆抗體(1∶5 000,Sigma,T1299)加至SN的目的條帶,兔抗FAS多克隆抗體(1∶1 000,Abcam,ab22759)、兔抗HSL多克隆抗體(1∶1 000,Abcam,ab45422)和兔抗p-HSL多克隆抗體(1∶1 000,CST,4126)加至rWAT的目的條帶,4 ℃孵育過夜,HRP標記的山羊抗小鼠的IgG(1∶500,ZSGB-BIO,A0216)加至SN的目的條帶,HRP標記的山羊抗兔的IgG(1∶500,ZSGB-BIO,A0239)分別加至rWAT相應的目的條帶,室溫孵育1 h,ECL顯色。用Fluorchem 2.0系統進行光密度測定,以目的條帶與內參照GAPDH的平均吸光度比值表示相對蛋白水平,進行分析。
采用GraphPad Prism軟件進行統計學分析。數據以均數±標準差(mean±SD)表示,組間比較采用t檢驗,以P<0.05為差異有統計學意義。
TH是兒茶酚胺合成過程中的限速酶,是確定兒茶酚胺能神經元的標志。SN內TH陽性的神經元大部分是多巴胺(dopamine,DA)能的,因此SN中TH的蛋白表達水平可以反映SN中DA的表達水平。6周后,與對照組比較,PD模型組大鼠SN中TH陽性神經元明顯減少,見圖1A;TH的蛋白表達水平顯著降低(P<0.01),見圖1B。PD模型組大鼠在轉棒上停留的時間明顯縮短(P<0.01),見圖2。說明PD模型組大鼠的運動協調能力降低。以上結果說明PD模型制備成功。

Figure 1. The protein expression of TH in SN of rats in control group and PD group was detected by immunohistochemical staining (A) and Western blot (B). The scale bar=50 μm. Mean±SD.n=5.**P<0.01vscontrol group.
圖1 2組大鼠SN內TH的免疫組織化學染色和蛋白表達結果

Figure 2. Comparison of the time of the rats staying on rotating rod between control group and PD group. Mean±SD.n=10.**P<0.01vscontrol group.
圖2 2組大鼠在轉棒上停留的時間比較
對大鼠每日進食量和手術后6周時體重的測量發現,二者差異均無統計學顯著性; 但是PD模型組大鼠rWAT重量/體重的比值明顯降低(P<0.05),見圖3。HE染色發現,rWAT脂肪細胞的細胞核位于細胞邊緣,細胞膜的邊界清晰,用ImageJ軟件測量細胞直徑,發現細胞直徑明顯變小(P<0.01),見圖4。

Figure 3. Measurement results of food intake, body weight and rWAT weight/body weight in control group and PD group. Mean±SD.n=10.*P<0.05vscontrol group.
圖3 2組大鼠進食量、體重和rWAT重量/體重的比值
Western blot的檢測結果顯示,PD模型組大鼠的rWAT中FAS蛋白的表達水平明顯降低(P<0.01),p-HSL的蛋白水平明顯升高(P<0.05),HSL的蛋白表達水平無明顯變化,p-HSL/HSL明顯升高(P<0.05),見圖5。這提示SN多巴胺參與rWAT的合成與分解,破壞SN能引起rWAT的合成減少和分解增加。

Figure 4. Measurement results of adipocyte diameter in the rWAT between control group and PD group. The scale ber=50 μm. Mean±SD.n=5.**P<0.01vscontrol group.
圖4 2組大鼠rWAT脂肪細胞直徑的測量結果

