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豬皮中膠原蛋白的提取

2020-04-17 07:41:32牛一帆史振霞尚校蘭路彥霞高瑞寒王碧柔

林 琳,牛一帆,史振霞,尚校蘭,路彥霞,高瑞寒,王碧柔

(廊坊師范學院,河北 廊坊 065000)

0 引言

隨著生活水平的日益提高,人們對肉類的消費需求不斷上漲,尤其是豬肉。豬皮占胴體的10%,豬皮中含有大量蛋白質,是豬肉的2.5 倍之多,但是脂肪含量卻不足它的50%[1,2]。豬皮里面的主要成分是膠原蛋白,占蛋白質總含量的87.7%左右[3]。豬皮中的膠原蛋白可以使人的皮膚變得水潤柔滑、有彈性,可延緩衰老,預防癌癥和骨質疏松[4]。除此之外,有研究發現,膠原蛋白對預防近視也有一定的作用[5]。研究豬皮中膠原蛋白提取,可以充分發揮豬皮的營養價值,創造更大的經濟效益。目前,水解豬皮的方法主要包括酸法水解[6]、堿法水解[7]、氧化法水解[8]、酶法水解[9]以及混合法水解[10]。本研究采取酸法水解,操作簡單易行。

目前,國內報道多側重于研究豬皮中膠原蛋白的功能特性,而對于膠原蛋白的提取方法及提取率優化方面的研究鮮見報道。本研究通過正交試驗確定了豬皮中膠原蛋白提取的最佳條件,并對其純度進行測定,確定提取率最高的試驗條件,為膠原蛋白提取方法的優化提供理論依據。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

豬皮(購于超市),對二甲氨基苯甲醛(分析純,天津市化學試劑一廠);醋酸鈉(分析純,天津市化學試劑一廠);異丙醇(分析純,天津市化學試劑一廠);冰醋酸(分析純,天津市化學試劑三廠);硫酸氫鈉(分析純,天津市化學試劑三廠);羥脯氨酸標準品(北京索萊寶科技有限公司);氯胺T(分析純,天津市光復試劑有限公司);正丙醇(分析純,天津市光復試劑有限公司);高氯酸(分析純,天津市光復試劑有限公司)

1.2 儀器與設備

電子天平(JA21002 型):上海精密科學儀器有限公司;紫外可見光分光光度計(22PC0314 型):上海棱光技術有限公司;冷凍干燥機(Christ ALPHA 1-2):上海甄明科學儀器有限公司;pH 計(ST3100/F):奧豪斯儀器常州有限公司;電熱恒溫水浴鍋(HH-4型):江蘇省金壇市榮華儀器制造有限公司。

1.3 膠原蛋白提取

1.3.1 新鮮豬皮的處理

新鮮豬皮,刮去豬毛,去掉污物,60℃左右的熱水中洗滌3次,用刀去除皮下脂肪,將處理之后的豬皮切成1×1cm 的條狀,4℃保存。每份豬皮稱量5g,放入錐形瓶中待用。

1.3.2 樣品脫脂

脫脂液配制:配制2.5%,5.0%,7.5%,10%,12.5% 的脫脂液,分別稱取2.5g,5.0g,7.5g,10g,12.5g 的Na2CO3,蒸餾水溶解后,容量瓶定容至100mL。

脫脂時,每份樣品加入20mL 的蒸餾水,再加入以上5 種脫脂液,充分攪拌10min,過濾,按上述步驟再重復一次,清水漂洗兩次。每組實驗做三組平行。

1.3.3 鹽處理

鹽溶液配制:取2.25g NaCl,蒸餾水溶解,定容至250mL。

樣品鹽處理條件參照藍蔚青實驗方法[12]。

每份豬皮加8.3mL 等滲鹽水,放入恒溫水浴鍋內,在60℃的條件下分別水浴0.5h,1.0h,1.5h,2.0h,2.5h,期間不斷攪拌,使豬皮受熱均勻,用40℃的蒸餾水漂洗兩次。每組實驗做三組平行。

1.3.4 酸處理

樣品酸處理條件參照梁權實驗方法[13]。

36%醋酸溶液:36.18mL 冰醋酸,蒸餾水定容至100mL。

NaHSO3溶液:4g NaHSO3溶解于125mL 蒸餾水中。

用pH 計分別調配pH 為2.5,3.0,3.5,4.0,4.5 的醋酸緩沖液。

分別用以上5種不同pH值的醋酸緩沖液8.3mL對豬皮進行處理,放入60℃恒溫水浴鍋中水浴1.5h,期間不斷攪拌,使豬皮受熱均勻,用40℃蒸餾水漂洗兩次。每組實驗做三組平行。

1.3.5 凍干

將經過處理的豬皮放入冰箱預冷凍3-4h,放入冷凍干燥機-80℃冷凍干燥12 小時以上,取出。粉碎、稱重。

1.4 膠原蛋白純度測定(羥脯氨酸含量的測定)

1.4.1 試劑的配制

①檸檬酸緩沖液(pH6.8):將14.0g 氫氧化鈉、26.0g檸檬酸和78.0g醋酸鈉溶解于500mL的蒸餾水中,轉移至1000mL 容量瓶,加入250mL 正丙醇,用蒸餾水定容,存于棕色瓶中,置于陰涼通風處。