Figure 5. The protein levels of FAS, HSL, and p-HSL in the rWAT between the 2 group determined by Western blot. Mean±SD.n=5.*P<0.05,**P<0.01vscontrol group.
圖5 Western blot檢測2組大鼠rWAT FAS、HSL和p-HSL蛋白水平
PD是一種以SN中DA能神經元的退行性變為特征的神經退行性疾病[6]。6-OHDA是可以選擇性作用于兒茶酚胺能神經元的神經毒素,在腦內可由DA能神經元末梢的多巴胺轉運體攝取,通過氧化應激等機制逆行性損毀DA能神經元[7]。SN中注射6-OHDA制備的PD模型是目前常用的PD模型之一[8-9]。
本實驗用6-OHDA注入雙側SN制作PD大鼠模型,發現大鼠的進食量未發生明顯改變,rWAT重量/體重的比值降低,說明rWAT的重量/體重的比值降低與大鼠的進食量之間沒有明顯聯系。實驗中,與對照組比較,PD模型大鼠的體重未發生明顯改變,這與預期的結果并不相符。推測本實驗中PD模型大鼠的體重未發生改變的原因可能有三:第一,人與大鼠之間的種屬差異;第二,實驗大鼠飼養的時間短(6周),PD相關的體重減輕癥狀可能還未出現;第三,并不是所有的PD患者都伴隨體重減輕的癥狀。然而,本研究與以前的一些實驗結果是一致的。Zheng等[10]把6-OHDA注射入雙側的SN,實驗期間大鼠的體重和進食量均未發生明顯變化。Meng等[11]用6-OHDA損傷投射到SN纖維組成的內側前腦束制備的PD模型,也沒有觀察到體重或食物攝入的顯著變化。但是體重減輕在PD患者中很常見,并且在PD癥狀增加和認知功能下降的患者中最明顯[12],這可能是SN中DA能神經元變性更嚴重的表現。
HSL是脂肪分解的限速酶,在脂肪的動員中起決定性作用。其活化形式為磷酸化形式,可以在腎上腺素和胰高血糖素等激素的作用下發生磷酸化,也稱為p-HSL,可直接作用于脂肪,使甘油三酯分解為甘油二酯。因此,脂肪組織中p-HSL蛋白水平的變化比HSL更能直接反映其分解狀態。由于FAS和p-HSL在脂肪形成過程中所起的作用正好相反,FAS和p-HSL同時減少或同時升高可能并不會影響甘油三酯在脂肪組織中的沉積。因此本實驗同時檢測了FAS和p-HSL在PD模型大鼠rWAT中的蛋白水平,發現FAS的蛋白水平減少,p-HSL的蛋白水平增多,表明rWAT中同時存在脂肪的合成減少和分解增加,這與脂肪細胞的直徑減小和rWAT重量/體重降低的結果是一致的,說明rWAT可能對PD病人體重減輕的發生起著重要作用。
脂肪的代謝受交感神經系統的調控。交感神經中的兒茶酚胺,如腎上腺素和去甲腎上腺素與脂肪細胞表面的β-腎上腺素能受體結合,并通過細胞內的級聯反應使脂肪發生水解[13]。神經示蹤的研究表明,下丘腦室旁核(paraventricular nucleus,PVN)和下丘腦外側區(lateral area of hypothalamus,LH)可以支配rWAT,并參與交感神經對脂肪代謝的調控[14]。PD患者可見PVN中催產素能神經元和LH的食欲素A能神經存在明顯減少[15-16],說明PVN和LH可能是PD患者調節脂肪代謝的2個關鍵區域。我們以前神經示蹤的實驗研究表明,SN與PVN和LH之間有直接的纖維聯系[17],因此我們推測,SN可能通過PVN或LH間接影響交感神經的功能,從而使脂肪代謝發生改變,這可能也是本實驗中脂肪的合成和分解狀態發生改變的原因,其具體機制尚需要進一步研究。
綜上所述,本研究發現雙側黑質破壞后的PD模型大鼠rWAT的FAS表達減少伴p-HSL的表達增加,且rWAT與大鼠體重比值顯著降低。這些結果提示SN的DA參與調控大鼠rWAT的合成與分解。SN破壞引起的rWAT代謝改變可能與PD病人體重下降具有一定的相關性。