②氯胺T 試劑:將1.41g 氯胺T 溶解于上述檸檬酸緩沖液。

③顯色劑:量取35.0mL 60%的高氯酸,加入10.0g 對二氨基苯甲醛,緩慢加入65.0mL 異丙醇(該試劑調配后立即用掉)。

④羥脯氨酸標準工作液(5μg/mL):羥脯胺酸標準品5.0mg,蒸餾水定容至1000mL。

1.4.2 羥脯氨酸標準曲線的繪制

從豬皮中提取的膠原蛋白多為I型膠原蛋白,含大量的羥脯氨酸。本實驗通過測定羥脯氨酸含量,乘以系數(9.75)即可得到膠原蛋白的含量[14-15]。

配制濃度為0.5,1.0,1.5,2.0μg/mL 的標準溶液。分別取10.0、20.0、30.0與40.0mL的羥脯氨酸標準工作液于100mL的容量瓶中,蒸餾水定容。

準備具塞試管,取上述不同濃度的標準工作液4mL 于試管中,加入2mL 氯胺T 溶液,混勻,室溫靜置20min,加入2mL 對二氨基苯甲醛試劑,搖勻后立刻放入60℃的水浴鍋中,20min 后取出,冷水沖洗3min以上,放置在室溫下,30min后用紫外分光光度計測定吸光度,波長為558nm±2nm,繪制出標準曲線。以蒸餾水為空白對照。

1.4.3 羥脯氨酸含量測定

稱取4g膠原蛋白提取物放入錐形瓶中,用配制好的硫酸溶液在105℃的條件下對其進行水解,水解時間16h。用濾紙將水解液過濾至250mL 容量瓶中,蒸餾水定容。吸取4mL 標準工作液到試管中,根據測出的吸光度算出羥脯氨酸的濃度。按照公式(1)計算出樣品中的羥脯氨酸含量。

式中:W-提取物的羥脯氨酸含量,mg/g;C-標準曲線上對應的羥脯氨酸濃度,μg/mL;m-稱取樣品的質量,g;f-稀釋倍數。

1.5 正交試驗設計

以膠原蛋白得率為評價指標,根據單因素試驗結果,對脫脂液濃度、鹽析時間以及酸處理pH 進行三因素三水平正交試驗,通過正交試驗確定膠原蛋白最佳提取條件。

2 結果與分析

2.1 單因素試驗結果分析

2.1.1 脫脂液濃度單因素試驗

脫脂液濃度單因素實驗結果如圖1所示。由圖1 可知,當脫脂液濃度為5.0%時,膠原蛋白提取物質量最大,為1.493g,故選取2.5%,5.0%,7.5%脫脂液濃度進行正交試驗。

圖1 脫脂液濃度對膠原蛋白提取物質量影響

2.1.2 鹽析時間單因素試驗

鹽析時間單因素試驗結果如圖2 所示。由圖2 可知,隨著鹽析時間的增加,膠原蛋白提取物質量隨之降低。當鹽析時間為0.5h,1.0h,1.5h 時,膠原蛋白提取物質量較大,分別為1.553g,1.440g,1.320g。但考慮鹽析時間過短,脂肪物質溶解不充分,故正交試驗中鹽析時間確定為1.0h,1.5h,2.0h。

圖2 鹽析時間對膠原蛋白提取物質量影響

2.1.3 酸處理pH單因素試驗

酸處理pH 試驗結果顯示,當pH 為4.0 時,膠原蛋白提取物質量最高,為1.33g,故選取pH3.5,4.0,4.5進行正交試驗。

2.1.4 正交試驗結果

正交試驗(L(933))因素水平見表1,正交試驗結果見表2。

表1 正交試驗因素水平表

表2 正交試驗結果

由極差分析可得,三個因素對膠原蛋白提取率的影響大小依次為鹽析時間>pH>脫脂液濃度,最終確定的優化條件是鹽析時間1.5h,pH 3.5,脫脂液濃度5%,此時,5g 豬皮膠原蛋白提取量為2.16g,得率為43.2%。

2.2 羥脯胺酸標準曲線的繪制

根據羥脯胺酸標準品濃度與吸光度繪制標準曲線,其線性回歸方程為:y=0.1728x+0.0026,其中x為羥脯氨酸濃度,y 為吸光度,相關系數R2=0.9992,表明相關性良好。標準曲線如圖3所示。

圖3 羥脯氨酸標準曲線

2.3 膠原蛋白提取物純度測定

按照1.4.3 中的方法測定最優提取條件下膠原蛋白提取物純度。當提取條件定為:鹽析時間1.5h,pH 3.5,脫脂液濃度5%,提取物吸光度為0.154,膠原蛋白純度為85.44%。

3 結論

本研究主要對豬皮中膠原蛋白提取條件進行優化。通過單因素試驗及正交試驗確定膠原蛋白最優的提取條件:鹽析時間1.5h,pH 3.5,脫脂液濃度5%;同時,利用分光光度計測定出該條件下膠原蛋白的純度為85.44%。本研究可為合理利用豬皮及工業化生產膠原蛋白提供理論依據。

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